cwiczenie izolacja kofeiny3 id Nieznany

background image

1 |

S t r o n a

Materiały dydaktyczne Katedry Biochemii i Neurobiologii WIMiC AGH

Przygotowano dla kursu: Biochemia, rok akademicki 2011-2012

Izolacja kofeiny z różnych produktów spożywczych.

Cele ćwiczenia:

1. Nabycie umiejętności prowadzenia prostych analiz laboratoryjnych stosowanych w

biochemii, chemii organicznej, biotechnologii oraz procesach produkcyjnych.

2. Zapoznanie się z technikami szacowania wydajności oczyszczania wybranego składnika z

różnych surowców.

3. Nabycie umiejętności bieżącego przetwarzania danych płynących z eksperymentów oraz

pracy we wzajemnie komunikujących się, niewielkich zespołach.

4. Szacowanie wydajności procesów chemicznych zachodzących podczas oczyszczania

substancji.

Przebieg ćwiczenia:

Ćwiczenie wykonywane jest w trzech grupach. Przed każdą z grup stoją odmienne zadania. Właściwa
współpraca i organizacja pracy zarówno w grupach, jak i interakcje pomiędzy grupami są gwarancją
prawidłowo wykonanych założeń ćwiczenia.

Warunki wykonania ćwiczenia:

Każda osoba wykonująca ćwiczenie MUSI posiadać okulary ochronne, dwie pary rękawiczek
nitrylowych lub lateksowych oraz fartuch. Brak wymienionych skutkują brakiem możliwości
przystąpienia do ćwiczenia.

Zakres materiału do samodzielnego przygotowania:

1. Kofeina: własności alkaloidu, występowanie, działanie na organizm człowieka,

rozpuszczalność, metody ekstrakcji z surowców naturalnych

2. Zagadnienia związane z ekstrakcją typu ciecz-ciecz (warunki, współczynnik podziału, prawo

podziału Nernsta)

3. Spektrofotometria: wykonywanie krzywej wzorcowej, wybór analitycznej długości fali,

absorbancja kofeiny

4. Techniki zagęszczania próbki (szczególnie liofilizacja – co to za proces, do czego służy?)
5. Własności dichlorometanu.

background image

2 |

S t r o n a

Materiały dydaktyczne Katedry Biochemii i Neurobiologii WIMiC AGH

Przygotowano dla kursu: Biochemia, rok akademicki 2011-2012

GRUPA 1

Podstawowe zadania:

1. Wykonanie krzywej wzorcowej stężeń kofeiny w dichlorometanie.
2. Oszacowanie stężeń próbek dostarczonych na podstawie wykreślonej krzywej wzorcowej.

Przebieg ćwiczenia dla grupy 1

Przygotowanie krzywej wzorcowej:

1. Rozpuścić otrzymaną naważkę czystej chemicznie kofeiny w dichlorometanie w ten sposób,

by końcowe stężenie wzorca wynosiło 0,1 mg/ml (100 ug/ml)

2. Wykonać pięć rozcieńczeń otrzymanego roztworu w dichlorometanie w ten sposób, by

finalnie uzyskać stężenia z tabeli poniżej. Objętość każdego z roztworów wzorcowych
powinna wynosić 1 ml (rozcieńczanie prowadzić w probówkach typu eppendorf 1,5 lub 2,0 ml
pamiętając o wysokiej lotności dichlorometanu).

3. Zmierzyć absorbancję każdego z roztworów wzorcowych przy pomocy spektrofotometru i

kiuwety kwarcowej przy analitycznej długości fali 255 nm.

4. Wykreślić (w przybliżeniu) zależność stężenia kofeiny od absorbancji przy 255 nm.

Tabela 1 – dane niezbędne dla przygotowania krzywej wzorcowej stężenia kofeiny.

Stężenie

(ug/ml)

Objętość r-ru 0,1

mg/ml (100 ug/ml)

Objętość

rozpuszczalnika

Absorbancja dla 255 nm

10

25

50

75

100

Krzywa wzorcowa

λ

Wykres zależności stężenia kofeiny od absorbancji

2,0

1,8

1,6

1,4

1,2

1,0

0,8

0,6

0,4

0,2

0,0

ug/ml

0

5

10

15

20

25

30

35

40

45

50

55

60

65

70

75

80

85

90

95

100

background image

3 |

S t r o n a

Materiały dydaktyczne Katedry Biochemii i Neurobiologii WIMiC AGH

Przygotowano dla kursu: Biochemia, rok akademicki 2011-2012

GRUPA 2

Podstawowe zadania:

1. Ekstrakcja kofeiny z dostarczonej kawy
2. Określenie zawartości kofeiny w kawie na podstawie krzywej wzorcowej przygotowanej przez

grupę 1 z uwzględnieniem wydajności procesu ekstrakcji obliczonego przez grupę 3

Przebieg ćwiczenia dla grupy 2

1. Odważyć 5 gramów zmielonej kawy.
2. Naważkę zalać gorącą wodą w objętości około 50 ml.
3. Mieszaninę mieszać delikatnie przez około 5 minut.
4. Wychłodzić mieszaninę do temperatury pokojowej.
5. Przesączyć przez lejek Büchnera z filtrem nitrocelulozowym posługując się pompką wodną.
6. Wykonać ekstrakcję do dichlorometanu (UWAGA – temperatura wrzenia dichlorometanu to

około 40°C, pamiętać o dokładnym wychłodzeniu roztworu wodnego!)

a. Roztwór wodny przelać do rozdzielacza
b. Dodać 2 ml dichlorometanu i delikatnie wytrząsać, okresowo odprowadzając gaz
c. Odstawić na statyw i odczekać do rozdzielenia faz
d. Fazę organiczną przelać do probówki polietylenowej 10 ml (biały korek), po czym

powtórzyć kroki 6a.-6c.

e. Jeśli do probówki dostała się pewna ilość fazy wodnej zwirować i zebrać pipetą
f. Faza organiczna prawdopodobnie będzie mętna. Przepipetować kilkukrotnie po czym

zwirować w ten sposób, by otrzymać klarowny roztwór dichlorometanu.

7. Pobrać niewielką objętość otrzymanego roztworu, rozcieńczyć 200x i oznaczyć absorbancję

roztworu (z pomocą grupy 1)

8. Odnieść otrzymaną absorbancję do krzywej wzorcowej wykreślonej przez grupę 1 i

oszacować finalne stężenie kofeiny w całej objętości dichlorometanu uwzględniając
rozcieńczenie.

9. Obliczyć stężenie kofeiny w otrzymanej próbce kawy uwzględniając wydajność ekstrakcji

oszacowaną przez grupę 3

background image

4 |

S t r o n a

Materiały dydaktyczne Katedry Biochemii i Neurobiologii WIMiC AGH

Przygotowano dla kursu: Biochemia, rok akademicki 2011-2012

GRUPA 3

Podstawowe zadania:

1. Ekstrakcja kofeiny z „napoju energetycznego” (N-Gine, Tiger, Red Bull, inny)
2. Określenie zawartości kofeiny w napoju i porównanie uzyskanej wartości z podaną na

etykiecie w celu oszacowania wydajności reakcji.

Przebieg ćwiczenia dla grupy 3

1. Odmierzyć około 40 ml napoju do probówki typu Falcon (V=50 ml) i odgazować (wytrząsanie

a potem zastosowanie homogenizatora ultradźwiękowego, parametry homogenizacji: moc
100%, przerwy około 20% czasu homogenizacji, czas 5 minut).

2. Wychłodzić roztwór do temperatury pokojowej (homogenizator ultradźwiękowy nagrzewa

roztwory homogenizowane).

3. Wykonać ekstrakcję do dichlorometanu (UWAGA – temperatura wrzenia dichlorometanu to

około 40°C, pamiętać o wychłodzeniu roztworu wodnego!)

a. Napój przelać do rozdzielacza
b. Dodać 2 ml dichlorometanu i delikatnie wytrząsać okresowo odprowadzając gaz
c. Odstawić na statyw i odczekać do rozdzielenia faz
d. Fazę organiczną przelać do probówki polietylenowej 5 ml (czerwony korek), po czym

powtórzyć kroki 3a.-3c.

e. Jeśli do probówki dostała się faza wodna – usunąć pipetą.

4. Pobrać niewielką objętość otrzymanego roztworu, rozcieńczyć 100x i oznaczyć absorbancję

roztworu z pomocą grupy 1

5. Odnieść otrzymaną absorbancję do krzywej wzorcowej wykreślonej przez grupę 1 i

oszacować finalne stężenie kofeiny w całej objętości dichlorometanu uwzględniając
rozcieńczenie.

6. Obliczyć stężenie kofeiny w 100 ml napoju i porównać otrzymaną wartość z danymi na

etykiecie.

7. Wykonać obliczenie wydajności reakcji. Wynik przekazać grupie 2.


Wyszukiwarka

Podobne podstrony:
izolacja kofeiny id 221168 Nieznany
Cwiczenia i kontrola magii id 9 Nieznany
Cwiczenia Access Podstawy 3 id Nieznany
cwiczenia z logiki B Stanosz id Nieznany
Cwiczenia 1 podstawy edycji id Nieznany
Cwiczenia Podsluch w sieci id 9 Nieznany
Cwiczenia 2 klasyfikacja RMR id Nieznany
cwiczenieHP3 instrukcja v6 id 1 Nieznany
Cwiczenia tworczego myslenia id Nieznany
cwiczenie 3a przepompownia id 1 Nieznany
Lab 2 Cwiczenia prolog listy id Nieznany
Cwiczenie 3 Strona tytulowa id Nieznany
Cwiczenia nr 2 RPiS id 124688 Nieznany
Choroby skory koni cwiczenie id Nieznany
cwiczenie 1b inkscape id 125205 Nieznany
Pascal Cwiczenia praktyczne id Nieznany
Antropomotoryka Cwiczenia 02 id Nieznany
Cwiczenie nr 15 id 125710 Nieznany

więcej podobnych podstron