pień oczyszczania ścieków nieorganicznych pochodzących z produkcji nawozów azotowych (tab. 4.4). Jest on o 90% tańszy niż konwencjonalne usuwanie azotu metodą nitry-fikacji i dcnitryfikacji.
Tabela 4.4. Transformacje azotu w systemie SHARON-anammox (mg N/l)
SHARON Anammox
Stężenie azotu w ściekach po reakcji SHARON po reakcji anammox
nh4' |
584 (100%) |
267 (46%) |
(5%) |
NO? |
<1 |
227 (39%) |
1,4 |
N03' |
<1 |
64 (11%) |
83 (14%) |
N?0 |
<1 |
4 |
<1,0 |
N2 |
<1 |
<1.0 |
476 (82%) |
4.3.4. CANON (completely autotrophic nitrogen rcmoval process over nitrite). Znaczne ilości traconego azotu cząsteczkowego obserwowano w ściekach zawierających duże ilości amonu oraz mały ładunek zanieczyszczeń organicznych. Za zjawisko to są odpowiedzialne mikroorganizmy chemolitoautotroficzne, które mają zdolność do denitryfi-kacji w obecności tlenu w małych stężeniach. Proces ten zyskał określenie CANON, będące skrótem jego angielskiej nazwy. Jest on prowadzony w hodowlach mikroorganizmów przy małym stężeniu tlenu w pojedynczym bioreaktorze mieszanym lub w mikroflorze tworzącej biofilm. Ogólnie reakcje CANON polegają na częściowej nitryiikacji amonu do azotynów w warunkach mikroaerofilnych i jednoczesnym jego utlenianiu.
Przy ograniczonym nasyceniu podłoża hodowlanego w tlen (<0,5%) w biorcakto-rze namnażają się kokultury mikroorganizmów zdolne do tlenowego i beztlenowego utleniania amonu. W skład kokultuiy wchodzą dwie populacje chemolitotroficznych mikroorganizmów: tlenowe nitrozobakterie i beztlenowa należące, odpowiednio, do rzędu Planctomycetes: Brocadia (B. anammońdans) i Kuenenia (K. stuttgartiensis). Przy ograniczeniu tlenu mikroorganizmy tworzące naturalne kokultury bezpośrednio prowadzą konwersję amonu do azotu cząsteczkowego, z azotynami będącymi produktami pośrednimi. Reakcje CANON mogą być wykorzystywane jako technologia usuwania amonu ze ścieków w pojedynczym autotroficznym bioreaktorze. Populacje tworzące kokultury prowadzą jednocześnie reakcje tlenowego i beztlenowego utleniania amonu, z wydzieleniem azotu cząsteczkowego:
NH4+ + 1,5 O; -> N02 + 2 H+ + H:0 NliC + 1,3 N02- 1,02 N2 + 0,26 NOjf + 2 H20
Sumarycznie te dwie reakcje można zapisać następująco:
Nł-ŁC + 1,3 NO:- -> 0,435 N2 + 0,13 NO_r + 1,3 H20 + 1,4 H+
Tlen w stężeniu dochodzącym do 0,5 mg/1 nie ma ujemnego wpływu na utlenianie amonu, ilość ta powoduje zaś inhibicję utleniania azotynów do azotanów przez nitrobak-terie. W tych warunkach wytworzone azotyny są konkurencyjnymi akceptorami elektronów. Z danych uzyskanych z hodowli kokultur prowadzonych w dwóch typach bio-reaktorów: SBR (sequencing batch reactor) i chemostacie wynika, że reakcje zachodzą stechiometrycznie, jeśli ładunek amonu w ściekach nie jest mniejszy niż I g N/bdoba'1, a wydajność procesu wynosi 92%. Przy mniejszym dobowym ładunku amonu wydajność maleje do 57%. Z badań prowadzonych z użyciem SBR i ścieków zawierających duże ilości amonu w warunkach limitacji tlenem wynika, że szybkość usuwania azotu z zastosowaniem reakcji CANON dochodziła do 0,3 g N/bdoba-1. W innym typie bioreaktora (gas-lift reaclor) wydajność procesu zwiększyła się do 1,5 g N/bdoba-1.
Usuwanie azotu ze ścieków o niewielkim ładunku zanieczyszczeń organicznych z zastosowaniem reakcji CANON jest ekonomicznie uzasadnione, gdyż proces jest autotroficzny i nie wymaga dodatkowego wzbogacania w związki organiczne, a jedynie nieznacznych ilości tlenu (37% zapotrzebowania tlenowego do nitryfikacji).
W tabeli 4.5 porównano nowe technologie usuwania azotu na tle konwencjonalnej metody nitryfikacji i denitryfikacji, zaś w tabeli 4.6 - tempo konwersji azotu w hodowlach bakterii chemolitotroficznych w różnego typu biorcaktorach.
Tabela 4.5. Porównanie nowych technologii usuwania azotu ze ścieków do konwencjonalnej metody nitryfikacji i denitryfikacji (wg: Jetten i wsp., 2002)
System |
Metoda konwencjonalna |
SHARON |
Anammox |
CANON |
Liczba reaktorów |
2 |
1 |
1 |
i |
Podłoże |
ścieki |
ścieki |
NH4+ + NO? |
ścieki |
Usuwanie N |
NO?". NO3 N2 |
NH4' i NO?" |
no3 'n2 |
NO3- i N? |
Warunki hodowli |
tlenowe i beztlenowe |
tlenowe |
beztlenowe |
limitacja O2 |
Wymagania 02 |
duże |
małe |
brak |
matę |
Korekta pH |
tak |
nie |
nie |
nie |
Zatrzymywanie biomasy bakterii |
nie |
nie |
tak |
tak |
Wymagane CZT |
tak |
nie |
nic |
nie |
Produkcja osadu |
duża |
mata |
mata |
mata |
Tabela 4.6. Tempo konwersji azotu w g N/l doba |
1 w hodowlach bakteni | |||
chemolitotroficznych prowadzonych w różnego typu bioreaktorach | ||||
Proces |
Typ reaktora |
Tempo konwersji N-catkowitego | ||
Anammox |
FBR |
4,8 | ||
Anammox |
SBR |
7,0 | ||
Anammox |
gas-lift reactor |
8,9 | ||
Nitryfikacjab |
BAS |
5.0 | ||
CANON |
SBR |
0.07 | ||
CANON |
gas-lift reactor |
1.5 | ||
SHARON |
CSTR -> |
SBR |
1,0 | |
Nitryfikacja-denitryfikacja BAS |
3.75 |
r ea*t0rV stosowane do hodowli mikroorganizmów złoże fluidalne FBR (fluidized bed reactor): system sekwencyjnych statycznych bio-^aktorów ~ S3R (sequencing bateń reaclor). reaktory mieszane mieszadłem CSTR (cominuous stirred tank reactor). zloze rotacyjne -L C (rotating óological contactor); złoże z wynoszonym biofilmem - BAS (biofilm airlift system), b - tylko utlenianie amonu bez usuwania **** » ścieków. '
7!