Literatura podstawowa:
1. Węgleński Piotr (red.) „Genetyka molekularna”. Wydawnictwo Naukowe PWN, Warszawa 2008.
2. Brown T.A. „Genomy” Wyd. 2. Wydawnictwo Naukowe PWN, Warszawa 2009 Literatura uzupełniająca:
1. Kosmala A., Zwierzykowski Z., Gąsior D„ Rapacz M., Zwierzykowska E., Humphreys M.W. (2006). GISH/FISH mapping of genes for freezing tolerance transferred from Festuca pratensis to Lolium multiflorum. Heredity 96, 243-251.
2. Rapacz M., Wolanin B., Hura K., Tyrka M., 2008. The effect of cold acclimation on photosynthetic apparatus and the expression of COR14b in four genotypes of barley (Hordeum vulgare) contrasting in their tolerance to freezing and high light treatment in cold. Ann. Bot. 101: 689-699.
3. Kosmala A., Bocian A., Rapacz M., Jurczyk B., Zwierzykowski Z., 2009. Identification of leaf proteins differentially accumulated during cold acclimation between Festuca pratensis plants with distinct levels of frost tolerance. J. Exp. Bot. 60: 3595-3609.
4. Rapacz M„ Kościelniak J., Jurczyk B., Adamska A., Wójcik M„ 2010. Different patterns of physiological and molecular response to drought in seedlings of malt- and feed-type barleys (Hordeum vulgare). J. Agron. Crop. Sci., 196: 9-19.
Tytuł przedmiotu:
Tytuł angielski: Prowadzący: Katedra, zakład:
Wymiar godzin: Rodzaj zajęć: Status zajęć:
Semestry: Godziny: Punkty ECTS:
TECHNIKI INŻYNIERII GENETYCZNEJ W BIOTECHNOLOGII ZWIERZĄT
Genetic engineering in animal biotechnology Dr Urszula Kaczor, dr Monika Bugno spoza uczelni Katedra Hodowli Trzody Chlewnej i Małych Przeżuwaczy - WHiBZ, Instytut Zootechniki Państwowy Instytut Badawczy, Dział Immuno i Cytogenetyki 15 h wykładów / 45 h ćwiczeń Wykłady, ćwiczenia laboratoryjne Przedmiot obowiązkowy - studia II stopnia
I |
II |
III |
15/45 |
- |
- |
6 |
- |
Określenie przedmiotów wprowadzających wraz z wymaganiami wstępnymi:
Wprowadzeniem do przedmiotu będzie zaliczenie przedmiotów z I stopnia: Markery molekularne, Inżynieria genetyczna.
Założenia i cel przedmiotu: Przedmiot wykłada m. in. rolę genu i genomu jako źródła informacji dla celów diagnostycznych oraz zjawisko polimorfizmu DNA. Student poznaje metody izolacji DNA, samodzielnie izoluje gDNA, ocenia jego jakość i ilość. Zaznajamia się ze zjawiskiem mutacji oraz metodami detekcji mutacji na poziomie DNA. W trakcie ćwiczeń zapoznaje się z zastosowaniem metody PCR w hodowli zwierząt. Praktycznie przeprowadza amplifikację fragmentów wybranych genów i przy zastosowaniu metody RFLP rozpoznaje genotypy zwierząt - nosicieli chorób genetycznych i genów o dużym efekcie. Prowadzone jest przesiewowe badanie obecności mutacji (SNP) w populacji metodą SSCP. Omówione jest zastosowanie molekularnych metod w badaniach cytogenetycznych, fizyczne i