Informacje o fakultatywnych ćwiczeniach dla studentów II Roku Wydziału Lekarskiego
Techniki medycyny molekularnej
Zakład Technik Molekularnych AM Wrocław
semestr letni 2010/11
1. Osoba odpowiedzialna za nauczanie przedmiotu:
Prof. dr hab. Tadeusz Dobosz
2.Nazwiska osób prowadzących zajęcia:
mgr Anna Jonkisz Zakład Technik Molekularnych, ul. Curie-Skłodowskiej 52, 50- 369 Wrocław, tel (071) 784-15-96-mail: annaj@forensic.am.wroc.pl
dr Małgorzata Małodobra Zakład Technik Molekularnych, ul. Curie-Skłodowskiej 52, 50- 369 Wrocław, tel (071) 784-15-95
3.Nazwa jednostki (jednostek) realizującej przedmiot:
Zakład Technik Molekularnych Katedry Medycyny Sądowej
4.Miejsce przedmiotu w programie studiów: Rok II Semestr IV (letni)
5.Liczba godzin
Jednostka(i) uczestniczące w nauczaniu przedmiotu |
Semestr letni |
||
|
W |
Ć |
S |
Zakład Technik Molekularnych Katedry Medycyny Sądowej |
- |
20 |
- |
Razem: |
- |
20 |
- |
6.Liczebność grup studenckich na podstawie Uchwały Senatu AM nr 239 z dnia 29 maja 2006 r.: ćwiczenia: grupa 12 osobowa
7. Opis programu
Metody izolacji materiału genetycznego ( DNA i RNA ) - poznanie różnych technik.Trawienie DNA restryktazami, hybrydyzowanie DNA z odpowiednimi sondami. Reakcja odwrotnej transkrypcji. Analiza polimorfizmów typu STR metodą PCR multipleks, analiza instrumentalna mutacji punktowej przy użyciu analizatora genetycznego, sekwencjonowanie DNA Real-time PCR.
8.Tematyka poszczególnych seminariów:
Ćwiczenia - Semestr letni |
||
Tematyka seminariów (20 godzin) |
Imię i nazwisko osoby prowadzącej zajęcia |
|
Ćwiczenie 1 |
Pobieranie krwi. Izolacja limfocytów na gradisolu. Zabezpieczenie limfocytów do izolacji DNA i RNA. Sporządzanie plam krwi na bibule. |
mgr A. Jonkisz
|
Ćwiczenie 2 |
Izolacja DNA z limfocytów metodą fenolowo-solną. Preparacja DNA z plam krwi met.cheleksową. |
mgr A. Jonkisz
|
Ćwiczenie 3
|
Izolacja całkowitego RNA metodą kolumienkową, reakcja odwrotnej transkrypcji. Real-Time PCR ( demonstracja). |
mgr A. Jonkisz dr M. Małodobra |
Ćwiczenie 4 |
Analiza DNA metodą fingerprinting - trawienie DNA restryktazami, elektroforeza żelowa, Southern blot, hybrydyzacja na folii nylonowej. |
mgr A. Jonkisz
|
Ćwiczenie 5 |
Test na translokację białaczkową z wykorzystaniem techniki PCR. Indukcja angiogenezy w krytycznym niedokrwieniu kończyn dolnych- wykorzystanie terapii genowej. |
mgr A. Jonkisz dr M. Małodobra |
Ćwiczenie 6 |
Elektroforeza żelowa, detekcja produktów PCR w świetle UV. Automatyzacja met. izolacji materiału genetycznego. |
mgr A. Jonkisz
|
Ćwiczenie 7 |
Analiza instrumentalna. Sekwencjonowanie i minisekwencjonowanie DNA . |
mgr A. Jonkisz
|
UWAGA: Terminy zajęć są do uzgodnienia ze słuchaczami, proponowane przez nas od 08.03.2011-19.04.2011
9.Forma zaliczenia przedmiotu: zaliczenie na podstawie obecności
Dopuszczalna jest jedna nieobecność
10.Literatura: Zalecana literatura:
Turner P.C., McLennan A.G., Bates A.D., White M.R.H., Biologia molekularna. Krótkie wykłady, PWN, 2004.
Winter P.C., Hickey G.I., Fletcher H.L., Genetyka. Krótkie wykłady. PWN, 2004