Jednostka chorobowa |
Enzootyczna bronchopneumonia cieląt |
Chlamydiozy i chlamydofilozy |
Bruceloza |
IBR/IPV |
Głowica |
BVD/MD |
etiologia |
czynniki zakaźne (BHV-1, PI-3, BVDV, BRSV, a także Mycoplasma bovis, M. dispar, Ureaplasma, P. multocida, Mannheimia heamolytica, Haemophilus somnus, Chlamydie) |
Chlamydia i Chlamydophila
|
B. abortus, B. melitensis, B. ovis, B. suis (wszystkie oprócz B. ovis i biovaru 5 B. suis są patogenne dla Ho) |
BHV-1 (Herpeswirus bydlęcy Typu 1) - konkretnie podtypy BHV-1.1 (IBR-podobne) oraz BHV-1.2 (IPV-podobne) |
podgrupa MCFV: OvHV-2 - u owiec, AlHV-1 - u antylop gnu, CpHV-2 - u kóz, MCFV-WTD
|
Pestivirus (Flaviviridae) |
Właściwości antygenowe |
|
cechy pośrednie między wirusami a bakteriami (małe, rosną tylko na podłożach kom. a mają ścianę komórkową, RNA, DNA i organelle kom., i są wrażliwe na niektóre chemioterapeutyki) 2 postacie morfologiczne: ciałka elementarne (EB) - postać inwazyjna → do wnętrza komórek → inkluzje → ciałko siateczkowate (RB) → intensywne podziały → choroba / latencja |
|
|
|
zakażenie 40 - 120 dniem ciąży (okres rozwoju tolerancji płodu na własne antygeny) → pojawia się również tolerancja na antygeny wirusa (odpowiedź immunologiczna tylko na odmienne antygenowo BVDV) zakażenie w 2 i 3 trymestrze ciąży oraz noworodków → zdrowe cielę (zwalczyło infekcję) lub chore cielę (tylko przejściowo zakażone !!! ) |
chorobotwórczość |
|
|
|
|
|
|
Występowanie/ układy |
|
zarazek w poronionych płodach i wodach płodowych |
ronienia, placentitis, epididymitis, orchitis |
|
latencja !!! (rezerwuar AlHV-1 większość antylop gnu w ZOO i na wolności) |
|
wrażliwość |
cielęta 2 tyg. - 3 -5 mcy |
|
|
|
chorują parzystokopytne: przeżuwacze, świnie, dzikie |
|
Epidemiologia |
Takie BRDC tylko, że u cieląt i najczęściej podostre albo przewlekłe
|
postaci zakażeń: kliniczne i bezobjawowe (najczęściej) |
zakażenie: gł. przez kontakt z łożyskiem, poronionym płodem, wodami płodowymi, wydzieliną z pochwy, ale też z mlekiem, moczem i nasieniem (również z kałem, śliną) |
kontaktowo, krycie / inseminacja, transfer zarodków, pośrednio (przedmioty)
- IPB (zapalenie żołędzi, prącia i napletka) → stulejka / załupka |
|
wiremia do końca życia i sianie wirusa jeśli będzie to samica i dożyje dojrzałości hodowlanej (mały odsetek) → będzie zakażała swoje młode
na skutek mutacji biotypu niecytopatogennego do cytopatogennego zakażenie z zewnątrz biotypem cytopatogennym, ale odrębnym antygenowo śmiertelny przebieg: gorączka, biegunka, liczne nadżerki na błonach śluzowych, kulawizny → śmierć
są częstsze niż trwałe |
Źródła i wrota |
|
zakażenie: p.o., inhalacja, krycie / inseminacja |
|
|
|
|
Okres inkubacji |
|
|
|
|
|
|
patogeneza |
|
namnożenie w migdałkach / w błonie śluzowej żołądka → do krwi → chlamydemia → do narządów predysponowanyc |
|
namnażanie się w komórkach nabłonka błony śluzowej → do krwi / przez nerwy / przez ciągłość tkanek → zasiedlanie predylekcyjnych narządów |
|
najczęściej subklinicznie (czasem klinicznie, w tym nadostro - zwłaszcza u płodów i cieląt); chyba, że wprowadzamy osobnika chorego do stada wolnego od BVDV (ale mało jest takich stad) |
śmiertelność |
|
|
|
|
|
|
Objawy |
suchy kaszel → gorączka → wyzdrowienie / pogorszenie / powikłanie → duszność, wilgotny kaszel, wypływ z nosa, biegunki |
Chlamydia bovoculi
Chlamydophila psittaci chorują też ludzie !!! zapalenia płuc, ronienia(od ptaków) cielęta zapalenie jelit gł. źródło - ptaki (kaczki, indyki, gołębie) dorosłe bydło ronienia (8-9mcu ciąży), rodzenie słabych cieląt → giną Chlamydophila pecorum
Chlamydophila abortus
krowa roni tylko raz; kolejne młode są słabsze
|
|
gorączka, depresja, spadek apetytu, przekrwienia i zmiany na błonach śluzowych, martwica skóry okolicy nozdrzy wydzielina z nosa, ronienia (ostatni trymestr), bezpłodność |
posocznicowa (nadostra) gorączka, spadek apetytu, mleczności, biegunki, nagłe upadki AP: słabo zaznaczone; zwyrodnienie miąższowe nerek, serca, wątroby; powiększenie śledziony i węzłów chłonnych głowowo-oczna zapalenie jamy ustnej, krwawienia, ślinienie, wysięk z jam nosowych o nieprzyjemnej woni, kaszel, duszności, obustronne zapalenie rogówek i spojówek, tęczówki, ciałka rzęskowego; obrzęk powiek, nagromadzenie włóknika, dośrodkowe zmętnienie i owrzodzenie rogówki, panophthalmitis → wypadnięcie tęczówki |
biegunka, zapalenia dróg oddechowych (nadżerki, kaszel), leukopenia, charłactwo cieląt, ronienia, embriopatie (niedorozwój móżdżku); albo choroboa błon śluzowych |
AP |
|
|
B.abortus AP: płody: autoliza, obrzęk podskórza, krwisty płyn w jamach ciała, wątroba / śledziona powiększone, włóknikowe zapalenie płuc / opłucnej; dorosłe: placentitis (ogniskowe przekrwienia i obrzęki / martwica kotyledonów), ropne zmiany w wymieniu, węzłach chłonnych nadwymieniowych, kościach, stawach; u samców: jednostronne lub obustronne epididymitis i orchitis B.melitensis AP: jak w B. abortus B.ovis AP: jednostronne lub obustronne epididymitis / orchitis, zanik i zwłóknienie miąższu jądra, zrosty torebki pochwowej B.suis AP: jak w B. abortus |
zmiany w błonach śluzowych jamy nosowej i tchawicy (dalej brak !!! ) |
AP: obrzęk błon śluzowych, pokrytych nalotem włóknikowym; nadżerki i owrzodzenia; nieżytowe do ropno-włóknikowego zapalenia płuc; obluzowanie rogów jelitowa często razem z głowowo-oczną spadek apetytu, zaparcia, biegunki, objawy morzyskowe, kał suchy, papkowaty z krwią AP: błona śluzowa trawieńca i jelit: obrzęk, przekrwienie, wybroczyny, ropno-włóknikowy wysięk nerwowa osowiałość, apatia → hiperalgezja (dotyk), napady szału, agresywność, przekrzywianie głowy, porażenia AP: nieropne zapalenie mózgu, przekrwienia opon mózgowych |
|
Diagnostyka różnicowa |
|
|
|
|
|
|
rozpoznawanie |
najważniejsze wykrycie samoistnych patogenów - BHV-1, BVDV, P. multocida, M. haemolytica |
izolacja na podłożach komórkowych, pobieramy: wycinki poronionych płodów, łożyska, wypływ z pochwy; przeciwciała - ELISA, ale lepiej OWD zrobić 2x → wiemy czy zakażenie nowe czy też już wygasa; antygeny - PCR |
mikroskop: barwienie met. Ziehl-Neelsen'a, przeciwciała - ELISA / OWD, kw. nukleinowy - PCR (rozróżnienie gatunku Brucella) |
|
badania HISTOP: naciek limfocytarny w tkankach nielimfatycznych (śródmiąższowo), nieropne zapalenie naczyń i PCR - metoda z wyboru (bo trudna izolacja); pobieramy: krew, nerki, węzły chłonne, wycinki jelit, śledziony, płuc |
przeciwciała - ELISA (ale uwaga bo trwale zakażone z regułu nie wywtarzają przeciwciał - chyba, że zostały potem zakażone szczepem odmiennym antygenowo, albo pobraliśmy krew od cieląt po odpojeniu siarą); trwali nosiciele - tylko wirusologia (leukocyty krwi / narządy) i najpewniejsze wykrycie za pomocą RT-PCR
zmienność antygenowa wirusa skuteczne są szczepionki atenuowane, które z kolei mogą wywoływać ronienia, immunosupresję, ew. MD zaciemniają diagnostykę wirusologiczną, są programy samych szczepień lub skojarzone ze zwalczaniem bydło >6 mcy (szczególnie jałówki i krowy przed rozrodem → mniejsze ryzyko trwałego zakażenia płodów) |
szczepienia |
|
|
|
szczepionki markerowe (Bovilis IBR marker inac.) → szczepy wirusa pozbawione glikoproteiny E (gE) → po zakażeniu nie ma przeciwciał anty-gE → można odróżnić szczepienie od zakażenia wirusem terenowym testem ELISA + redukcja objawów klinicznych i siewstwa; pierwsze szczepienie w 3mcu życia, 2x szczepienia stada w ciągu roku (wiosna i jesień) |
|
|
leczenie |
|
tetracykliny, makrolidy, chinolony |
|
|
|
|
zwalczanie |
|
obowiązek zgłaszania |
|
preferowana jest strategia DIVA (Differentation of Infected from Vaccinated) w oparciu o szczepionki markerowe |
|
wykrycie i usunięcie trwale zakażonych badamy całe stado na obecność przeciwciał → seroujemne (wśród nich trwale zakażone) badamy wirusologicznie → po 3 tyg. badamy je jeszcze raz żeby potwierdzić trwałą wiremię i tymsamym wykluczyć przejściowe zakażenie wprowadzamy do stada tylko zwierzęta wolne od BVDV w praktyce trudne → więc bierzemy te serododatnie, które już nie sieją (przechorowały)
|