Cwiczenie 5, UG-GUMed, UG GUMed, inne giełdy, MWB rok I, MWB Sem I MSU


ĆWICZENIE 5

2.1. Identyfikacja 16s rRNAH. pylori.

2.1.1. Identyfikacja 16s rRNAH. pylori z próbek pobranych z jamy ustnej.

W ramach ćwiczenia 2 przeprowadzono reakcję PCR z zastosowaniem starterów specyficznych do fragmentu sekwencji 16srRNAH. pylori(351 pz)

Powstałe produkty będą analizowane w 1% żelu agarozowym rozdzielanym w 0.5x stężonym buforze TBE.

- Przygotować roztwór 1% agarozy w 0.5xTBE - 100ml/żel.

-Gotować roztwór do momentu całkowitego rozpuszczenia agarozy.

-Ostudzić roztwór w temperaturze pokojowej (aby możliwe było utrzymanie kolby z roztworem w ręce).

- Dodać bromek etydyny - końcowe stężenie 5 µg/ml.

- Wymieszać i wylać żel, włożyć grzebień.

- Po zestaleniu się żelu agarozowego umieścić go w aparacie w buforze 0.5x TBE.

- Dodać 5 µl buforu obciążającego do próbek.

- Nakładać po 15µl próbek do studzienek.

- Nałożyć marker DNA - 10 µl.

- Prowadzić rozdział przez 30 min., 85V.

- Oglądać żel w świetle UV (GelDoc).

Spodziewane wyniki:

W próbach kontroli pozytywnej powinno uzyskać się produkt o o odpowiedniej długości pz. W próbach izolowanych powinno się uzyskać/bądź nie produkt reakcji PCR. W próbie kontrolnej zawierającej wodę zamiast matrycowego DNA nie powinno uzyskać się produktu.

2.2. Analiza poziomu amplifikacji onkogenu Erb - ddPCR.

2.2.1. Zastosowanie reakcji ddPCR do identyfikacji ilości kopii onkogenu ERB.

(PhD thesis-Anna Żaczek 2004; Oncol Rep. 2002 Nov-Dec;9(6):1373-8. Genecopynumbers of erbBoncogenes in humanpheochromocytoma. Sworczak K, Zaczek A, Babinska A, Lisowska U, Bielawski KP, Falkiewicz B.)

Reakcja ddPCR została przeprowadzona dla onkogenu ERB2 z zastosowaniem dwóch genów referencyjnych - SOD oraz HBB z zastosowaniem DNA izolowanego z krwi ludzkiej. Uzyskane produkty należy rozdzielić w żelu agarozowym.

- Przygotować roztwór 2,5% agarozy w 0.5xTBE - 100ml/żel.

-Gotować roztwór do momentu całkowitego rozpuszczenia agarozy.

-Ostudzić roztwór w temperaturze pokojowej (aby możliwe było utrzymanie kolby z roztworem w ręce).

- Dodać bromek etydyny - końcowe stężenie 5 µg/ml.

- Wymieszać i wylać żel, włożyć grzebień.

- Po zestaleniu się żelu agarozowego umieścić go w aparacie w buforze 0.5x TBE.

- Dodać 5 µl buforu obciążającego do próbek.

- Nakładać po 20µl próbek do studzienek.

- Nałożyć marker 10 µl.

- Prowadzić rozdział przez 40 min., 100V.

Przykład amplifikacji genu ERB2zostanie przedstawiony.



Wyszukiwarka

Podobne podstrony:
CWICZENIE 6, UG-GUMed, UG GUMed, inne giełdy, MWB rok I, MWB Sem I MSU
Giełda 2010, UG-GUMed, UG GUMed, inne giełdy, MWB rok I, MWB Sem I MSU, giełdy 2014 msu, gieldy (2)
karta wyboru opiekuna i tematyki pracy magisterskiej, UG-GUMed, UG GUMed, inne giełdy, MWB rok I, MW
Cwiczenie nr 1, STUDIA PŁ, TECHNOLOGIA ŻYWNOŚCI I ŻYWIENIA CZŁOWIEKA, ROK II, SEM 3, POMIARY AUTOMAT
ALKOHOLIZM JAKO NA UG XXI , Inne
Instrukcja do ćwiczenia 8, UG, SEM3, GENETYKA
Zadania do cwiczenia4, UG, SEM3, GENETYKA
zadania do cwiczenia 3, UG, SEM3, GENETYKA
DHL, UG - wzr, III semestr Zarządzanie rok akademicki 12 13, III sem. - Marketing - E.Łączek, U.Kępr
korelacja i regresja - ćwiczenia, UG - wzr, I semestr Zarządzanie rok akademicki 11 12, I sem. - Sta
bioszka koło 1 11-12(1), Stoma GUMED 2011-2016, II rok misiaczki, biochemia, Koło I, giełdy
lekarski ii rok ii sem, II rok, II rok CM UMK, Giełdy, 2 rok, inne
KOLO 2, Stoma GUMED 2011-2016, II rok misiaczki, fizjologia, koło II
z 2 koła, Stoma GUMED 2011-2016, II rok misiaczki, fizjologia, koło II
Cwiczenie 11 - procesy autoimmunologiczne, Immunologia, inne

więcej podobnych podstron