MIKROBIOLOGIA, wykład 3 11 marca 2015r.
Antybiotyki i chemioterapeutyki
antybiotyk – aktywność przeciwdrobnoustrojowa, ma wzorzec w przyrodzie, wytwarzana przez mikroorganizmy lub uzyskana na drodze półsyntetycznej
chemioterapeutyk – nie posiada naturalnego wzorca
antybiotyki
naturalne
penicylina benzylowa
glikopeptydy
aminoglikozydy
makrolidy
półsyntetyczne
penicyliny półsyntetyczne
cefalosporyny
aminoglikozydy
makrolidy
syntetyczne
aztreonam
chloramfenikol
fosfomycyna
chemioterapeutyki
syntetyczne
chinolony
sulfonamidy
trimetoprim
cefalosporyny
rdzeń antybiotyków – pierścień zawierający obok beta-laktamu dihydrotiazynę = cefem, bardziej oporny na działanie beta-laktamaz niż pierścień penam, dzięki podstawnikom takim jak:
grupa metoksy, np. cefamycyny (cefoksytyna, cefoteran, cefmetazol), więc wysoka aktywność wobec B.fragilis, dzięki oporności na beta-laktamazy tej bakterii
iminometoksy i łańcuch metylotiotetrazolowy, np. cefalosporyny III (ceftazydym aktywny wobec P.aeruginosa, ale mało aktywny wobec gronkowców) i IV generacji
cefalosporyny III generacji – aktywność wobec bakterii niefermentujących
azot czwartorzędowy, np. cefalosporyny IV generacji (Cefepim, Cefpirom), budowa ta nadaje aktywność wobec P.aeruginosa
penicyliny – leczenie bakterii beztlenowych
makrolidy
erytromycyna – pierwszy odkryty antybiotyk z tej grupy
streptograminy
antybiotyki makrocykliczne o budowie laktonowej
działają głównie na bakterie Gram +
pochodne z pristinamycyny złożonej z dwóch związków Ia i IIa i wirginamycyny
tetracykliny
nie są stosowane w zapaleniach dróg oddechowych
linkozamidy – KLINDAMYCYNA
większa aktywność przeciwbakteryjna (!) – stosowane w zakażeniu Gram + oraz bakteriami beztlenowymi
miejsca docelowego działania leków przeciwbakteryjnych w komórce:
Miejsce działania | Antybiotyki |
---|---|
ściana komórkowa | beta-laktamy (penicyliny, cefalosporyny, karbapenemy, monobaktamy), glikopeptydy, fosfomycyna |
błona komórkowa | polimyksyny (kolistyna), lipopeptydy |
polimeraza RNA | rifampicyna (ansamycyny) |
polirybosomy | 30S: tetracykliny, glicylocykliny, ammoglikozydy 50S: chloramfenikol, linkozamidy, streptograminy, makrolidy, ketolidy, azalidy |
gyraza DNA | chinolony |
synteza puryn | sulfonamidy, trimetroprim |
polirybosomy
30S: tetracykliny, glicylocykliny, ammoglikozydy;
50S: chloramfenikol, linkozamidy, streptograminy, makrolidy, ketolidy, azalidy
efekt końcowy – brak syntezy białek
działanie bakteriostatyczne
wykorzystywane w zakażeniach, w których bakteria wytwarza toksyny
polimeraza RNA – rifampicyna (ansamycyny)
błona komórkowa – polimyksyny (kolistyna), lipopeptydy
ściana komórkowa – beta-laktamy (penicyliny, cefalosporyny, karbapenemy, monobaktamy), glikopeptydy, fosfomycyna
działanie bakteriobójcze
błędy w terapii – stosowanie dwóch antybiotyków działający na to samo miejsce uchwytu
zjawisko konkurencji zastosowane dawki są niewystarczające
leczenie skojarzone w antybiotykoterapii
nie stosuje się antybiotyku bakteriobójczego z bakteriostatycznym
bakteriostatyczny hamuje wytwarzanie białek bakteriobójczy nie będzie miał miejsca działania
efekt bakteriobójczy
beta-laktamy
glikopeptydy
aminglokzydy
chinolony
ko-trimoksazol
polimyksyny
metronidazol
fosfomycyna
efekt bakteriostatyczny
makrolidy
linkozamidy
tetracykliny
chloramfenikol
podział antybiotyków w oparciu o spektrum przeciwbakteryjne:
bakterie G+
penicyliny naturalne
glikopeptydy
wyjątek: S. haemolyticus – naturalnie obniżona wrażliwość na teikoplaninę
szczepy Van CE galinarum naturalnie oporne na wankomycynę
bakterie G-
aztreonam
polimyksyny
bakterie beztlenowe
linkozamidy
pochodne nitroimidazolu, np. metronidazol (Actinomyces i Propionibacterium oporne na metronidazol)
chloramfenikol
penicyliny z inhibitorami beta-laktamaz
bakterie atypowe (mikoplazmy, chlamydie, chlamydiofile, riketsje)
makrolidy
tetracykliny
chinolony
rifampicyna
kotrimoksazol
makrolidy – mechanizm działania
azytromycyna gromadzona głównie w ziarnistościach neutrofilów, natomiast klarytromycyna i roksytromycyna zarówno w cytoplazmie jak i w ziarnistościach
interakcje makrolidów z fagocytami zachodzące in vivo mogą wpływać na skuteczność terapeutyczną tych antybiotyków
racjonalna antybiotykoterapia:
skuteczność
bezpieczeństwo
niski koszt leczenia
wygodne stosowanie
jak najmniejsze szerzenie oporności
podstawy wyboru antybiotyku:
wyraźne wskazania do stosowania antybiotyku:
czy mamy do czynienia z zakażeniem czy z kolonizacją
czy zakażenie jest bakteryjne
spektrum działania
zaczynamy od antybiotyku o jak najwęższym spektrum działania
co może być czynnikiem etiologicznym zakażenia? – terapia empiryczna
czas trwania leczenia optymalny
terapia celowana – wynik badania mikrobiologicznego aby zastosować leczenie
nie należy stosować antybiotyków należących tylko do jednej grupy
dobór antybiotyku:
ocena ciężkości zakażenia
lokalizacja zakażenia
czynniki predysponujące
zakażenia oportunistyczne – wywoływane przez bakterie, które naturalnie kolonizują, lecz pojawią się w nieodpowiednim miejscu
wybór antybiotyku do leczenia powinien być dokonany w oparciu o:
znajomość lekowrażliwości bakterii występujących na danym terenie w przeciągu ostatnich miesięcy
badanie wrażliwości wyhodowanych drobnoustrojów (antybiogram)
znajomość właściwości farmakokinetycznych leku (możliwość dotarcia do ogniska zakażenia i utrzymanie się w nim w odpowiednim stężeniu przez określony czas)
stan kliniczny pacjenta, stosuje się antybiotyk powodujący jak najmniejszy efekt uboczny
zastosowanie chemioterapeutyku bez antybiogramu:
w przypadku schorzeń wywołanych przez drobnoustroje o ogólnie znanej, stałej gatunkowo wrażliwości na niektóre antybiotyki
w przypadku schorzeń wykonanych przez drobnoustroje nie dające się hodować lub trudne to wyhodowania na podłożach sztucznych (atypowe zapalenie płuc)
w przypadku ciężkich schorzeń, w których opóźnienie chemioterapii może zagrażać życiu pacjenta
wrażliwość in vitro wyhodowanych bakterii nie gwarantuje całkowitej skuteczności leczenia
MIC – najmniejsze stężenie leku (wyrażone w mg/l) oznaczone w warunkach in vitro, które hamuje wzrost bakterii przy określonej gęstości inokulum w określonym czasie
MBC – minimalne stężenie leku, wyrażone w mg/l, oznaczone w warunkach in vitro, przy którym ginie 99,9% komórek bakteryjnych przy określonej gęstości inokulum w określonym czasie (dla leków przeciwbakteryjnych)
określenie wielkości strefy zahamowania wzrostu drobnoustrojów i wartości MIC pozwala na uzyskanie stężeń granicznych umożliwiających zakwalifikowanie badanego szczepu do kategorii:
wrażliwy
średniowrażliwy
oporny
krzywa Batemana
o stężeniu leku w łożysku naczyniowym decydują procesy wchłaniania, dystrybucji i eliminacji
powierzchnia pola pod krzywą (AUC)
interakcje lek-drobnoustrój
efekt poantybiotykowy (!!!) – zahamowanie wzrostu bakterii krótkotrwale eksponowanych na antybiotyk, utrzymuje się nawet wtedy, kiedy w środowisku już nie ma antybiotyku
aminoglikozydy
działanie bakteriobójcze, rybosom – miejsce docelowego działania
transportowany aktywnie do wewnątrz komórki bakteryjnej
nie działa na beztlenowce
u bakterii Gram – efekt poantybiotykowy utrzymuje się nawet 8h (nie wykazują aktywności wobec S.maltophilia i Burgholderia cepacia)
u bakterii Gram + efekt utrzymuje się 4h (u Enterociccus oporność naturalna na niskie stężenia – terapia skojarzona z penicyliną naturalną, amino- i ureidopenicylinami oraz glikopeptydami)
beta-laktamy
u bakterii Gram – praktycznie nie występuje efekt poantybiotykowy
u bakterii Gram + efekt poantybiotykowy wynosi ok. 2h
karbapenemy w przeciwieństwie do innych beta-laktamów wykazują efekt poantybiotytkowy u P.aeruginosa
chemioterapia | szczepienia | |
---|---|---|
swoistość | zwykle wysoka | bardzo wysoka |
toksyczność | potencjalnie wysoka | zwykle wysoka |
efekt | zwykle krótkotrwały | zwykle długotrwały |
leczenie | może być długie | zwykle krótkie, ale d.p. |
działanie/efektywność | bakterie wysoko wirusy, grzyby, pasożyty - różnie |
bakterie: wysoko wirusy, grzyby, pasożyty – nisko/różnie |