Ćwiczenie II - Symbiotyczne wiązanie azotu
Przygotować:
Szczepy Rhizobium leguminosarum bv. trifolii
oporne na streptomycynę (StrR)
oporne na rifampicynę (RifR)
wysiane na płytki z podłożem TY
Szczepy Phyllobacterium trifolii i Rhizobium leguminosarum TA1
Wyjałowione i skiełkowane nasiona koniczyny
Jałowienie nasion i przygotowanie kiełków do zakażenia:
- nasiona koniczyny płukać trzykrotnie jałową wodą destylowaną
- jałowić powierzchniowo 0.1% HgCl2 przez 3 min
- płukać trzykrotnie jałową wodą destylowaną
- jałowić 75% etanolem przez 3 min
- ponownie trzykrotnie płukać jałową wodą destylowaną
- wyjałowione nasiona rozłożyć na płytkach z podłożem dla roślin (podłoże „R” - nie zawiera związków azotu)
- płytki z nasionami przechowywać w ciemności do czasu wykiełkowania (1-2 dni)
Pożywka „R”:
K2HPO4 MgSO4 NaCl Ca(PO4)2 FeSO4 Agar Woda pH |
0.5 g 0.2 g 0.1 g 2.0 g 0.01 g 8-10 g do 1000 ml 7.0 |
Wykonanie:
Kiełkujące nasiona koniczyny jałowo przenieść z płytek na skosy z pożywką „R” (1 kiełek 1 probówka)
Probówki z kiełkami podzielić na sześć grup doświadczalnych (po kilkanaście roślin każda):
nie zakażone bakteriami
zakażone szczepem Rhizobium leguminosarum bv. trifolii StrR
zakażone szczepem Rhizobium leguminosarum bv. trifolii RifR
zakażone dwoma szczepami: Rhizobium leguminosarum bv. trifolii StrR i RifR
zakażone szczepem R. leguminosarum bv. trifolii TA-1
zakażone szczepem Phyllobacterium trifolii PETP02T
Przygotować zawiesiny bakteryjne do zakażenia roślin - bakterie rosnące na płytkach zawiesić w ok. 5 ml jałowej wody destylowanej (gęstość OD550 = 0.2)
Zakażenie roślin: do probówek z kiełkami koniczyny dodać:
grupa nie zakażona bakteriami |
po 100 μl jałowej wody destylowanej |
grupa zakażona szczepem StrR |
po 100 μl zawiesiny bakterii Rhizobium leguminosarum bv. trifolii StrR |
grupa zakażona szczepem RifR |
po 100 μl zawiesiny bakterii Rhizobium leguminosarum bv. trifolii RifR |
grupa zakażona dwoma szczepami: StrR i RifR |
Po 50 μl zawiesiny bakterii Rhizobium leguminosarum bv. trifolii StrR oraz 50 μl zawiesiny bakterii Rhizobium leguminosarum bv. trifolii RifR |
grupa zakażona Phyllobacterium trifolii |
po 100 μl zawiesiny bakterii P. trifolii |
Grupa zakażona R. leguminosarum bv.trifolii TA1 |
po 100 μl zawiesiny bakterii R. leguminosarum bv.trifolii TA1 |
Materiały:
- Rhizobium legumiosarum bv. trifolii StrR na płytce z podłożem TY
- Rhizobium legumiosarum bv. trifolii RifR na płytce z podłożem TY
- Phyllobacterium trifolii na płytce z podłożem TY
- R. leguminosarum bv.trifolii TA1 na płytce z podłożem 79CA
- 20 probówek długich
- 2x po 100 ml jałowej wody destylowanej
- 1 koszyk skosów z pożywką „R” (60 skosów)
- 0.1% r-r HgCl2
- etanol 75%
- pipety automatyczne
- końcówki do pipet
- pipety szklane
- ezy