02-097 Warszawa, ul. Banacha 1, tel/fax 022 5720 978, www.farmacjamolekularna.wum.edu.pl: e-mail: farmacjamolekularna@wum.edu.pl
Kierownik Katedry: prof. dr hab. Maciej Małecki
Osoba odpowiedzialna za dydaktykę: mgr Agnieszka Zajkowska
Godziny przyjęć w sprawach studenckich: ustalane i podane do wiadomości studentów na pierwszym wykładzie
Roczny wymiar wykładów i ćwiczeń: 45 godzin
wykłady -15godz.
ćwiczenia - 30 godz.
Miejsce wykładów: sale wykładowe Wydziału Farmaceutycznego
Miejsce seminariów i ćwiczeń: sale ćwiczeniowe Katedry Farmacji Stosowanej i Bioinżynierii Liczba punktów ECTS: 5
CEL NAUCZANIA I ZAKRES PRZEDMIOTU
Celem prowadzenia kursu jest zapoznanie studentów z molekularnymi podstawami biologii komórki głównie w zakresie funkcjonowania genów oraz białek. Przekazywane informacje dotyczą biologii komórek prawidłowych, jak i nowotworowych. W sposób szczególny omawiane są zagadnienia związane z molekularnymi podstawami cyklu komórkowego, apoptozy, nowotworzenia. Kurs biologii molekularnej obejmuje również zapoznanie studentów ze współczesnymi osiągnięciami dyscyplin biomedycznych w zakresie metod, technik i technologii - omówienia innowacyjnych metod terapii chorób - terapii genowej, oraz metod wykorzystywanych w diagnostyce molekularnej.
W zakresie ćwiczeń laboratoryjnych kurs biologii molekularnej uczy studentów wybranych metod molekularnych związanych z DNA, RNA oraz białkiem - izolacja, ocena ilościowa, jakościowa, identyfikacja, amplifikacja.
PROGRAM NAUCZANIA Tematy wykładów:
1. Genomy, transkryptomy, proteomy.
2. Niekodujące cząsteczki RNA.
3. Molekularne podstawy cyklu komórkowego.
4. Molekularne podstawy kancerogenezy.
5. Terapia genowa.
6. Metody biologii molekularnej w farmacji i diagnostyce medycznej.
Tematy ćwiczeń:
1. DNA genomowe - izolacja z materiału biologicznego, ocena jakości, ilości, amplifikacja wybranych sekwencji metodą PCR, analiza elektroforetyczna uzyskanych produktów.
2. DNA plazmidowe - izolacja z materiału biologicznego, ocena jakości, ilości, trawienie enzymami restrykcyjnymi, analiza elektroforetyczna uzyskanych produktów.
3. RNA - izolacja z materiału biologicznego, ocena jakości, ilości, analiza elektroforetyczna.
4. Białka - izolacja z materiału biologicznego, ocena ilości, analiza elektroforetyczna, barwienie białek w żelach poliakrylamidowych.
12