SPRAWOZDANIE ps2, BIOLOGIA UJ, BIOCHEMIA WBBiB


OZNACZANIE AKTYWNOŚCI PSII.

Wstęp:

PSII-inaczej fotosystem II.Jest to jeden z dwóch kompleksów barwnikowo-białkowych aparatu fotosyntetycznego. PSII działa z maksymalną wydajnością przy długości fali 680 nm. Fotoukład PSII występuje głównie w tylakoidach gran. Charakterystyczne dla fotoukładu II są układy antenowego określane nazwą - LHC II, w których stosunek chlorofilu a do chlorofilu b wynosi: a:b = 1:1. PSII katalizuje indukowane światłem przeniesienie elektronów z utlenionej cząsteczki wody (donora) na pulę plastochinonu rozpuszczalnego w dwuwarstwie lipidowej chinonu. Aktywnośc PSII można zdefiniowac jako ilośc elektronów przeniesionych z wody na plastochinon w jednostce czasu , przeliczoną na jednostkę masy chlorofilu w próbce.

Wykonanie:

Tabela nr.1

Długośc fali

Wynik pomiaru absorbancji

645

0,462

663

1,114

710

-0,013

Następnie obliczono stężenie chlorofilu a i b.

Stężenie chlorofilu a i b:

CChl (a+b) = 20,2 (A645-A710) + 8,02(A663-A710)

CChl (a+b) = 20,2 * (0,462+0,013) + 8,02 *(1,114+0,013)=18,63354 μg/ml masy

Przystąpiono do oznaczania aktywności PSII.

18,63 µg ---1ml

x --- 7ml

x=130.41

130, 41/2 = 65,205 to jest ilośc chlorofilu a i b, znajdującgo się w 500 µl roztworu-uzyskaliśmy go po pobraniu połowy roztworu powstałego po połączeniu 400µl zawiesiny i 1600 µl acetonu stąd wynika,że w 500 µl roztworu jest 100µl zawiesiny chloroplastów.

400 - 1600 ul

X - 100 000 ul

X = 25 000 ul = 25 ml

Więc ostateczne stężenie:

65,205 µg---100 µl

x --- 1000 µl x= 652,05 µg- stężenie= 652,05 µg/ ml

Zgodnie z założeniem, że stężenie chlorofilu w próbce ma się zawierac w granicy 20-40 µg/ml, obliczono:

40 µg---1ml

x ---10ml x=400 µg

597,6 µg ---1ml

400 µg ---x x=0,669-tyle pobrano roztworu i uzupełniono 9,33 ml buforu

Ponieważ po pobraniu 1,9 roztworu, stęzenie było zbyt duże więc do 8,1 dodano 3 ml buforu:

40 µg---1ml

x ---8,1 ml x=324-masa chlorofilu

- następnie pobrano 1,5 ml roztworu i wymieszano z 1,5 ml buforu:

324---11,1

x---1,5 x=43,78-w 3ml roztworu w 1ml roztworu-14,5 µg

- z tego pobrano 1,92 ml 14,5—1ml, więc w 1,92 mamy 27,84 µg chlorofilu w ml uzyskanego roztworu.

Tabela nr.2

A

B

C

D

T [s]

λ=590nm

Zawiesina z DCMU

λ =590nm + DCIP

1900ul zawiesiny + 100ul DCIP

+DCMU

1850ul zawiesiny + 50ul DCMU + 100ul DCIP

0

0,473

0,431

0,441(A0)

0,456

30

0,266

0,423

0,237(A1)

0,448

60

0,082

------

0,052

------

Na podstawie wyników tabeli sporządzono wykresy zależności A(absorbancji) od T (czasu).

Wykres numer 1-zależnośc absorbancji od czasu dla próby A.

0x01 graphic

Wykres numer 2- zależnośc absorbancji od czasu dla próby B.

0x01 graphic

Wykres numer 3-zależnośc absorbancji od czasu dla próby 3.

0x01 graphic

Wykres numer 4-zależnośc absorbancji od czasu dla próby D.

0x01 graphic

Obliczenia:

A0= 0,441

A1= 0,237

∆A= 0,441-0,237 = 0,204

Na podstawie zmiany absorbancji obliczono zmianę stężenia DCIP:

Δc = ΔA/(k x l)

kDCIP=16000M-1cm-1

l=1 cm

Δc=0,204/(16000M-1cm-1 x 1 cm) = 1,27 * 10 -5mol/dm3= 12,7 μmol/dm3

Obliczono mase cząsteczkową chlorofilu (a+b) korzystając z następujących danych:

MChl a =893,5 g/mol

MChl b=907,5 g/mol

Chlorofil a :Chlorofil b = 3:1

MChl(a+b) =0,75 x 893,5 g/mol +0.25 x 907,5 g/mol = 897g/mol

Stężenie rozcieńczonej buforem zawiesiny błon tylakoidów = 30µg/ml, zatem ilość chlorofilu w pobranej próbce jest równa:

30µg - 1 ml

X µg - 1,9 ml

X= 57 µg

Co za tym idzie stężenie chlorofilu po dodaniu 0,100 ml DCIP wynosi:

C = 57 µg /2 ml = 28,5 µg/ml

Następnie obliczono ilość moli chlorofilu zawartych w 1000 ml (1 dm3) r-ru:

28,5 µg -1 ml

X µg-1000ml

X=28 500 µg

1 mol - 8,97 x 108µg

X moli - 1,944 x 104 µg

X=2.17 x 10-5 mola= 21,7µmola

Ostatecznie ustalono ile e (wartość DCIP x 2, bo podczas reakcji dochodzi do przeniesienia dwóch elektronów) w ciągu 1 s przenosi jedna cząsteczka chlorofilu w tym doświadczeniu:

15 µmol/litr DCIP - 21,7 µmol/litr Chlorofilu w ciągu 60 s

30 µmol e—21,7µmol chlorofilu w czasie 60s

1,38 cząsteczek e - 1 cząsteczka chlorofilu w ciągu 60 s

0,02 cząsteczek e - 1 cząsteczka chlorofilu w czasie 1 s

4 ) Hamowanie aktywności PSII przez DCMU

Do 1850 µl rozcieńczonej buforem 10 mM Tricyna-NaOH pH 7,7+1 mM MgCl2 zawiesiny tylakoidów dodano 100 µl DCIP i 50 µl DCMU. Zmierzono absorbancję(A0) zaraz po wymieszaniu, a następnie po 30 s oświetlania (A1):

A0 =0,456

A1=0,448

ΔA=0,008

Obliczono o ile procent została zahamowana aktywność fotochemiczna PSII po dodaniu DCMU:

ΔA/A0 x 100 % =0,008/0,456 x 100 %=1,75%

Wnioski:

a) DCMU hamuje działanie PSII(staje się inhibitorem reakcji).

b) do pomiaru I i II-w miarę naświetlania probówki spada wartośc absorbancji DCIP, światło wysyca PSII

c) Na podstawie Tabeli 2, w próbie bez DCIP oraz z DCIP chloroplasty są aktywne - można to zaobserwować dzięki spadkowi absorbancji.

W próbkach do których dodano DCMU można zaobserwować zahamowanie przebiegu reakcji - DCMU działa jak inhibitor dla chlorofilu.



Wyszukiwarka

Podobne podstrony:
SPRAWOZDANIE NUMER 2, BIOLOGIA UJ, BIOCHEMIA WBBiB
sprawozdanie biochemia 25.11, BIOLOGIA UJ, BIOCHEMIA WBBiB
sprawozdanie biochemia 18.11, BIOLOGIA UJ, BIOCHEMIA WBBiB
SPRAWOZDANIE NUMER VII, BIOLOGIA UJ, BIOCHEMIA WBBiB
sprawko na 3.12, BIOLOGIA UJ, BIOCHEMIA WBBiB
sprawko biochemia - 1, BIOLOGIA UJ, BIOCHEMIA WBBiB
sprawko cukry, BIOLOGIA UJ, BIOCHEMIA WBBiB
sprawko na 17.12, BIOLOGIA UJ, BIOCHEMIA WBBiB
cwiczenia 4 sprawozdanie 2012, biologia uj, biologia III, Miktobiologia
eko sprawozdanie zuk, biologia uj, biologia II, eko
cwiczenia 1 sprawozdanie 2010, BIOLOGIA UJ LATA I-III, ROK III, semestr I, Mikrobiologia, Cwiczenia
Sprawozdanie z ekologii, biologia uj, biologia II, eko
sprawozdanie wlasne, biologia uj, biologia II, fizyka
cwiczenia 6 i 7A sprawozdanie 2010, BIOLOGIA UJ LATA I-III, ROK III, semestr I, Mikrobiologia, Cwicz
cwiczenia 9 i 10 sprawozdanie 2010, BIOLOGIA UJ LATA I-III, ROK III, semestr I, Mikrobiologia, Cwicz
cwiczenia 8 sprawozdanie 2010, BIOLOGIA UJ LATA I-III, ROK III, semestr I, Mikrobiologia, Cwiczenia

więcej podobnych podstron