skanowanie0001

skanowanie0001



KINETYKA REAKCJI ENZYMATYCZNYCH

Odczynniki:

■    IM bufor octanowy o pH 4,7

■    10% r-r NaOH

” 0,5% r-r kwasu pikrynowego

■    wzorcowy r-r glukozy, c 4^5 mg/ ml

• 0,2 M r-r sacharozy w buforze octan, o pH 4,7

Ćwiczenie 1. Wykreślanie krzywej wzorcowej Przygotowanie krzywej wzorcowej:

1.    Przygotować i ponumerować 5 probówek. Do probówek dodać kolejno wzrastające ilości standartowego roztworu glukozy: 0,2; 0,4; 0,6 i 0,8; 1 ml i uzupełnić wodą destylowaną do objętości Ind.

2.    Do probówki nr 6 pobrać 1 ml wody destylowanej (próba ślepa).

3.    Do wszystkich probówek dodać 2 ml 0,5% kwasu pikrynowego i 2 ml 10% NaOH. Wymieszać i ogrzewać przez 5 min. we wrzącej łaźni.

4.    Dokonać odczytu wartości absorbancji przy długości fali 510 nm, wobec próby kontrolnej.

5.    Wykreślić na papierze milimetrowym ktzywa zależności absorbancji od stężenia glukozy.

Ćwiczenie 2. Badanie wpływu różnych stężeń inwertazy na szybkość hydrolizy sacharozy

Wyznaczanie optymalnego stężenia enzymu (takie stężenie enzymu, przy którym wydajność reakcji będzie największa).

1.    Podstawowy roztwór enzymu rozcieńczyć odpowiednio w oddzielnych probówkach (rozcieńczenie zależne od aktywności roztworu podstawowego enzymu): np. 20x, 30x, 50 razy.

2.    Przygotować po 5 probówek dla każdego rozcieńczenia, w celu oznaczenia szybkości reakcji katalizowanej przez różne stężenia enzymu.

3.    Do każdej probówki dodać 2 ml 0,5% kwasu pikrynowego i 2 ml 10% NaOH.

4.    W probówce nr 6 przygotować mieszaninę inknbacyina - 3 ml odpowiednio rozcieńczonego enzymu z 3 ml 0,2 M sacharozy (dla każdego rozcieńczenia).

5.    Inkubację sacharozy z różnymi stężeniami enzymu (wg tabeli nr 1) przeprowadzić w temperaturze pokojowej. Natychmiast po wymieszaniu (t=0) pobrać z probówki nr 6, 1 ml mieszaniny inkubacyjnej do probówki zawierającej 2 ml 0,5% kwasu pikrynowego oraz 2 ml 10% NaOH i wstawić do wrzącej łaźni wodną' na 5 min.

6.    Następnie po upływie odpowiednio: 5-10-15*20 min, pobierać 1 ml mieszaniny inkubacyjnej do uprzednio przygotowanych probówek z odczynnikami i wstawiać do wrzącej łaźni na 5 min.

16


Wyszukiwarka

Podobne podstrony:
1 4skanowanie0001 KINETYKA REAKCJI ENZYMATYCZNYCH Odczynniki: *    flfpll bufor octan
skanowanie0011 Kinetyka reakcji enzymatycznych Wyprowadzenie równania Michaelisa-Menten. Stała Micha
szybkości reakcji chemicznej. 18.    Kinetyka reakcji enzymatycznych. Równanie
KINETYKA REAKCJI ENZYMATYCZNYCH Wyznaczanie stałej Michaelisa (KM) na przykładzie kwaśnej fosfatazy
Ćwiczenie 5aBadanie kinetyki reakcji enzymatycznych przy użyciu programu komputerowego Gepasi Gepasi
1 Kinetyka reakcji enzymatycznej 2 Mechanizm działania enzymów V
32710 WYKŁAD 2 enzymy cz 1 (32) KINETYKA REAKCJI ENZYMATYCZNEJ Przy większych stężeniach substrat
WYKŁAD 2 enzymy cz 1 (30) KINETYKA REAKCJI ENZYMATYCZNEJ 0 Wpływ stężenia substratu na szybkość r
WYKŁAD 2 enzymy cz 1 (31) KINETYKA REAKCJI ENZYMATYCZNEJPrzyczyny spadku szybkości reakcji enzyma

więcej podobnych podstron