2150626325

2150626325



Zakład Biologii Molekularnej UMCS, wrzesień 2014

Izolacja kinaz białkowych z drożdży Saccharomyces cerevisiae

Kinazy białkowe uczestniczą w regulacji wielu procesów metabolicznych, biorą udział w transmisji sygnałów przez błony, regulują procesy wzrostu i różnicowania się komórek.

Oczyszczanie enzymów jest stosowane w badaniach ich struktury i funkcji. W tym celu stosuje się metody chromatografii jonowymiennej, chromatografii powinowactwa i sączenia molekularnego, w których wykorzystuje się takie cechy białek enzymatycznych jak: ładunek, powinowactwo wiązania do nośników, wielkość. Poniżej podana jest jedna z metod oczyszczania białek przez rozdział w procesie chromatografii jonowymiennej (ang. ion exchange chromatography - IEC). Rozdział białek w technice LEC polega na odwracalnej adsorpcji obdarzonych ładunkiem elektrycznym makromolekuł na nośniku jonowymiennym (jonowymieniaczu). Jonowym i eni acz to złoże chromatograficzne z unieruchomionymi na powierzchni polarnymi cząsteczkami posiadającymi ładunek elektryczny określonego znaku. W zależności od tego jakie jony wiąże jonowymieniacz, mówimy o anionowymieniaczu (anionicie) - wiążącym aniony lub o kationowymi eni aczu (kationicie) - wiążącym kationy.

Celem ćwiczenia jest oczyszczenie kinaz białkowych PKA i CK2 z frakcji cytoplazmatycznej komórek drożdży na DEAE-celulozie (anionit) i P-l 1 celulozie (kationit).

Materiały i odczynniki

1.    Supematant postrybosomalny z drożdży S. cerevisiae

2.    DEAE-celuloza (DE-52) i P-ll celuloza wyrównoważone w buforze do preparatyki kinaz białkowych

3.    Bufor C (do preparatyki kinaz białkowych)

4.    0,2 M NaCl w buforze C

5.    0,4 M NaCl w buforze C

6.    0,7 M NaCl w buforze C

7.    Bufor C z dodatkiem 50% glicerolu

8.    Wąż dializacyjny

Wykonanie ćwiczenia

Chromatografia na DEAE-celulozie

1. Do 5 ml celulozy dodać odpowiednią ilość wysolonej na wcześniejszych ćwiczeniach frakcji cytoplazmatycznej, przyjmując, że 1 ml DE-52 wiąże 5 mg białka.



Wyszukiwarka

Podobne podstrony:
Zakład Biologii Molekularnej UMCS, wrzesień 2014Izolacja genomowego DNA z drożdży Saccharomyces
Zakład Biologii Molekularnej UMCS, wrzesień 2014Izolacja i elektroforetyczna analiza RNA z komórek
Zakład Biologii Molekularnej UMCS, luty 2015Izolacja genomowego DNA z drożdży Saccharomyces
Zakład Biologii Molekularnej UMCS, wrzesień 2014 UNIWERSYTET MARII CURIE-SKŁODOWSKIEJ WYDZIAŁ BIOLOG
Zakład Biologii Molekularnej UMCS, wrzesień 2014 5.    Kwaśny fenol (stały fenol nasy
Zakład Biologii Molekularnej UMCS, wrzesień 2014 5.    Górne fazy wodne przenieść do
Zakład Biologii Molekularnej UMCS, wrzesień 2014 7.    Bufor do precypitacji: 1,2 M N
Zakład Biologii Molekularnej UMCS, wrzesień 2014 11.    Supernatant odrzucić, a do
Zakład Biologii Molekularnej UMCS, wrzesień 2014Wykrywanie inhibitorów proteaz serynowych Proteazy
Zakład Biologii Molekularnej UMCS, wrzesień 2014 3.    Mieszaninę inkubować 30 min. w
Zakład Biologii Molekularnej UMCS, wrzesień 2014 2.    Delikatnie mieszać przez 10 mi
Zakład Biologii Molekularnej UMCS, wrzesień 2014Spis treści: 1.    Izolacja genomoweg
Zakład Biologii Molekularnej UMCS, wrzesień 2014 4.    Następnie do P-l 1 celulozy do
Zakład Biologii Molekularnej UMCS, wrzesień 2014 Materiały i odczynniki 1.    12-
Zakład Biologii Molekularnej UMCS, wrzesień 2014 Uwaga! Formowanie się sferoplastów można monitorowa
Zakład Biologii Molekularnej UMCS, wrzesień 2014 10.    Uzyskany osad DNA przemyć 1 m
Zakład Biologii Molekularnej UMCS, wrzesień 2014Amplifikacja genów kodujących rybosomowe białka P1A
Zakład Biologii Molekularnej UMCS, wrzesień 2014 starterów czy nieodpowiedniego stężenia jonów Mg+,
Zakład Biologii Molekularnej UMCS, wrzesień 2014 9. Odczynniki i zestaw do elektroforezy kwasów nukl

więcej podobnych podstron