Obraz2

Obraz2



A)


Szczelina ok. 1 mm




Przekładki grubości 1 mm



Rys. 3. Schemat przygotowania płytek szklanych do polimeryzacji mieszaniny akrylamid : metyleno-bis-akrylamid i komórki (enzym)

A) widok w przekroju B) widok z góry ; 1 - dolna płytka, 2 - górna płytka

b)    Przygotowanie mieszaniny do polimeryzacji i otrzymanie membrany enzymatycznej W zlewce 50 ml zmieszać kolejno:

3,6 ml mieszaniny akrylamid / metyleno-bisakrylamid

2.1    ml 0,1 M bufom Tris_octan o pH 6

2.1    ml wody redestylowanej 0,5 ml preparatu inwertazy

10 ul TEMED (pod wyciągiem)

— odgazować ^ mieszaninę pod próżnią pompki wodnej (lub pompy olejowej) Dodać 30 ul 10% roztworu nadsiarczanu amonu (katalizator polimeryzacji) i niezwłocznie wylać mieszaninę na dolna płytkę tak, aby wypełniła przestrzeń pomiędzy płytkami*'*

Obciążyć płytki ciężarkiem aby zapewnić dobry docisk do przekładek i pozostawić do polimeryzacji która powinna zajść po około 30 minutach w temperaturze pokojowej.

Po zakończonej polimeryzacji ostrożnie rozdzielić płytki, powierzchnię żelu (membrany) pozostałego na płytce delikatnie przemyć woda destylowaną celem usunięcia niespoli-

-    meryzowanych monomerów.

Przy pomocy korkobora o średnicy 1 - 1,5 cm wyciąć z membrany krążki które zostaną użyte bezpośrednio do dalszych doświadczeń lub przechowywać je w 50 mM buforze octanowym o pH 5, w temperaturze ok. 4°C, trwałość około miesiąca.

^ Odgazowanie mieszaniny usuwa rozpuszczony tlen który hamuje polimeryzację. Polimeryzacja żelu pomiędzy szybkami szklanymi również zabezpiecza mieszaninę przed kontaktem z tlenem obecnym w powietrzu, ponadto pozwala na otrzymanie gładkiej, jednorodnej membrany o grubości równej grubości użytych przekładek. W przypadku cienkich membran (np. do biosensorów) delikatny żel można wzmocnić przez polimeryzację na podłożu takim jak gaza bawełniana lub flizelina które ulegną „wtopieniu” w spolime-

-    ryzowany żel nadając mu dużą odporność mechaniczną.

c)    Zbadać przebieg hydrolizy sacharozy przez inwertazę pułapkowaną w żelu poliakrylamidowym w zależności od czasu inkubacji oraz ilości enzymu (ilości

3


Wyszukiwarka

Podobne podstrony:
PRÓBA WALECZKÓWANIA -z przeznaczonej do badań próbki gruntu uformować kulkę o średnicy ok, 7 mm (Rys
PRÓBA WAŁECZKÓW ANIA - z przeznaczonej do badań próbki gruntu uformować kulkę o średnicy ok. 7 mm (R
40Wpcb Rys. 4. Płytka montażowa z laminatu A54 mm V Rys. 5. Schemat rozmieszczenia zasadniczych elem
Ą ■. *1 * l Płytka drukowana zasilacza 5 V/1 A mm Rys. I.6 Schemat montażowy zasilacza 5 V/1
237 (4) 1+2 mm Rys. 9.5. Schemat zmian struktury przy powierzchni przecinanej stali: 1 - strefa zmia
Strona04 + 20,0 Rys. 2. Schemat rozkładu temperatury w przegrodzie o zmiennej grubości, °C Rys. 3.
Obraz0 A © I m mobilizowany enzym/komórki B[C S - substrat P- produktCzas reakcji Rys. 2. Schemat b
39696 Obraz5 (45) ZARZĄDZANI/. ŚRODOWISKIEM W I RZEDSlbjHIORSTWI/■ % recyrkulacja wewnętrzna Rys.
Rys. 1. Schemat urządzenia flotacyjnego: 1 - próg do zbierania piany do pochylonej rynny, 2 - wanna
Praca Doktorska - Anna Sapińska- Wcisło Rys. 1.1 Schemat przestawiający mechatroniczne podejście do
SCAN0010 4 a) Rys. 170. Przygotowanie form skorupowych do zalewania: a) łączenie w zespół.do zasypan

więcej podobnych podstron