PARAZYTOLOGIA-ĆWICZENIA 26-02-2002
INWAZJA-opis procesu zarażenia pasożytem ,opis faktu nosicielstwa i zakażenia
CHOROBA INWAZYJNA-choroba wywołana przez pasożyty,przebiegająca z objawami
PASOŻYT-wykorzystuje inny organizm jako środowisko życia,pokarm.wpływa niekorzystnie na żywiciela
OKRES PREPATENTNY (UTAJONY)-od zakażenia do uzykania przez pasożyta dojrzałości płciowej
OKRE PATENTNY (JAWNY)-pasożyty są dojrzałe i produkują postacie rozwojowe
EKSTENSYWNOŚĆ INWAZJI-procent zarażonych żywicieli
INTENSYWNOŚĆ INWAZJI-liczba pasożytów w jednym żywicielu
CYKL ROZWOJOWY-przemiany stadialne,wiele form i postaci rozwojowych
POSTAĆ INWAZYJNA-postać pasożyta w momencie zarażania
REZERWUAR INWAZJI-organizm zarażony pasożytami
ŹRÓDŁO INWAZJI-rezerwuar inwazji + środowisko zanieczyszczone formami inwazyjnymi
ZWALCZANIE INWAZJI-leczenie i zapobieganie
ŻYWICIEL:
-OSTATECZNY-pasożyt w nim rozmnaża się płciowo
-POŚREDNI-niezbędny w cyklu rozwojowym,w nim może zachodzić rozmnażanie bezpłciowe
-PARATENICZNY(REZERWOWY)-w nim mogą przebywać formy pasożyta ale nie jest on niezbędny w cyklu
-PRZYPADKOWY
METODY POBIERANIA MATERIAŁU DO BADAŃ PARAZYTOLOGICZNYCH
1.Próbka KAŁ z ziemi lub odbytnicy
od conajmniej 10% osobników ,nie mniej niż 5 próbek
do lodówki lub 10% formalina ,gdy próbka trafia do laboratorium później niż kilka godzin
2.ZESKROBINA
-na płytkę:tylko naskórek i skaryfikacje (zadrapania naskórka)
-głębokie zeskrobiny do 1 krwi
Pbieramy na szkiełko podstawowe,przykrywamy drugim szkiełkiem i zawijamy w papier
W zeskrobine chowamy nóż z zawartością do torebki
3.KREW-pobieramy: krew żylną pełną do probówki na antykoagulant
surowicę na skrzep
-pobieranie krwi włośniczkowej z naciętej skóry
-rozmaz
4.TKANKI
-mięsnie badamy bezpośrednio po pobraniu
-inne tkanki można utrwalać
KOPROSKOPIA
1.Rozmaz bezpośredni
2.Sedymentacja -do wykrywania ciężkich jaj,używamy medium (płyn) w sedymentacji,głównie H2O
3.Flotacja -wpływanie na powierzchnię ciał o ciężarze mniejszym niż ciężar medium (Nasycony r-ur NaCl),tą metodą można wykrywać większość pasożytów
3.Metoda Willisa-Shlaffa-roztwór kau do probówki do pełna + szkiełko nakrywkowe,jaja przyklejają się do szkiełka
4.Metoda McMastera-słuzy do określania liczby jaj,3g kał + 42 ml H20 ,wymieszać,do probówek wirukowych,po wirowaniu zlać H2O,do osadu 45 ml NaCl otrzymując roztwór nasycony,wymieszać i nakropić na komorę Mc Mastera Lj w obu kom.McMastera
Lj w 1g =------------------------------------ x 100
2
5.Metody mikroskopowe
VAJDY -kał uformowany (OWCE,KOZY,KRÓLIKI) na szkiełko podsawowym w kropli H2O,po 15 min. kał out i w płynie szukamy larw
-nieuformowany kał -w papce dołek i w niego H2O,po 20 min.płyn pod lupę
BAERMANNA -szkiełko z gazą ,na to kau,na lejek do H2O na 24h,upuszczmy płyn z lejka i szukamy larw
ZESKROBINY
-z użyciem 10% KOH
-Metoda Stefańskiego szkiełko zegarkowe z H2O o temperaturze 50*C,rozprowadzić zeskrobinę i szukać pasożytów
KREW
-Metoda „grubej kropli”-krew pobrana na antykoagulant,na szkiełko i oglądać lub wysuszyć i barwić
-Rozmaz-utrwalić termicznie lub metanolem,wybarwić Giemsą (20 minut) lub metodą Papentheima(May Grunwald+Giemsa)
TKANKI
głównie mięśnie w kierunki włośnicy ->Trichinoskopia
-metoda kompresorowa
przepona przecięta wzdłuż włókien i do kompresora,zmiżdżonatkanka pod mikroskop
-metoda wytrawiania
wytrawianie larw specjalnym r-rem
próbka 1g mięśnia przeponowego rozdrobiona
roztwór 1l H2O + 5 ml 37% Hcl
podgrzać do 44-46*C
dadać 3g pepsyny
na 1g mięśnia 20 ml r-ru barwiącego
Po zalaniu 30 minuty w temperaturze 44-46*C
40 ml płynu do probówki,odczekać 10 minut
30 ml odciągnąc ,pozostałe 10 ml oglądamy
-metoda histopatologiczna
ŚLUZ Z PRZEWODU POKARMOWEGO I DRÓG RODNYCH
są tam pierwotniaki
namnażamy je na specjalnych podłożach:Schneidera
Bartleta