background image

 

 

 

Instrukcja do ćwiczenia: 

 
 
 
 

Chromatografia Cienkowarstwowa 

 
 

 

 
 
 
 
 
Kierunek: Biotechnologia 
Rok II 
Przedmiot: Procesy rozdzielania i oczyszczania produktów biotechnologicznych – laboratorium 
Opracował dr Tomasz Girek 
 

Częstochowa 2008 

INSTYTUT CHEMII I OCHRONY ŚRODOWISKA 

WYDZIAŁ MATEMATYCZNO – PRZYRODNICZY 

AKADEMIA im. JANA DŁUGOSZA  

CZĘSTOCHOWA 

background image

 

1.  Wprowadzenie 

 

Chromatografia  adsorpcyjna  jest  najstarszą  metodą  chromatograficzną.  Wykorzystuje  różnice  w 

adsorpcji  związków  chemicznie  podobnych  na  powierzchni  sproszkowanego  i  nasyconego 
rozpuszczalnikiem adsorbentu. 

Adsorbent  nie  może  reagować  z  substancjami  rozdzielanymi  ani  z  rozpuszczalnikiem,  musi  być 

nierozpuszczalny  w  danym  rozpuszczalniku  i  wykazywać  odpowiednią  aktywność  w  wiązaniu 
rozdzielanych  substancji.  Rozdział  zależy  od  natury  adsorbentu  i  rozpuszczalnika.  Poniżej  podano 
najczęściej używane adsorbenty i rozpuszczalniki uporządkowane według wzrastającej aktywności: 

Adsorbenty: sacharoza < skrobia < talk < węglan sodowy < węglan potasowy < węglan wapniowy < 

fosforan  wapniowy  <  węglan  magnezowy  <  tlenek  magnezowy  <  tlenek  wapniowy  <  żel 
krzemionkowy < krzemian magnezowy < tlenek glinowy < węgiel aktywny < ziemia Fullera. 

Rozpuszczalniki: eter naftowy (benzyna lekka) < czterochlorek węgla < cykloheksan < dwusiarczek 

węgla < eter etylowy < aceton < benzen < estry kwasów organicznych < chloroform < etanol < woda 
(zależnie od pH i rozpuszczonych soli) < pirydyna < kwasy organiczne. 

Najsilniej  adsorbuje  węgiel  aktywny  i  ziemia  Fullera,  najsłabiej  sacharoza  i  skrobia.  Najlepiej 

adsorbują  się  związki  rozpuszczone  w  eterze  naftowym,  a  najsłabiej  w  pirydynie,  wodzie  i 
kwasach organicznych. Do elucji lepiej nadają się rozpuszczalniki polarne (etanol, woda, pirydyna) 
niż niepolarne, takie jak eter naftowy czy chloroform. 

W  chromatografii  adsorpcyjnej  rozdział  zależy  od  siły,  z  jaką  dana  substancja  jest  adsorbowana  z 

rozpuszczalnika  otaczającego  fazę  stałą.  Warunkiem  uzyskania  dobrego  rozdziału  jest  równomierne 
wypełnienie  kolumny  suchym  i  odpowiednio  oczyszczonym  adsorbentem  oraz  właściwe  wymiary 
kolumny. Najczęściej stosunek średnicy rurki szklanej do jej długości wynosi 1:20. 

W trakcie sączenia badanego roztworu przez kolumnę substancje silniej adsorbowane przesuwają się 
wolniej,  a  słabo  adsorbowane  —  szybciej.  W  przypadku  barwników  roślinnych,  na  różnej 
wysokości  kolumny  powstają  barwne  pasma  odpowiadające  poszczególnym  barwnikom.  W  celu 
lepszego rozdzielenia pasm kolumnę przemywa się tym samym rozpuszczalnikiem, albo innym o większej 
sile wymywania, wskutek czego warstwy szybciej przesuwają się ku dołowi i lepiej się rozdzielają. 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 

background image

II. Cel i wykonanie ćwiczenia 
 

Celem 

ć

wiczenia 

jest 

chromatograficzne 

rozdzielenie 

barwników 

organicznych 

nieorganicznych, oraz poszukiwanie najlepszego eluentu w chromatografii TLC. 
 

Ć

wiczenie 1.  Wykrywanie kwasu askorbinowego (witaminy C) w soku z pomarańczy lub cytryny 

Sprzęt:

 probówki, zlewki 100ml, szkiełka zegarkowe, kapilary, bagietki, cylinder miarowy 10ml 

Odczynniki: 

substancja  wzorcowa  (tabletka  witaminy  C  rozpuszczona  w  wodzie),  sok  z  cytryny  lub 

pomarańczy, eluent: etanol i benzen w stosunku 3:1, wywoływacz chromatogramu - jod. 

Wykonanie: 

Niewielką ilość badanego soku wlać do probówki i dodać wody do połowy jej objętości. Po 

wymieszaniu  bagietką,  roztwór  nanieść  przy  pomocy  kapilarki  na  linię  startową  płytki 
chromatograficznej. W pewnej odległości od powstałej plamy nanieść krople substancji wzorcowej. Po 
wysuszeniu  plam,  płytkę  umieścić  w  komorze  chromatograficznej  zawierającej  etanol  i  benzen.  Gdy 
mieszanina  rozpuszczalników  znajdzie  sie  w  odległości  ok.  2  cm  od  górnej  krawędzi  płytki,  należy  ją 
wyjąć  z  komory  chromatograficznej  i  przenieść  do  drugiej  komory,  na  dnie  której  umieszczono 
niewielką ilość jodu. Chromatogram nasycony parami jodu identyfikuje witaminę C zawartą w soku. 

Na  podstawie  otrzymanego  chromatogramu,  wyznaczyć  współczynnik  R

(współczynnik  przesunięcia) 

dla poszczególnych składników mieszaniny i substancji wzorcowych, korzystając z zależności:  

B

A

R

f

=

 

gdzie:   A - odległość plamy substancji rozdzielonej od miejsca (środka) nałożenia na płytce. 

B - odległość frontu rozpuszczalnika od miejsca nałożenia próbki.

 

Ć

wiczenie 2.  Poszukiwanie najlepszego eluentu dla mieszaniny amin aromatycznych 

Sprzęt:

 płytki chromatograficzne, probówki, zlewki 100ml, szkiełka zegarkowe, kapilary, bagietki, 

cylinder miarowy 10ml, lampa UV 

Odczynniki:

 o-nitroanilina, p-nitroanilina, heptan, heksan, izopropanol 

 
Wykonanie:

 

Na  płytki  z  żelem  krzemionkowym  nanieść  „plamki  startowe”  orto-nitroaniliny  i  para-

nitroaniliny  w  heptanie.  Plamki  nanosimy  na  żel  za  pomocą  kapilary.  Płytki  należy  wstawić  do  komory 
chromatograficznej i rozwijać w kilku alternatywnych układach rozpuszczalników (heksan z 5%, 10%, 15%, 
20%, 25% zawartością izopropanolu v/v). Płytki rozwijać do linii mety. Po rozwinięciu płytki TLC oglądać 
w świetle lampy UV, przy długości światła 254nm i 360 nm.

 

•  Na podstawie uzyskanych chromatogramów wyznaczyć wartości R

analizowanych substancji, 

oddzielnie dla poszczególnych warunków rozdzielania.  

• 

Na podstawie wartości R

uzyskanych z zastosowaniem różnych eluentów zaproponować optymalny 

skład fazy ruchomej do rozdzielania mieszaniny amin aromatycznych

 

 
 
 
 

 

background image

Ć

wiczenie 3.  Chromatografia cienkowarstwowa tuszów flamastrów na żelu krzemionkowym 

 

Sprzęt:

 płytki chromatograficzne, probówki, zlewki 100ml, szkiełka zegarkowe, płytka porcelanowa z 

wgłębieniami, kapilary, bagietki, cylinder miarowy 10ml, 
 
Odczynniki:

 octan etylu, etanol, woda, różne mazaki 

 
Wykonanie:

 

Na płytki z żelem krzemionkowym nanieść „plamki startowe” mazaków o różnych kolorach, w 

razie  problemów  z  naniesieniem  plamek  zanurzamy  na  moment  końcówkę  mazaka  w  niewielkiej  ilości 
etanolu lub acetonu w zagłębieniu płytki porcelanowej. Plamki nanosimy na żel za pomocą kapilary. Płytki 
należy  wstawić  do  komory  chromatograficznej  i  rozwijać  w  eluencie  o  składzie:  octan  etylu,  etanol,  woda 
5:3:2. Płytki rozwijać do linii mety. Po rozwinięciu płytki TLC oglądać w świetle dziennym oraz pod lampą 
UV, przy długości światła 254nm i 360 nm.