20120103356

barwienia

IV|; iiaoiunei rvui\ui yvj*.y, uwoa,iuuiiiu, yiUUDU

P: 2 szalki Petriego, 2 zlewki a 200 cm³

O: 1% wodny roztwór tetrazoliny (2, 3, 5-chlorowodorek trójfenylotetrazoli-ny), 0,2% wodny roztwór indygo-karminu

50 nasion kukurydzy, moczonych uprzednio przez 24 godz., przecinamy wzdłuż i po jednej połowie z każdego ziarna umieszczamy w roztworze tetrazoliny na okres 3 godz. Po tym czasie nasiona przemywamy wodą i dokonujemy oceny. Podajemy w procentach liczbę nasion zdolnych do kiełkowania, a więc tych, których zarodki uległy zabarwieniu.

Żywotność nasion roślin motylkowych można określić przy użyciu indygo-karminu zabarwiającego martwe tkanki na niebiesko. Indygo-karmin nie działa trująco na zarodki. Z 50 nasion, moczonych uprzednio przez 24 godz. w wodzie, ostrożnie usuwamy okrywę nasienną, tak by nie skaleczyć zarodka. Przez 3 godz. pozostawiamy wypreparowane nasiona w roztworze Indygo-karminu w temp. 30*C, po czym barwnik zlewamy do butelki, a nasiona płuczemy wodą. Obliczamy procentową zawartość zarodków żywych, czyli nie zabarwionych lub z tylko częściowo zabarwionymi liścieniami.

Doświadczenie 65 Stwierdzenie obecności amylazy w kiełkujących nasionach

M: nasiona pszenicy, owsa lub kukurydzy

P: waga, łaźnia wodna, cylinder miarowy a 100 cm³, zlewka ś 100 cm³, szalka Petriego, ostry nożyk O: 1% kleik skrobiowy, płyn Lugola, agar

Na łaźni wodnej w 50 cm³ wody rozpuszczamy 1 g agaru. Następnie dodajemy 5 cm³ kleiku skrobiowego i wylewamy płyn na szalkę Petriego. Gdy