Program ćwiczeń z mikrobiologii dla studentów III roku Wydziału Lekarskiego w roku akademickim
2008/2009.
Semestr zimowy
Zajęcia rozpoczynają się 6 października 2008 r.

ćwiczenie 1 (06-09.10.08)
Temat: Hodowla i morfologia bakterii. Cel badania bakteriologicznego.

Część teoretyczna
♦Organizacja i dyscyplina pracy w czasie ćwiczeń z mikrobiologii.
♦Omówić przebieg i cele badania mikrobiologicznego (preparaty bezpośrednie, hodowla, identyfikacja, antybiogram,
badanie serologiczne, interpretacja).
♦Typy mikroskopów używanych na ćwiczeniach: świetlny, z ciemnym polem widzenia, fluorescencyjny.
♦Morfologia bakterii.
♦Metody barwienia preparatów mikroskopowych: barwienie proste, złożone, pozytywne, negatywne, negatywno-
pozytywne.
Część praktyczna
♦Opisywanie morfologii kolonii na wybranych podłożach.
♦Sporządzanie i oglądanie w mikroskopie świetlnym preparatów ze stałych hodowli bakterii, barwienie metodą
Grama.
♦Demonstracja gotowych preparatów z bakterii w mikroskopie świetlnym.

ćwiczenie 2 (13-16.10.08)
Temat: Ziarniaki Gram-dodatnie: gronkowce i paciorkowce.
Część teoretyczna
♦Charakterystyka i chorobotwórczość Staphylococcus: aureus, epidermidis, saprophyticus i Micrococcus.
♦Charakterystyka i chorobotwórczość Streptococcus: pyogenes, pneumoniae, orale i Enterococcus.
Część praktyczna
♦Demonstracja hodowli na agarze z krwią, opis morfologii kolonii, rodzaje hemolizy.
♦Demonstracja gotowych preparatów z omawianych bakterii w mikroskopie świetlnym.
♦Testy identyfikacyjne dla gronkowców : wytwrzanie katalazy, CF, (wykonanie).Wrażliwość na nowobiocynę i
furazolidon , koagulaza (demonstracja), ID Staph. do odczytu.
♦Testy identyfikacyjne dla paciorkowców: wrażliwość na bacytracynę i optochinę, szereg biochemiczny dla
enterokoków, wykrywanie antygenów grupowych ( demonstracja ), API Strep. do odczytu.

ćwiczenie 3 (20-23.10.08)
Temat: Gram-dodatnie bakterie cylindryczne: laseczki, maczugowce,
promieniowce.
Część teoretyczna
♦Charakterystyka i chorobotwórczość laseczek: Bacillus anthracis, Clostridium tetani, Cl. difficile, Cl. botulinum ,
Cl. perfringens.
♦Charakterystyka i chorobotwórczość maczugowców – Corynebacterium diphtheriae .
♦Szczepionka DPT ( diphtheria, pertusis, tetanus )
♦Charakterystyka i chorobotwórczość promieniowców – Actinomyces i Nocardia.
Część praktyczna
♦Demonstracja hodowli omawianych bakterii.
♦Demonstracja gotowych preparatów bakteryjnych w mikroskopie świetlnym

barwionych metodami Grama, Neissera

i Mellera.
♦Testy identyfikacyjne dla promieniowców i maczugowców ( API ANA, Coryne.).
♦Próba Eleka (demonstracja – zdjęcie).

ćwiczenie 4 (27-30.10.08)
Temat: Gram-ujemne pałeczki jelitowe i niefermentujące.
Część teoretyczna
♦Charakterystyka i chorobotwórczość pałeczek Enterobacteriaceae: Salmonella, Shigella, Escherichia coli, Proteus,
Klebsiella.
♦Charakterystyka i chorobotwórczość pałeczek niefermentujacych :

Pseudomonas aeruginosa i Acinetobacter

baumanii.

1

Część praktyczna
♦Demonstracja hodowli bakterii na podłożach wybiórczych: Mac Conkey

,

a i SS (Enterobacteriaceae), oraz na agarze

zwykłym i Mac Conkey

,

a Pseudomonas i Acinetobacter ).

♦Demonstracja gotowych preparatów bakteryjnych w mikroskopie świetlnym.
♦Identyfikacja gramujemnych pałeczek: odczyt testów ID 32 GN dla Enterobacteriaceae, Pseudomonas i
Acinetobacter. Test na wytwarzanie oksydazy i barwników dla G(-) niefermentujących.

ćwiczenie 5 (04-06.11.08 i 10.11.08)
Temat: Bakterie spiralne: Treponema, Leptospira, Borrelia,
Campylobacter, Helicobacter.
Część teoretyczna
♦Charakterystyka i chorobotwórczość Treponema pallidum, Leptospira, Borrelia recurrentis i B. burgdorferi,
Campylobacter jejuni, Helicobacter pylori.
Część praktyczna
♦Demonstracja hodowli Campylobacter i Helicobacter.
♦Demonstracja bezpośredniego preparatu z bioptatu z H.pylori.
♦Demonstracja preparatu srebrzonego z Treponema pallidum .
♦Demonstracja Leptospira w mikroskopie z ciemnym polem widzenia.
♦Demonstracja bezpośredniego rozmazu krwi z B.recurrentis.
♦Oglądanie gotowych preparatów z Campylobacter i Helicobacter.

ćwiczenie 6 (17-20.11.08) Temat: Antyseptyka
Sprawdzian opisowy I z ćwiczeń od 1 do 5

Część teoretyczna
♦Omówienie preparatów stosowanych w antyseptyce na podstawie przygotowanych materiałów wcześniej
dostarczonych studentom.
Część praktyczna
♦Ocena skuteczności higienicznego mycia rąk (mycie + jednokrotna dezynfekcja) - jedna płytka agarowa z krwią dla
1 studenta.
Przygotowanie do następnego ćwiczenia: posiewy redukcyjne wymazów z błon śluzowych nosa, jamy ustnej i
skóry studenta na podłożach agarowych z krwią.

ćwiczenie 7 (24-27.11.08)
Temat: Flora fizjologiczna organizmu.
Część teoretyczna
♦Omówienie roli flory endogennej człowieka.
Część praktyczna
♦Odczyt posiewów własnych:
- ocena morfologii kolonii bakterii,
- wykonanie i ocena preparatów mikroskopowych sporządzonych z różnych kolonii i zabarwionych metodą Grama.
♦Wykonanie natywnych preparatów bezpośrednich z kieszonek zębowych i oglądanie ich w mikroskopie z ciemnym
polem widzenia.
♦Preparat bezpośredni z kału barwiony met. Grama – demonstracja.

ćwiczenie 8 (01-04.12.08)
Temat: Antybiotyki – część I
Część teoretyczna
♦Metody oznaczania wrażliwości bakterii i grzybów na antybiotyki:

- metoda krążkowo-dyfuzyjna (omówienie)
- metoda seryjnych rozcieńczeń w pożywce bulionowej i oznaczanie MIC i MBC (demonstracja)
- oznaczanie MIC metodą E-testu ( demonstracja )
- metoda rozcieńczenia leku w pożywce Loewensteina-Jensena dla prątków gruźlicy ( demonstracja )
- oznaczanie wrażliwości grzybów metodą Fungi-Test (demonstracja) .

Część praktyczna
♦Wykonanie antybiogramu metodą krążkowo-dyfuzyjną dla wybranych bakterii:

Staphylococcus aureus z ropy (czyraczyczność)
Staphylococcus aureus z wymazu z nosa (nosicielstwo)
Enterococcus faecalis z krwi (zapalenie wsierdzia)

2

Proteus mirabilis z moczu (zapalenie cewki moczowej)
Pseudomonas aeruginosa z ropy (rana pooperacyjna)

ćwiczenie 9 (08-11.12.08)
Temat: Antybiotyki – część II
Część teoretyczna
♦Omówienie wybranych mechanizmów oporności bakterii na antybiotyki – MRS, MLS

B

,VRE, GRE, MBL, HLAR,

ESBL.
Część praktyczna
♦Odczyt i interpretacja własnych antybiogramów.
♦Odczyt antybiogramów przygotowanych metodą ATB dla różnych bakterii.
♦Wykonanie testu z cefinazą – wykrywanie beta-laktamaz u Moraxella.
♦Demonstracja testu dwóch krążków wykonanego w celu wykrycia ESBL u Klebsiella pneumoniae (wynik dodatntni
i ujemny).
♦Demonstracja metody E-test do wykrywania ESBL.

ćwiczenie 10 (15-18.12.08)
Temat: Podstawy diagnostyki zakażeń wirusowych.
Sprawdzian opisowy II z ćwiczeń od 6 do 9

Część teoretyczna
♦Pobieranie i przesyłanie materiałów do badań wirusologicznych.
♦Metody hodowli wirusów.
♦Odczyny serologiczne w diagnostyce chorób wirusowych.
Część praktyczna
♦Demonstracja zakażonych wirusami linii komórkowych ( efekt cytopatyczny ).
♦Demonstracja hodowli wirusów bakteryjnych (łysinki).
♦Demonstracja odczynu Hirsta ( miareczkowanie wirusa ) i Hirsta-Salka.

(serologiczny odczyn zahamowania

aglutynacji).
♦Demonstracja odczynu ELISA.

Ćwiczenie 11 (05-08.01.09)
Temat: Podstawy diagnostyki zakażeń grzybiczych.
Część teoretyczna
♦Omówienie najczęściej występujących przypadków grzybic miejscowych i układowych oraz czynników
etiologicznych ( Candida, Cryptococcus, Aspergillus).
♦Omówienie pobierania, przesyłania i zasad hodowli grzybów chorobotwórczych.

Część praktyczna
♦Identyfikacja grzybów drożdżopodobnych:
- obserwacja morfologii hodowli na podłożu Sabourauda i Chromagar Candida,
- obserwacja blastospor i artrospor w preparatach barwionych metodą Grama,
- odczyt testu filamentacji (wykonanie preparatów natywnych),
- obserwacja charakterystycznych struktur (chlamydospor) w mikrohodowli,
- odczyt testu ID 32 C.
♦Identyfikacja grzybów pleśniowych:
- obserwacja morfologii hodowli Aspergillus i Penicillium na podłożu Czapka,
- wykonanie preparatów w laktofenolu i obserwacja charakterystycznych konidioforów.

Materiały teoretyczne do ćwiczeń diagnostycznych znajdują się na stronie internetowej: www.mbio.am.wroc.pl

Przygotowanie do następnego ćwiczenia.
Opracowanie próbek z górnych dróg oddechowych.
1. Pacjent z anginą – 2 wymazy z gardła: 1 preparat bezpośredni barwiony metodą Grama, 2-gi posiew na podłoża
agarowe: agar z krwią, Mac Conkey

,

a, Casmana.

2. Pacjent z ostrym zapaleniem nagłośni – wymaz spod nagłośni: posiew na podłoża: agar z krwią, Mac Conkey

,

a,

Casmana.

3

3. Pacjent z przewlekłym zapaleniem zatok – punktat z zatoki: preparat bezpośredni barwiony metodą Grama i
posiew na podłoża: agar z krwią,Mac Conkey

,

a, Casmana.

ćwiczenie 12 (12-15.01.09)
Temat: Zakażenia górnych dróg oddechowych.
Część teoretyczna
♦Omówienie możliwych czynników etiologicznych zakażeń górnych dróg oddechowych, ukierunkowanie i schemat
badania mikrobiologicznego. Pobieranie i przesyłanie próbek do badania.
Część praktyczna
♦ Odczyt posiewów próbek z górnych dróg oddechowych, identyfikacja wyhodowanych patogenów.
- Identyfikacja Streptococcus pyogenes: preparat mikroskopowy barwiony, metodą Grama (wykonanie), test
wrażliwości na bacytracynę (demonstracja ).
- Identyfikacja Haemophilus: preparat mikroskopowy barwiony metodą Grama ( wykonanie ) i wzrost na podłożu
Casmana w obecności czynników wzrostowych X i V ( demonstracja ).
- Identyfikacja Moraxella: preparat mikroskopowy barwiony metodą Grama ( wykonanie ) i wzrost na podłożu M-H z
krążkiem BC zawierającym glukozę i błękit bromotymolowy ( demonstracja ).
- Wykonanie testu cefinazowego wykrywającego beta-laktamazy u Moraxella i Haemophilus.
♦Demonstracja hodowli wybranych patogenów górnych dróg oddechowych:
- Staphylococcus aureus,
- Corynebacterium diphtheriae.
♦Demonstracja gotowych preparatów z w/w patogenów i preparatu bezpośredniego z wymazu z gardła chorego na
anginę Plauta-Vincenta w mikroskopie świetlnym.

Przygotowanie do następnego ćwiczenia.
Opracowanie próbek z dolnych dróg oddechowych.
1. Pacjent z zapaleniem płuc.
a/ próbka krwi na podłożu transportowo-wzrostowym po 24 godz. inkubacji;aseptyczny posiew na podłoża: agar z
krwią, Mac Conkey

,

a

b/ plwocina - posiew na podłoża: agar z krwią, Mac Conkey

,

a, Casmana iSabouraud.

2. Pacjent z zapaleniem płuc – wydzielina oskrzelowa - posiew na podłoża: agar z krwią, Mac Conkey

,

a, Casman,

Sabouraud.
3. Pacjent z zapaleniem płuc – plwocina - posiew na podłoża: agar z krwią, Mac Conkey

,

a, Casmana i Sabouraud.

ćwiczenie 13 (19-22.01.09)
Temat: Zakażenia dolnych dróg oddechowych.
Część teoretyczna
♦Omówienie możliwych czynników etiologicznych zakażeń dolnych dróg oddechowych, ukierunkowanie i schemat
badania mikrobiologicznego. Pobieranie i przesyłanie próbek do badania.
Część praktyczna
♦Odczyt posiewów próbek z dolnych dróg oddechowych, identyfikacja szczepów, odczyt i interpretacja
antybiogramów.
- identyfikacja Streptococcus pneumoniae: preparat mikroskopowy barwiony metodą Grama ( wykonanie ) test z
optochiną (demonstracja).
- identyfikacja Gram-ujemnych pałeczek: odczyt przygotowanych testów ID 32-GN
- odczyt antybiogramu dla Klebsiella ( ocena ESBL ) wykonanego metodą krążkowo-dyfuzyjną i dla Acinetobacter
wykonanego metodą ATB.
- badanie wrażliwości na penicylinę Streptococcus pneumoniae (demonstracja)
♦Demonstracja hodowli wybranych patogenów dolnych dróg oddechowych:
- Psudomonas aeruginosa
- Moraxella catarrhalis
♦Demonstracja gotowych preparatów z w/w patogenów w mikroskopie świetlnym.

SEMESTR LETNI

ćwiczenie 14 (16-19.02.09.)
Temat: Zakażenia przenoszone drogą płciową
Część teoretyczna
♦Omówienie zakażeń przenoszonych drogą płciową i czynników etiologicznych.
Część praktyczna – ćwiczenia demonstracyjne

4

- diagnostyka kiły:

- USR i TPHA do odczytu i interpretacji,
- FTA-ABS i ELISA do omówienia,
- preparat srebrzony z tkanki mózgowej,

- diagnostyka rzeżączki (GU):

- hodowla gonokoków na podłożu Roiron,
- wykonanie testu na oksydazę,
- interpretacja preparatu z ropy rzeżączkowej,
- omówienie testu przesiewowego Microcult GC,

- diagnostyka rzęsistkowicy:

- demonstracja preparatu z Trichomonas vaginalis (Giemsa),

- diagnostyka NGU:

- hodowla M.hominis ,
- Mycoplasma IST-test do odczytu i interpretacji,
- Chlamydia trachomatis (zakażona linia komórkowa Mc Coy

,

a foto.),

- diagnostyka grzybicy dróg rodnych (odwołanie do ćw. o grzybach).
Przygotowanie do następnego ćwiczenia.
♦ Opracowanie próbek moczu. Posiew ilościowy moczu od 3 pacjentów na agar z krwią Mac Conkey

,

a i

Sabourauda.

ćwiczenie 15 (23-26.02.09.)
Temat: Zakażenia układu moczowego
Sprawdzian opisowy III z ćw. od 10 do 14
Część teoretyczna
♦Omówienie możliwych czynników etiologicznych zakażenia, ukierunkowanie i schemat badania mikrobiologicznego
moczu. Pobieranie i przesyłanie moczu do badania.
(Materiały teoretyczne znajdują się na stronie internetowej: www.mbio.am.wroc. pl)
Część praktyczna
♦Odczyt posiewów moczu, identyfikacja szczepów, interpretacja antybiogramów:

- identyfikacja pałeczek jelitowych, odczyt szeregów biochemicznych i testów ID – 32E
- identyfikacja Staphylococcus: preparat barwiony metodą Grama, wykonanie szkiełkowych testów na

obecność CF i katalazy, odczyt testu ID-32 Staph, demonstracja wzrostu na podłożu Chapmana

- demonstracja testu Golda dodatniego i ujemnego

♦Demonstracja hodowli wybranych patogenów układu moczowego

- E.coli
- Klebsiella
- Proteus
- Staphylococcus epidermidis, St. saprophyticus, St. aureus
- Enterococcus faecalis
- Candida albicans

♦Demonstracja gotowych preparatów ww. patogenów w mikroskopie

świetlnym.

♦Demonstracja Uriline , Uricult – gotowy zestaw namnażający do ilościowego posiewu moczu.
Przygotowanie do następnego ćwiczenia.
♦ Opracowanie próbek kału. Posiewy wymazów z odbytu od trzech pacjentów na podłoża wybiórcze: Mac
Conkey

,

a, SS i SF.

ćwiczenie 16 (2-5.03.09.)
Temat: Zakażenia układu pokarmowego
Część teoretyczna
♦Omówienie możliwych czynników etiologicznych zakażeń, ukierunkowanie i schemat badania mikrobiologicznego
kału. Pobieranie i przesyłanie próbek do badania.
(Materiały teoretyczne znajdują się na stronie internetowej: www.mbio.am.wroc. pl)
Część praktyczna
♦ Odczyt posiewów kału, identyfikacja szczepów:

- odczyt testów ID-32GN,
- typowanie serologiczne szczepów metodą aglutynacji szkiełkowej (demonstracja Salmonella)

♦Demonstracja hodowli wybranych patogenów układu pokarmowego:

- Salmonella
- Shigella
- Escherichia coli

5

- Yersinia enterocolitica
- Campylobacter jejuni.

♦Demonstracja testu do wykrywania rotawirusów

- Slidex Rota Kit

♦Odczyn Widala ( demonstracja )
Przygotowanie do następnego ćwiczenia.
♦Opracowanie próbek z tk.miękkich (ropa):
1. Pacjent z ropniem podprzeponowym:
Preparat bezpośredni, posiew na podłoża: agar z krwią, MC, oraz dla beztlenowców – agar Schaedlera z krwią i
płynne podłoże tioglikolanowe.
2. Pacjent z czyrakiem mnogim:
Preparat bezpośredni, posiew na podłoża: agar z krwią, MacConkey

,

a, Schaedlera z krwią i płynne podłoże

tioglikolanowe.
3. Pacjent z raną po oparzeniu:
Preparat bezpośredni, posiew na podłoża: agar z krwią, Mac Conkey

,

a, bulion cukrowy. (w każdym materiale 2

wymazy)

ćwiczenie 17 9-12.03.09.)
Temat: Zakażenia skóry i tkanek miękkich
Część teoretyczna
♦Omówienie możliwych czynników etiologicznych zakażeń, ukierunkowanie i schemat badania mikrobiologicznego
ropy. Pobieranie i przesyłanie próbek do badania.
(Materiały teoretyczne znajdują się na stronie internetowej: www.mbio.am.wroc. pl )
Część praktyczna
♦Odczyt posiewów próbek ze zmian ropnych, identyfikacja szczepów, interpretacja antybiogramów.
- Identyfikacja Gram-ujemnych pałeczek: odczyt testów ID 32 GN
- Identyfikacja Staphylococcus: preparat z hodowli własnej barwiony metodą Grama, wykonanie testu na katalazę,
demonstracja reakcji na koagulazę, odczyt testu ID-32 Staph.
- Identyfikacja Bacteroides – odczyt testu API 20A.
- Odczyt i interpretacja antybiogramów przygotowanych dla wyhodowanych szczepów.
- Identyfikacja Pseudomonas – reakcja na oksydazę.
♦Demonstracja hodowli wybranych patogenów zakażeń skóry i tkanek miękkich.

- Escherichia coli
- Pseudomonas aeruginosa
- Staphylococcus aureus
- Bacteroides fragilis

♦Demonstracja gotowych preparatów z ww. bakterii w mikroskopie świetlnym.
Przygotowanie do następnego ćwiczenia.
Opracowanie próbek: płynu mózgowo-rdzeniowego.
1. Pacjent z zapaleniem opon mózgowo-rdzeniowych:

a/ płyn mózgowo-rdzeniowy na podłożu transportowo-wzrostowym Meningomedium po 24 godz. inkubacji;

aseptyczny posiew na podłoża agarowe: TSA z krwią, Mac Conkey

,

a, Casmana,

b/ Próbka płynu mózgowo-rdzeniowego w jałowej probówce; preparat bezpośredni barwiony metodą Grama (
wykonanie ) i testy koaglutynacji lateksowej wykrywające antygeny bakteryjne (demonstracja),
c/ krew na podłożu transportowo-wzrostowym po 24 godz. inkubacji, aseptyczny posiew na podłoże agarowe:
TSA,Mac Conkey

,

a, Casmana,

2. Pacjent z zapaleniem opon mózgowo-rzdeniowych

- krew na podłożu transportowo-wzrostowym po 24 godz. Inkubacji; aseptyczny posiew na podłoża agarowe:

agar z krwią i Mac Conkey

,

a.

3. Pacjent z ropniem mózgu.

- krew na podłożu transportowo-wzrostowym po 24 godz. Inkubacji; aseptyczny posiew na podłoża agarowe:

agar z krwią i Mac Conkey

,

a.

ćwiczenie 18 (16-19.03.09.)
Temat: Zakażenia centralnego układu nerwowego
Część teoretyczna
♦Omówienie możliwych czynników etiologicznych zakażeń, ukierunkowanie i schemat badania mikrobiologicznego
kału. Pobieranie i przesyłanie próbek do badania.
(Materiały teoretyczne znajdują się na stronie internetowej:www.mbio. am.wroc. pl )

6

Część praktyczna
♦Odczyt posiewów próbek z centralnego układu nerwowego i interpretacja antybiogramów.
- Identyfikacja Neisseria meningitidis: preparat mikroskopowy barwionyMetodą Grama i test na oksydazę
(wykonanie)
- Identyfikacja Steptococcus orale: preparat mikroskopowy barwiony metoda Grama (wykonanie), test wrażliwości na
optochinę (demonstracja)
- Identyfikacja Enterobacter: odczyt testu ID-32GN.
- Odczyt przygotowanego antybiogramu dla Enterobacter i Str. orale.

Demonstracja hodowli – wybranych patogenów krwi i płynu mózgowo-rdzeniowego:

- Neisseria meningitidis
- Streptococcus agalactiae
- Streptococcus orale
- Escherichia coli
- Enterobacter cloaceae
- Candida albicans

Demonstracja gotowych preparatów z w/w drobnoustrojów w mikroskopie świetlnym.
Demonstracja podłoży transportowo-namnażających do posiewów krwi, płynu mózgowo-rdzeniowego.
Demonstracja aparatu Bact Alert do hodowli posiewów.
Przygotowanie do następnego ćwiczenia.
Opracowanie próbek krwi:
2. Pacjent z zapaleniem wsierdzia:

- krew na podłożu transportowo-wzrostowym po 24 godz. Inkubacji; aseptyczny posiew na podłoża agarowe:

agar z krwią i Mac Conkey

,

a.

3. Pacjent z posocznicą:

- krew na podłożu transportowo-wzrostowym po 24 godz. Inkubacji; aseptyczny posiew na podłoża agarowe:

agar z krwią i Mac Conkey

,

a.

ćwiczenie 19 (23-26.03.09.)
Temat: Zakażenia ogólnoustrojowe (sepsa)
Sprawdzian opisowy IV z ćw. od 15 do 19
Część teoretyczna
♦Omówienie możliwych czynników etiologicznych zakażeń, ukierunkowanie i schemat badania mikrobiologicznego
krwi. Pobieranie i przesyłanie próbek do badania.
(Materiały teoretyczne znajdują się na stronie internetowej: www.mbio.am.wroc. pl )
Część praktyczna
♦Odczyt posiewów próbek z krwi i interpretacja antybiogramów.
- Identyfikacja Steptococcus orale: preparat mikroskopowy barwiony metoda Grama (wykonanie ), test wrażliwości
na optochinę (demonstracja )
- Identyfikacja Enterobacter: odczyt testu ID-32GN.
- Odczyt przygotowanego antybiogramu dla Enterobacter i Str. orale.

Demonstracja hodowli – wybranych patogenów krwi i płynu mózgowo-rdzeniowego:

- Neisseria meningitidis
- Streptococcus agalactiae
- Streptococcus orale
- Escherichia coli
- Enterobacter cloaceae
- Candida albicans

Demonstracja gotowych preparatów z w/w drobnoustrojów w mikroskopie świetlnym.
Demonstracja podłoży transportowo-namnażających do posiewów krwi, płynu mózgowo-rdzeniowego.
Demonstracja aparatu Bact Alert do hodowli posiewów.

ćwiczenie 20 (30.04- 2.05.09)
Egzamin praktyczny

Wykonanie preparatu z hodowli, barwienie metodą Grama i wstępna identyfikacja drobnoustroju.
Ocena gotowego , barwionego preparatu mikroskopowego w mikroskopie świetlnym.

7