TWÓJ BIOTECHNOLOG
Własności białek, cukrów i tłuszczy
Zadanie 1.
Rozdział chromatograficzny aminokwasów hydrolizatu włosów ludzkich
Materiały: hydrolizat włosów ludzkich
0.5% roztwory wodne aminokwasów (histydyna, arginina, glicyna, cystyna, cysteina
lizyna, kwas glutaminowy, tyrozyna, walina, fenyloalanina)
płytka do chromatografii TLC pokryta silikażelem
rozpuszczalnik: n-butanol - kwas octowy - woda w stosunku 12:3:5
wskaźnik: 0.1% alkoholowy roztwór ninhydryny
Ninhydryna - roztwór stosuje się w chemii analitycznej do spryskiwania płytek TLC w celu detekcji amin
Rf - stałą wartość szybkości wędrowania danego związku w określonych warunkach
Wykonanie:
Na płytce chromatograficznej na wysokości 1 cm narysowaliśmy linię startu i miejsca naniesienia
roztworów aminokwasów, wszystkie czynności wykonaliśmy ostrożnie w rękawiczkach w grupach.
Nanieśliśmy wodne roztwory aminokwasów i hydrolizatu włosów za pomocą kapilar , po każdorazowym naniesieniu osuszaliśmy suszarką.
Płytkę włożyliśmy ostrożnie do komory chromatograficznej na około 2 godziny do czasu aż front eluentu zbliżył się do krawędzi którą zaznaczyliśmy ołówkiem.
Płytka została wysuszona i spryskana roztworem ninhydryny, plamki obrysowaliśmy ołówkiem.
Obliczanie współczynniki Rf dla wszystkich plamek;
Aminokwas |
Arginina |
Glicyna |
fenyloalaniana |
Walina |
Cysteina |
Tyrozyna |
Rf |
0,118 |
0,145 |
0,447 |
0,355 |
0,065 |
0,434 |
Kwas glutaminowy |
Lizyna |
Histydyna |
cystyna |
0,171 |
0,079 |
0,105 |
0,065 |
b=7,6
Hydrolizat włosów(aminokwasy) |
1 |
2 |
3 |
4 |
Rf |
0,447 |
0,342 |
0,184 |
0,065 |
Wnioski:
w skład hydrolizatu włosów wchodzą aminokwasy;
1-fenyloalanina
2-Walina
3-kwas glutaminowy
4-cysteina lub cystyna( prawdopodobnie został użyty dwa razy hydrolizat cysteiny a brakuje hydrolizatu cystyny)
Wybór został dokonany na podstawie wartości Rf pojedynczych aminokwasów
Zadanie 2.
Odczyn barwny wiązania peptydowego - próba biuretowa.
Materiały: roztwór NaOH
0.1% roztwór CuSO4
0.5% roztwór albuminy
0.5% roztwór kazeiny
Woda destylowana
Wykonanie:
Probówka 1 - Kazeina 2ml
Próbówka 2 - Albumina 2ml
Próbówka 3 - Woda destylowana 2ml
Do każdej probówki dodałem 2 ml r-ru NaOH, wymieszałem i dodałem kroplami (ok. 15 kropli)
0.1% roztwór siarczanu miedzi (II) do pojawienia się zabarwienia.
Obserwacje;
1Próbówka zabarwiła się na fioletowo
2 Próbówka zabarwiła się an brunatny
3 próbówka zabarwiła się na niebiesko
Wnioski:
Próbówka 1 pozytywny wynik próby ( Kazeina jest białkiem )
Próbówka 2 negatywny wynik próby
Próbówka 3 Negatywny wynik próby ( próba kontrolna )
O czym świadczy i jaka jest przyczyna zmiany zabarwienia próbek?
azeina jest białkiem ( posiada grupy peptydowe )
lbumina jest białkiem ( Występuje niezgodność z przewidywanymi wynikami )
jasno niebieska barwa roztworu wynika z obecności jonów Cu2+
Zadanie 3.
Wykrywanie wolnych grup aminowych za pomocą ninhydryny
Materiały: 0.1% roztwór ninhydryny
0.5% roztwór albuminy
0.5% roztwór kazeiny
Próbówka1 - Albumina - 2ml
Próbówka 2 - Kazeina - 2ml
Próbówka 3 - Woda destylowana - 2ml
Wykonanie:
Do każdej probówki dodałem 0.5 ml roztworu ninhydryny.
Obserwacje na zimno
W wszystkich 3 probówkach występuje bezbarwny roztwór.
Następnie włożyłem probówki na 5 minut do łaźni wodnej o temperaturze 95ºC i po upływie tego
czasu ponownie zanotowałem obserwacje;
1) zabarwienie na kolor ciemno fioletowy
2) zabarwienie na kolor ciemno fioletowy
3) roztwór pozostał bezbarwny
Wnioski:
Jakie związki dają dodatni odczyn z ninhydryną?
Związki posiadające wolną grupę aminową.
Jaka jest przyczyna pojawienia się zabarwienia i dlaczego po pogrzaniu kolor niektórych
próbek ulega zmianie?
W wysokiej temperaturze następuje denaturacja białka co powoduje rozpad na aminokwasy które dają pozytywny odczyt w próbie z ninhydryną.
Zadanie 4.
Rozpuszczalność polisacharydów
Materiały: agar, celuloza, skrobia
Wykonanie:
Do 3 probówek wsypałem odrobinę każdego cukru tak ze;
Próbówka Agar 2ml + Woda destylowana
Próbówka Celuloza 2ml + Woda destylowana
Probówka Skrobia 2ml + Woda destylowana
OBSERWACJE NA ZIMNO:
osad
osad
rozpuszczony cukier ( klarowny roztwór )
Następnie umieściłem probówkę na 5 minut w łaźni wodnej o temperaturze 95ºC i po upływie
tego czasu ponownie zanotowałem obserwacje
OBSERWACJE NA GORĄCO;
osad
osad
rozpuszczony cukier ( klarowny roztwór )
Wnioski;
Agar - cukier nie rozpuszczalny w wodzie na zimno, rozpuszczalny w temp. 90 - 100 stopni.
Po ochłodzeniu do temp 48-50 stopni przechodzi z roztworu w formę osadu.
Celuloza - nierozpuszczalna w wodzie zarówno na zimno jak i an gorąco
Skrobia - dobrze rozpuszczalna w wodzie zarówno na zimno i na gorąco.
Zadanie 5.
Własności redukcyjne cukrów.
Materiały:
Woda destylowana
glukoza
sacharoza
maltoza
odczynnik Fehlinga I - roztwór CuSO4
odczynnik Fehlinga II - roztwór NaOH i winianu sodowo-potasowego)
Wykonanie:
A. Próba Fehlinga
W ponumerowanych probówkach zmieszałem 1 ml roztworu Fehlinga I i 1 ml roztworu
Fehlinga II.
Do jednej probówki dodałem 1 ml wody destylowanej, a do pozostałych dodałem 1 ml badanych
roztworów cukrów i wymieszałem.
Probówki włożyłem na 5 minut do łaźni wodnej (95ºC) i zanotowałem następujące obserwacje.
Obserwacje:
woda destylowana - kolor fioletowy (próba kontrolna)
glukoza - ceglasty osad
sacharoza - roztwór niebieski
maltoza - zielony roztwór, ceglasty osad
Wnioski:
1) nie reaguje z wodą, odczynnik Fehlinga ma kolor fioletowy
2) glukoza utlenia się do kwasu glukonowego (cukier redukujący)
3) sacharoza nie jest cukrem redukującym
4) maltoza jest cukrem redukującym
B. Próba Benedicta
Materiały:
Woda destylowana
glukoza
sacharoza
maltoza
odczynnik Benedicta
Do ponumerowanych probówek dodałem po 5 ml roztworu Benedicta.
Do pierwszej probówki dodałem 1 ml wody destylowanej, a do pozostałych dodałem 1 ml
badanego roztworu cukru i wymieszałem.
Obserwacje na zimno:
Wszystkie roztwory miały kolor niebieski.
Probówki włożyłem na 5 minut do łaźni wodnej (95ºC) i zanotowałem następujące obserwacje.
Obserwacje:
glukoza - ceglasty osad
maltoza - ceglasty osad
sacharoza - zielony roztwór
h2o - niebieski
Sprostowanie: roztwór sacharozy po ogrzaniu powinien mieć kolor niebieski.