Leptospira spp.

Spirochaetes
Spirochaetales
Leptospiraceae
17 gatunków
26 serogrup
200 seroptypów (seorwarów),

Leptospira - patogen

• 13 gatunków patogennych
• 4 genogatunki

• L. interrogans
• L. borgpetersenii serowar hardjo

Podział

gatunków/serowarów

• Nieaptogenne

• Srodowisko wodne
• saprofit

• Patogenne

• Brak zdolności

wzrostu poza
żywcielelem

• Specyficzność

gatunkowa

Leptospira

interrogans

lp serogrupa serotyp

występowanie

1 Icterohae

morrhagi

e

Icterohae

morrhagi

e

Gryzonie, lisy, Ca, Su, Bo,
Ho, inne zwierzęta

nieudomowione

2 Canicola

Canicola

Ca, lisy, Su, Bo, gryzonie,

inne zwierzęta
nieudomowione

3 Grippotyp

hosa

Grippoty

phosa

j.w.

i Eq, Ho

4 Pomona

Pomona

j.w

5 Sejroe

Balcanic

a

Bo

6 Tarrasovi Tarrasovi Su

Listeria

Etiologia

 Cechy hemolizy wykazują tylko

L. monocytogenes, L. ivanovii

i L. seeligeri.

 Kokopałeczka G +.
 Rośnie dobrze na zwykłych podłożach w temp.

od 4 do 44°C (od <0 do 44 °C)

 Przeżywa zamrażanie
 Cechuje ją ruch (w odróżnieniu od włoskowca

różycy).

 Mogą być używane do izolacji podłoża selektywne

(np. azydek sodu).

Etiologia c.d.

 Jest zarazkiem ubikwitarnym względnie

chorobotwórczym.

 Antygeny:

– Somatyczny - 0
– Rzęskowy - H

 Znanych jest 15 antygenów 0 (I-XV) i 5 H (A-E).
 Znanych jest 7 serotypów i 14 podtypów.
 Obecnie mówi się o 13 serotypach ale 4b, 1/2a,

1/2b i 3 mają znaczenie kliniczne.

Designation

O - Antigens

H -

Antigens

Paterson

Seelinger-Donker-Voet

AB

1

1/2a

I II (III)

ABC

1/2b

I II (III)

BD

2

1/2c

I II (III)

AB

3

3a

II (III) IV

ABC

3b

II (III) IV

BD

3c

II (III) IV

ABC

4

4a

(III) (V) VII IX

ABC

4ab

(III) V VI VII IX

ABC

4b

(III) V VI

ABC

4c

(III) V VII

ABC

4d

(III) (V) VI VIII

ABC

4e

(III) V VI (VIII) (IX)

ABC

4f

(III) V XV

ABC

4g

(III) V VI VII X XI

ABC

5

(III) (V) VI VIII X

ABC

6

(III) VII VIII XI

ABC

7

(III) XII XIII

ABC

L. gray

(III) (XII) XIV

E..

L. murray

(III) (XII) XIV

E..

Serovars of L. monocytogenes and their relations to L. gray and L. murrayi

Listerioza

Klimat

Środowisko

Owady ssąco-kłujące

Myszowate

Wydzieliny i

wydaliny zwierząt

Kurz

Kurz

Zanieczyszczone rośliny

Aktywne i silne

zanieczyszczenia

(kiszonka z kukurydzy)

Bierne i słabe

zanieczyszczenia

(jarzyny)

Zakażenia pokarmowe

Możliwości

zakażenia

Kliniczna listerioza u ludzi

Kliniczna listerioza u zwierząt

(zima-wiosna) ukł. nerwowy; ukł. rozrodczy (lato-jesień)

Listerioza

sapronosis

hydrotelluric

Różne stresy

Różne

stresy

Szczepienia,

błędy

żywieniowe

Terapia

antybiotykowa

p. pok.

Listerioza

antropozoonoza

Wrodzona

listerioza

Kontakt bezpośredni

Kontakt pośredni (mleko, jaja)

Encephalitis

• Bydło 1-2 tygodnie
• Owce i cielęta 3-4 dni
• Młode kozy 2-3 dni

• Endophtalmitis przez n. wzrokowy
• Panophtalmitis – długim, przewlekłym

przebiegu

Odporność

 Odporność komórkowa i humoralna odgrywa w

listeriozie istotną rolę.

 Częściej badamy odporność humoralną metodami:

– aglutynacji,
– precypitacji,
– OWD,
– biernej hemaglutynacji,
– testem ELISA.

 Interpretacja miana jest trudna, u owiec utrzymuje

się dłużej (kilka lat) u bydła spada szybciej.

Rozpoznanie

 Postać mózgowa może być mylona:

– u owiec z toksemia ciążową,
– u bydła z ketozą (forma nerwowa).

 Ketoza u bydła na ogół pojawia się krótko po

porodzie.

 Toksemia ciążowa owiec występuje tylko pod

koniec ciąży (zwykle ciąża bliźniacza lub błędy

żywieniowe).

 W przypadku ronienia należy wykluczyć inne

czynniki zakaźne.

Rozpoznanie

 Laboratoryjne badanie przyżyciowe mało

patognomiczne;

– hematologia (monocytoza częściej występuje

u monogastrycznych zwierząt).

– Serologia (serokonwersja)

 Pośmiertnie:

– sekcja,

– bakteriologia,

– Histopatologia (łatwa),
– IF (trudna interpretacja).

Diagnostyka

 Zarazek w przypadkach encephalitis można

izolować z mózgu w przypadku posocznicy z
wątroby, śledziony i płuc.

Przypadek

potwierdzony UE

• Laboratoryjne kryteria diagnozy

– izolacja krętków Leptospira z materiału

klinicznego

– wykazanie specyficznego narastanie miana

swoistych przeciwciał w teście aglutynacji
mikroskopowej lub ELISA

– wykazanie obecności krętków Leptospira w

materiale klinicznym metodą
immunofluorescencji

– wykrycie swoistych dla krętków Leptospira

przeciwciał klasy IgM