Sprawozdanie 1 data: 04,03,2015r.
Cel: Określenie wpływu bakterii symbiotycznych na wzrost koniczyny białej rosnącej na podłożu zanieczyszczonym metalami ciężkimi oraz pestycydami.
Materiał:
Koniczyna hodowana na podłożu skażonym różnymi metalami ciężkimi do której wprowadzono mikroorganizmy;
Podłoże skażone metalami:
0,001% α-cypermetryna
0,005% α-cypermetryna
1% Zn+
0,5% Zn+
0,25% Zn+
1% Cu2+
0,25% Cu2+
5% NaCl
Próba kontrolna:
Koniczyna na nie skażonym podłożu bez inokulacji;
Koniczyna na nie skażonym podłożu z wprowadzonymi mikroorganizmami;
Wykorzystane hodowle rosły w fitochromie w temperaturze +/- 21 oC, w fotoperiodzie pośrednim ( 12h dnia/ 12h nocy), rośliny rosły na podłożu Hoagland- pozbawionym azotu ( mikroorganizmy wprowadzają do rośliny azot, nie pożywka)
Metody pomiaru:
Pomiar ciężaru – waga
Długość korzenia i biomasy – linijka
Liczba brodawek
Wyniki:
| kontrola | ||||||||
|---|---|---|---|---|---|---|---|---|
0,005% α-cyperm. |
0,001% α-cyperm. |
1% Zn | 0,5% Zn | 0,25% Zn | 1% Cu | 0,25% Cu | z mikroorg. | |
| ciężar korzenia | 0,0005 | 0,001 | 0 | obumarła | 0 | 0 | 0,0185 | 0,00425 |
| cieżar biomasy | 0 | 0 | 0 | 0,012 | 0,000333 | 0 | 0,122 | |
| długość korzenia | 0,25 | 1,2 | 0 | 3,800 | 1 | 0,5 | 2,975 | |
| długośc liści | 0,35 | 0,8 | 6 | 8,167 | 2 | 1,9 | 5,75 | |
| liczba brodawek | 0 | 0 | 0 | 2,667 | 0,666667 | 0 | 5,5 | |
| liczba liści | 0,5 | 5 | 3 | 5 | 2 | 2 | 9,525 |
Wnioski:
Mikroorganizmy stymulują wzrost brodawek, czyli pomagają roślinie syntetyzować azot;
Rośliny z mikroorganizmami lepiej się rozwijają, ich biomasa jest wyższa;
Najbardziej szkodliwy dla koniczyny jest cynk w przypadku którego już przy stężeniu 0,5% Zn w pożywce roślina się nie rozwijała – obumarła;
Największą tolerancję roślina wykazała dla miedzi;
Przy obecności pestycydu widzimy w dużej mierze zahamowany wzrost rośliny, oraz brak brodawek co może świadczyć , że α-cypermetryna hamuje powstawanie brodawek, czyli powoduje, że mikroorganizmy nie tworzą symbiozy z rośliną.
Sprawozdanie 2 data: 11,03,2015r.
Cel: Określenie poziomu akumulacji w tkankach ssaków, pojemności metalotioneiny oraz poziomu peroksydacji lipidów.
Materiał i metody:
Średnią zawartość parametrów w tkance wyliczone z danych przedstawionych w tabelach przygotowanych przez prowadzącego zajęcia, sporządzonych na podstawnych z następującego doświadczenia:
Nornice rude karmiono przez osiem tygodni dietą:1. Kontrola (K), 2. Melatonina (M), 3. Kadm (Cd) (100 µg/g pszenicy), 4. Kadm (100 µg/g pszenicy) + melatonina (Cd+M). Po tym czasie zwierzęta uśmiercono, pobrano wątrobę, zważono i zhomogenizowano tkankę w 3.1 mL buforu Tris, z którego do dalszych analiz zawartości kadmu Cd (ng/mL), metalotioneiny MT (ng/mL) i TBARS nmol/mL pobrano po 1 mL mieszaniny. Stężenie parametrów oszacowano na podstawie zmierzonych wartości absorbancji prób przy odpowiednich długościach fal i przy określonym rozcieńczeniu. Obliczenie stężenia dokonano przy wykorzystaniu krzywej wzorcowej sporządzonej na podstawie znanych wartości stężenia wzorca i jego absorbancji (1 ng – absorbancja 0.154; 2 ng – 0.230; 5 ng – 0.461; 10 ng – 0.845). Przy wykorzystaniu prostej regresji i wiedząc, że y=ax+b, gdzie y – stężenie próby, x – absorbancja próby, obliczono wartości współczynników a = 13.018 i b = -1,002).
Wyniki:
a = 13.018 i b = -1,002
| Cd w wątrobie | |||||||||
|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|
| Lp | grupa | Absorbancja | rozcieńczenie | Naważka [g] | y | y*roz*3,1 | wyniki: | ||
| 1. | Cd | 0,783 | 1000 | 0,042 | 9,191094 | 28492,39 | 678390,3 | ||
| 2. | Cd | 0,775 | 1000 | 0,046 | 9,08695 | 28169,55 | 612381,4 | ||
| 3. | Cd | 0,884 | 1000 | 0,053 | 10,50591 | 32568,33 | 614496,7 | ||
| 4. | Cd | 0,693 | 2000 | 0,049 | 8,019474 | 49720,74 | 1014709 | ||
| 5. | Cd | 0,79 | 2000 | 0,075 | 9,28222 | 57549,76 | 767330,2 | ||
| 6. | Cd | 0,895 | 2000 | 0,057 | 10,64911 | 66024,48 | 1158324 | ||
| 7. | Cd | 0,773 | 2000 | 0,064 | 9,060914 | 56177,67 | 877776 | ||
| 8. | K | 0,112 | 1000 | 0,045 | 0,456016 | 1413,65 | 31414,44 | ||
| 9. | K | 0,098 | 1000 | 0,049 | 0,273764 | 848,6684 | 17319,76 | ||
| 10. | K | 0,121 | 1000 | 0,047 | 0,573178 | 1776,852 | 37805,36 | ||
| 11. | K | 0,102 | 1000 | 0,051 | 0,325836 | 1010,092 | 19805,72 | ||
| 12. | K | 0,11 | 1000 | 0,048 | 0,42998 | 1332,938 | 27769,54 | ||
| 13. | K | 0,099 | 1000 | 0,047 | 0,286782 | 889,0242 | 18915,41 | ||
| 14. | K | 0,1 | 1000 | 0,068 | 0,2998 | 929,38 | 13667,35 | ||
| 15. | M | 0,088 | 1000 | 0,045 | 0,143584 | 445,1104 | 9891,342 | ||
| 16. | M | 0,097 | 1000 | 0,051 | 0,260746 | 808,3126 | 15849,27 | ||
| 17. | M | 0,102 | 1000 | 0,065 | 0,325836 | 1010,092 | 15539,87 | ||
| 18. | M | 0,099 | 1000 | 0,055 | 0,286782 | 889,0242 | 16164,08 | ||
| 19. | M | 0,122 | 1000 | 0,057 | 0,586196 | 1817,208 | 31880,84 | ||
| 20. | M | 0,107 | 1000 | 0,06 | 0,390926 | 1211,871 | 20197,84 | ||
| 21. | M | 0,105 | 1000 | 0,068 | 0,36489 | 1131,159 | 16634,69 | ||
| 22. | Cd+M | 0,498 | 1000 | 0,068 | 5,480964 | 16990,99 | 249867,5 | ||
| 23. | Cd+M | 0,42 | 1000 | 0,056 | 4,46556 | 13843,24 | 247200,6 | ||
| 24. | Cd+M | 0,413 | 1000 | 0,055 | 4,374434 | 13560,75 | 246559 | ||
| 25. | Cd+M | 0,502 | 2000 | 0,067 | 5,533036 | 34304,82 | 512012,3 | ||
| 26. | Cd+M | 0,55 | 2000 | 0,05 | 6,1579 | 38178,98 | 763579,6 | ||
| 27. | Cd+M | 0,54 | 2000 | 0,049 | 6,02772 | 37371,86 | 762691,1 | ||
| 28. | Cd+M | 0,531 | 2000 | 0,046 | 5,910558 | 36645,46 | 796640,4 |
| MT w wątrobie | a = 13.018 i b = -1,002 | ||||||
|---|---|---|---|---|---|---|---|
| Lp | grupa | Absorbancja | rozcieńczenie | Naważka [g] | y | ||
| 1. | Cd | 0,391 | 1000 | 0,042 | 4,088038 | ||
| 2. | Cd | 0,387 | 1000 | 0,046 | 4,035966 | ||
| 3. | Cd | 0,442 | 1000 | 0,053 | 4,751956 | ||
| 4. | Cd | 0,346 | 2000 | 0,049 | 3,502228 | ||
| 5. | Cd | 0,395 | 2000 | 0,075 | 4,14011 | ||
| 6. | Cd | 0,446 | 2000 | 0,057 | 4,804028 | ||
| 7. | Cd | 0,386 | 2000 | 0,064 | 4,022948 | ||
| 8. | K | 0,2 | 1000 | 0,045 | 1,6016 | ||
| 9. | K | 0,11 | 1000 | 0,049 | 0,42998 | ||
| 10. | K | 0,13 | 1000 | 0,047 | 0,69034 | ||
| 11. | K | 0,115 | 1000 | 0,051 | 0,49507 | ||
| 12. | K | 0,098 | 1000 | 0,048 | 0,273764 | ||
| 13. | K | 0,101 | 1000 | 0,047 | 0,312818 | ||
| 14. | K | 0,109 | 1000 | 0,068 | 0,416962 | ||
| 15. | M | 0,15 | 1000 | 0,045 | 0,9507 | ||
| 16. | M | 0,114 | 1000 | 0,051 | 0,482052 | ||
| 17. | M | 0,128 | 1000 | 0,065 | 0,664304 | ||
| 18. | M | 0,134 | 1000 | 0,055 | 0,742412 | ||
| 19. | M | 0,146 | 1000 | 0,057 | 0,898628 | ||
| 20. | M | 0,199 | 1000 | 0,06 | 1,588582 | ||
| 21. | M | 0,14 | 1000 | 0,068 | 0,82052 | ||
| 22. | Cd+M | 0,5 | 1000 | 0,068 | 5,507 | ||
| 23. | Cd+M | 0,45 | 1000 | 0,056 | 4,8561 | ||
| 24. | Cd+M | 0,42 | 1000 | 0,055 | 4,46556 | ||
| 25. | Cd+M | 0,505 | 2000 | 0,067 | 5,57209 | ||
| 26. | Cd+M | 0,54 | 2000 | 0,05 | 6,02772 | ||
| 27. | Cd+M | 0,55 | 2000 | 0,049 | 6,1579 | ||
| 28. | Cd+M | 0,549 | 2000 | 0,046 | 6,144882 |
| TBARS | a=14,02 natomiast b=-0.99 | |||||||
|---|---|---|---|---|---|---|---|---|
| Lp | grupa | Absorbancja | rozcieńczenie | Naważka [g] | y | y * roz * 3,1 | ||
| 1. | Cd | 0,75 | 2000 | 0,042 | 9,525 | 59055 | ||
| 2. | Cd | 0,792 | 2000 | 0,046 | 10,11384 | 62705,81 | ||
| 3. | Cd | 0,78 | 2000 | 0,053 | 9,9456 | 61662,72 | ||
| 4. | Cd | 0,8 | 2000 | 0,049 | 10,226 | 63401,2 | ||
| 5. | Cd | 0,761 | 2000 | 0,075 | 9,67922 | 60011,16 | ||
| 6. | Cd | 0,802 | 2000 | 0,057 | 10,25404 | 63575,05 | ||
| 7. | Cd | 0,69 | 2000 | 0,064 | 8,6838 | 53839,56 | ||
| 8. | K | 0,04 | 1000 | 0,045 | -0,4292 | -1330,52 | ||
| 9. | K | 0,056 | 1000 | 0,049 | -0,20488 | -635,128 | ||
| 10. | K | 0,049 | 1000 | 0,047 | -0,30302 | -939,362 | ||
| 11. | K | 0,051 | 1000 | 0,051 | -0,27498 | -852,438 | ||
| 12. | K | 0,05 | 1000 | 0,048 | -0,289 | -895,9 | ||
| 13. | K | 0,03 | 1000 | 0,047 | -0,5694 | -1765,14 | ||
| 14. | K | 0,025 | 1000 | 0,068 | -0,6395 | -1982,45 | ||
| 15. | M | 0,042 | 1000 | 0,045 | -0,40116 | -1243,6 | ||
| 16. | M | 0,058 | 1000 | 0,051 | -0,17684 | -548,204 | ||
| 17. | M | 0,059 | 1000 | 0,065 | -0,16282 | -504,742 | ||
| 18. | M | 0,053 | 1000 | 0,055 | -0,24694 | -765,514 | ||
| 19. | M | 0,055 | 1000 | 0,057 | -0,2189 | -678,59 | ||
| 20. | M | 0,012 | 1000 | 0,06 | -0,82176 | -2547,46 | ||
| 21. | M | 0,025 | 1000 | 0,068 | -0,6395 | -1982,45 | ||
| 22. | Cd+M | 0,7 | 1000 | 0,068 | 8,824 | 27354,4 | ||
| 23. | Cd+M | 0,68 | 1000 | 0,056 | 8,5436 | 26485,16 | ||
| 24. | Cd+M | 0,39 | 1000 | 0,055 | 4,4778 | 13881,18 | ||
| 25. | Cd+M | 0,485 | 1000 | 0,067 | 5,8097 | 18010,07 | ||
| 26. | Cd+M | 0,502 | 1000 | 0,05 | 6,04804 | 18748,92 | ||
| 27. | Cd+M | 0,506 | 1000 | 0,049 | 6,10412 | 18922,77 | ||
| 28. | Cd+M | 0,531 | 1000 | 0,046 | 6,45462 | 20009,32 |
Wartości średnie :
| Cd w wątrobie | MT w wątrobie | TBARS | |
|---|---|---|---|
| K | 23.813,94 | 38.640,38 | -23.514,9 |
| Cd | 817.629,7 | 364.189,2 | 1.140.476 |
| M | 18.022,56 | 48.096,66 | -20.512,1 |
| Cd+M | 511.221,5 | 520.288,4 | 370.365 |
Wnioski:
Grupa nornic karmiona Cd zakumulowała go więcej niż grupa kontrolna;
U nornic karmionych Cd+M obserwuje się wyższe stężenie Cd niż w gr. kontrolnej ale mniejsze niż w grupie karmionej kadmem;
Melatonina może wpływać na zmniejszenie się ilości Cd w organizmie;
Nornice które miały kadm w swojej diecie mają najwyższe stężenie metalotioneiny niż te które go nie przyjmowały;
Obecność Cd generuje obecność MT;
Duże stężenie MT w organizmie świadczy o obecności w nim kadmu, gdyż ma ona zdolność do jego syntezy;
Najwięcej wolnych rodników obserwujemy u nornic przyjmujących Cd;
Możemy sądzić że kadm generuje obecność wolnych rodników, związku z czym jest toksyczny dla organizmu;
Sprawozdanie 4 data: 25,03,2015r.
Cel: Określanie wpływu pH i zasolenia na przeżywalność oczlików.
Materiał:
Oczliki – 10 do każdej próby;
5 pojemników po 25 ml roztworu;
0,5% kw. cytrynowy
1% kw. cytrynowy
0,5 % NaCl
1% NaCl
Próba kontrolna – H2O
Wyniki:
| Próba | Przeżyły /10 | Martwe / 10 |
|---|---|---|
| I – 0,5% kw. cytr. | 0 | 0 |
| II – 1% kw.cytr. | 0 | 0 |
| III – 0,5% NaCl | 0 | 0 |
| IV – 1% NaCl | 0 | 0 |
| V - H2O | 9 | 1 |
Wnioski:
Większość oczlików to organizmy słonowodne nie liczne żyją w słodkiej;
W naszym doświadczeniu widzimy, że oczliki nie przeżyły w wodzie słonej, więc możemy sądzić że okazy te były słodkowodne;
Oczliki preferują środowisko zasadowe, dlatego po zmianie środowiska na kwasowe zginęły;
Sprawozdanie 5 data: 1,04,2015r.
Cel: Symulacja preferencji alleli po wpływie działania drapieżnika i przypadku na populacje.
Materiał i metody:
Przeprowadzono dwie symulacje. Allele są reprezentowane przez kwadraty: allel dominujący A- kratka; allel recesywny a- czysty.
Działanie drapieżnika:
Dysponujemy 50 allelami, 25 – recesywne i 25 – dominujące;
Środowisko – kartka w kratkę formatu A3
Drapieżnik ( jedna z osób w grupie która nie widzi rozkładania alleli przez drugiego uczestnika doświadczenia) eliminuje 25 alleli, które następnie się rozmnażają;
Działanie przypadku:
Dysponujemy 10 allelami, 5 – recesywnych i 5 – dominujących;
Losujemy losowe 4 allele z urny której zawartości nie widzimy;
Pozostałe allele w urnie rozmnażają się;
W obu przypadkach wykonujemy 5 powtórzeń i wyliczmy frakcję.
Wyniki:
| drapieżnik | |
|---|---|
| próba | |
| 0 | |
| I | |
| II | |
| III | |
| IV | |
| V | |
| przypadek | |
| 0 | |
| I | |
| II | |
| III | |
| IV | |
| V |
Wnioski:
W przypadku drapieżnika nie obserwujemy preferencji, w równym stopniu giną osobniki z allel dominującym jak i recesywnym. W rzeczywistości jednak drapieżnik wykazuje preferencje oraz należy zwrócić uwagę, iż występują różne czynniki utrudniające drapieżnikowi łowy;
W działaniach przypadkowych obserwujemy wzrost frakcji allelu dominującego. Jednak należy pamiętać, że działa tu przypadek i nie istnieją czynniki które mają jakikolwiek wpływ na rodzaj allelu który zginie bądź przetrwa;
Oba te działania wpływają w hamujący sposób na bioróżnorodność populacji;