Lab PŁ, nr 3 biodegradacja bialek


Ramięga Tomasz Data wykonania: 22.10.08

Kopciara Marcin ŚRODA

Świątczak Piotr godz. 1515-1900

BIOTECHNOLOGIA ŚRODOWISKA

LABORATORIUM

ĆWICZENIE NR 3

BIODEGRADACJA BIAŁEK

Wstęp:

Odpady białkowe z przemysłu stanowią spory problem dla ich wytwórców. Białka z przemysłu mleczarskiego czy ubojni mogą być degradowane do niskocząsteczkowych peptydów czy aminokwasów na drodze różnych reakcji chemicznych jak hydroliza kwasowa wymagająca dużych nakładów energii i odczynników lub za pomocą metod ekologicznych. Tu z pomocą przychodzą człowiekowi drobnoustroje. Wytwarzane przez nie hydrolazy peptydowe rozszczepiają wiązania peptydowe (występujące między aminokwasami, łączy grupę α-aminową jednego aminokwasu z grupą α-karboksylową drugiego aminokwasu) rozkładając białko do mniejszych podjednostek. W wielu krajach na świecie stosuje się podczyszczanie takich ścieków z przemysłu metodą osadu czynnego, w którym bytują mikroorganizmy żywiące się zanieczyszczeniami. Jest to tani i bardzo efektywny sposób utylizacji tych odpadów. W wypadku gdy ścieki zawierają duże ilości białka (np., kazeiny i hemoglobiny) ważne jest by w osadzie bytowały drobnoustroje wytwarzające enzymy o dużym powinowactwie do tych zanieczyszczeń.

W oznaczeniach będziemy używać proteinazy serynowej Bacillusi subtilis . Jest to enzym o bardzo szerokiej specyficzności substratowej co sprawia, że można go zastosować do degradacji zróżnicowanych zanieczyszczeń białkowych.

Wykonanie oznaczenia:

Wykonane przez nas ćwiczenie miało na celu wyznaczenie dynamiki reakcji hydrolizy kazeiny zawartej w ściekach z mleczarni i hemoglobiny zawartej w ściekach z zakładu mięsnego.

Nasza grupa zajmowała się ściekami z mleczarni, czyli oznaczaliśmy prędkość rozkładu kazeiny.

Do kolby stożkowej dodaliśmy 20ml ścieków mleczarskich o pH początkowym 9.0 skorygowanym za pomocą 0.05 N NaOH i umieściliśmy ją w łaźni wodnej o temperaturze 37ºC. Po 3 min. do kolbki dodaliśmy 1ml odpowiednio rozcieńczonego enzymu proteolitycznego- proteinazy serynowej Bacillus subtilis. Po 0, 15, 30, 45 minutach od momentu dodania enzymu pobieraliśmy po 1ml mieszaniny reakcyjnej celem oznaczenia z odczynnikiem Folina.

Wykonanie oznaczenia z odczynnikiem Folina:

Proteinaza serynowa - subtylizyna uwalnia z kazeiny mleka krótkie peptydy, rozpuszczalne w roztworze kwasu trójchlorooctowego, które oznacza się ilościowo w reakcji z odczynnikiem Folina.

Do 1ml mieszaniny reakcyjnej pobranej wcześniej w odpowiednim czasie dodaliśmy 2ml 5% roztworu CCL3COOH, służącego do odbiałczenia roztworu. Dokładnie wymieszaliśmy i pozostawiliśmy na 30 minut w temperaturze pokojowej, po czym przesączyliśmy przez sączki z bibuły. Pobraliśmy 1ml klarownego przesączu i dodaliśmy 2ml 0.6 N NaOH oraz 0.6ml odczynnika Folina (1:2), całość wymieszaliśmy. Po 10 minutach oznaczyliśmy absorbancję przy długości fali 690nm wobec próby, która zawierała 1ml wody zamiast badanej mieszaniny reakcyjnej. Wyniki umieściliśmy w tabeli poniżej.

Tabela 1. Wyniki pomiarów

Czas inkubacji [min]

Ścieki [ΔE]

ubojnia

mleczarnia

0

0,27

0,19

0,15

0,12

0,34

0,22

0,01

0,05

15

0,62

0,69

0,28

0,25

0,71

0,64

0,20

0,17

30

1,00

1,10

0,30

0,29

1,05

1,05

0,28

0,25

45

1,25

1,50

0,42

0,40

1,4

1,70

0,35

0,35

Tabela 2. Wyniki uśrednione, z których wykonano wykres (wyniki po odrzuceniu skrajnych wartości)

Czas inkubacji [min]

Ścieki [ΔE]

ubojnia

mleczarnia

0

0,26

0,09

15

0,69

0,21

30

1,05

0,29

45

1,38

0,37

Obliczenia:

Z wyników otrzymanych powyżej obliczamy wartości ΔE690 potrzebne do utworzenia wykresu obrazującego kinetykę reakcji. Obliczamy ze wzoru:

0x01 graphic

Gdzie:

0x01 graphic
oznacza absorbancję po czasie n minut

0x01 graphic
oznacza absorbancję na początku procesu

Wyniki obliczeń wykonanych w arkuszu zamieszczam w tabeli 3.

Tabela 3. Wyniki do wykresu zależności ΔE690 od czasu.

Czas inkubacji [min]

ΔE690

ubojnia

mleczarnia

15

0,44

0,12

30

0,80

0,21

45

1,13

0,28

Wykres obrazujący kinetykę reakcji:

0x01 graphic

Wnioski:

Z wykresu wynika, że użyty do oznaczeń preparat enzymatyczny wykazuje większe powinowactwo do hemoglobiny niż kazeiny. Wykresy wskazują na stały przyrost produktów hydrolizy w czasie wykonywania oznaczeń.



Wyszukiwarka

Podobne podstrony:
Lab PŁ, nr 5 biodegradacja oleju napędowego, 1
Lab PŁ, nr 6 immobilizowane biokatalizatory
Lab PŁ, nr 2 Skrinning drobnoustrojów
Lab PŁ, nr 1 materiały celulozowe
Lab PŁ, nr 4 surowce skrobiowe
CCNA4 lab 3 3 2 pl id 109125 Nieznany
CCNA1 lab 7 1 2 pl
Joga Magazyn MaciejWielobob pl nr 2 sierpień 2010 yoga
Joga Magazyn MaciejWielobob pl nr 4 październik 2010 ajurweda
CCNA4 lab 4 3 7 pl id 109128 Nieznany
CCNA2 lab 3 2 9 pl
CCNA2 lab 2 2 9 pl
CCNA2 lab 4 2 6 pl
CCNA4 lab 5 2 2 pl id 109130 Nieznany
Joga Magazyn MaciejWielobob pl nr 5 grudzień 2010

więcej podobnych podstron