Bryjak, inżynieria bioreaktorów L, sprawozdanie kinetyka enzymatyczna

Wrocław, 30.03.2012r

Laboratorium inżynierii bioreaktorów

Kinetyka enzymatyczna – zajęcia komputerowe

  1. Cel ćwiczenia

Wyznaczanie kinetyki reakcji enzymatycznych za pomocą metod obróbki danych doświadczalnych. Metodami tymi są: „metoda biochemiczna”, korzystająca z regresji liniowej, używany przy tym program to Microsoft Excel® oraz „metoda wykorzystywana w przemyśle”, korzystająca z regresji nieliniowej, używany przy tym program to OriginPro®. Dalszym celem ćwiczenia jest porównanie obydwu metod.

  1. Kinetyka Michaelisa-Menten

  1. Wstęp teoretyczny

Enzymy są katalizatorami wielu reakcji chemicznych. Obniżają one energię aktywacji w wyniku czego szybkość przejścia substratu do produktu jest o wiele szybsza, niż w przypadku kiedy katalizatora brak. Model reakcji enzymatycznej zaproponowali w 1913r. L. Michaelis i M. Menten. W pierwszym etapie reakcji enzym przyłącza substrat tworząc kompleks. Reakcja ta ma stałą szybkość k1 i jest łatwo odwracalna (k-1). Następnym krokiem jest powstanie produktu z szybkością k2. Schemat reakcji pokazano poniżej:


E + SESE + P

Aby kataliza zaszła substrat musi związać się z miejscem aktywnym enzymu. Stężenie enzymu podczas trwania reakcji pozostaje stałe. Szybkość reakcji enzymatycznej zależy od stężenie substratu. Początkowo zależność stężenia od szybkości wzrasta liniowo, aż do momentu kiedy wszystkie cząsteczki enzymu tworzą kompleks z substratem. Osiągnięta wtedy szybkość jest szybkością maksymalną i dalsze zwiększanie stężenia substratu nie wpłynie na szybkość reakcji. Założenia te uwzględniono w równaniu kinetyki reakcji Michaelisa-Menten, które przyjmuje postać:

Gdzie: V-szybkość reakcji ,Km-stała Michaelisa-Menten , [S]-stężenie substratu

Wartości Km, czyli stężenie substratu, w którym szybkość reakcji osiąga połowę swojej wartości maksymalnej, oraz wartość maksymalną wyznaczyć można z wykresu zależności stężenia substratu od szybkości reakcji. [1,2]

Rysunek 1 .

Wykres zależności stężenia substratu od szybkości reakcji w idealnej kinematyce Michaelisa-Menten [3]

Dla dokładniejszego, jednoznacznego wyznaczania stałych parametrów równania stosuje się zlinearyzowaną postać – równanie Lineweavera-Burka.

Rysunek 2.

Wykres Lineweavera-Burka [3]

  1. Analiza danych doświadczalnych

Cs r 1/Cs 1/r
0,10 0,021 10,00 46,67
0,20 0,038 5,00 26,67
0,30 0,050 3,33 20,00
0,50 0,068 2,00 14,67
0,75 0,083 1,33 12,00
1,00 0,094 1,00 10,67
1,50 0,107 0,67 9,33
2,00 0,115 0,50 8,67
2,50 0,121 0,40 8,27
3,00 0,125 0,33 8,00
4,00 0,130 0,25 7,67
5,00 0,134 0,20 7,47
7,50 0,139 0,13 7,20
10,00 0,142 0,10 7,07
15,00 0,144 0,07 6,93
20,00 0,146 0,05 6,87

Tabela 1.

Dane doświadczalne (zadane przez prowadzącą)

Legenda:

Cs – stężenie substratu

r- szybkość reakcji

Wykres 1.

Idealna kinetyka Michaelisa-Menten

Wykres 2.

Idealna kinetyka Michaelisa-Menten

Wykres odwrotności


y = ax + b = 4x + 6, 666


$$V_{\max} = \ \frac{1}{b} = \ \frac{1}{6,666} = 0,15$$


$$K_{m} = \ \frac{a}{b} = \ \frac{4}{6,666} = 0,6$$

Vmax Odchylenie standardowe
0,15 9,82E-17
Km Odchylenie standardowe
0,6 1,78E-15

Tabela 2.

Parametry równania Michaelisa-Menten

wynik uzyskany z OriginPro®

  Vmax Km
Excel® 0,15 0,6
OriginPro® 0,15 0,6
Odchylenie standardowe 9,82E-17 1,78E-15

Tabela 3.

Porównanie parametrów równania Michaelisa-Menten

wyniki zebrane z Excel i OriginPro

  1. Wnioski

Parametry równania Michaelisa-Menten wyznaczono dwoma metodami obróbki danych doświadczalnych. Uzyskane wyniki są identyczne. Odchylenia standardowe wyznaczone w programie OriginPro® są niskie. Analiza uzyskanych wyników pozwala wnioskować, iż zadane dane (stężenie substratu oraz szybkość reakcji) są bardzo dokładne oraz obie metody są równie dobre do wyznaczania parametrów idealnej kinetyki Michaelisa-Menten. W celu weryfikacji otrzymanych w doświadczeniu danych oraz obliczonych parametrów dokonano doświadczenia w reaktorze okresowym.

  1. Weryfikacja w reaktorze okresowym

$t = \left( \frac{1}{V_{\max}} \right) \bullet (K_{m}\ \bullet ln\frac{\left\lbrack S_{0} \right\rbrack}{\left\lbrack S \right\rbrack} + \ \left\lbrack S_{0} \right\rbrack - \ \lbrack S\rbrack$)

t eksp Cp Cs t model
0 0 30 0,0
1 0,15 29,85 1,0
2 0,3 29,7 2,0
3 0,45 29,55 3,1
5 0,75 29,25 5,1
10 1,5 28,5 10,2
15 2,25 27,75 15,3
20 2,9 27,1 19,7
25 3,7 26,3 25,2
30 4,5 25,5 30,7
40 5,9 24,1 40,2
50 7,3 22,7 49,8
60 8,7 21,3 59,4
79 11,6 18,4 79,3
100 14,6 15,4 100,0
120 17,5 12,5 120,2
150 22 8 152,0
180 25,7 4,3 179,1
196 28 2 197,5
210 29,3 0,7 210,4
219 29,8 0,2 218,7
222 29,9 0,1 222,1
225 29,95 0,05 225,3

Tabela 4.

Dane uzyskane z reaktora okresowego

przy stężeniu początkowym CS0=30

Legenda:

Cp – stężenie produktu

Cs – stężenie substratu

Wykres 3.

Idealna kinematyka Michaelisa-Menten

Wykres zależności stężenia produktu od czasu

Legenda:

Cp – stężenie produktu

t – czas

Czas eksperymentalny

Czas modelowy

wartość odchylenie standardowe
Vmax 0,15066 3,96E-04
Km 0,62195 0,01996

Tabela 5.

Parametry po weryfikacji w reaktorze okresowym

Vmax

odchylenie

standardowe

Km odchylenie standardowe
metoda "biochemiczna" 0,15 9,82E-17 0,6 1,78E-15
metoda "przemysłowa" 0,15066 3,96E-04 0,62195 0,01996

Tabela 6.

Porównanie parametrów uzyskanych metodą „biochemiczną” i „przemysłową”

  1. Wnioski

Czas modelowy dokładnie pokrywa się z czasem eksperymentalnym. Oznacza to, że enzym użyty w doświadczeniu działa zgodnie z założeniami idealnej kinetyki Michaelisa-Menten. Parametry Vmax i Km zaniedbywalnie różnią się porównując metody z jakich zostały wyznaczone. Odchylenia standardowe są niskie, po pozwala na uznanie wyników za prawidłowe.

Dla idealnej kinematyki Michaelisa-Menten zarówno metoda „biochemiczna” jak i „przemysłowa” są odpowiednie do użycia, ponieważ parametry nieznacznie różnią się od siebie, a odchylenia standardowe są zaniedbywalnie niskie. Należy jednak zauważyć, iż w metodzie stosującej regresję liniową błędy są znacznie mniejsze niż kiedy stosowana jest regresja nieliniowa.

  1. Inhibicja substratowa w kinetyce Michaelis-Menten

  1. Wstęp teoretyczny

Inhibitory są to substancje zmniejszające szybkość katalityczną reakcji. Inhibicję można podzielić na nieodwracalną, prowadzącą do stałej inaktywacji enzymu oraz odwracalną. Tu wyróżniamy inhibitory kompetencyjne, nie kompetencyjne i mieszane. Inhibitory kompetencyjne są zwykle strukturalnie podobne do substratu i współzawodniczą z nim o miejsce aktywne enzymu. Podczas tej inhibicji nie następuje zmiana Vmax, ale wartość Km wzrasta w porównaniu z reakcją bez inhibitora.

Inhibitory niekompetencyjne wiążą się z enzymem w miejscu innym niż miejsce wiązania substratu. Powoduje to zmianę konformacji enzymu, a co za tym idzie zmniejsza jego aktywność katalityczną. Wartość Km pozostaje stała, jednak wartość Vmax zmniejsza się. [2,4]

Rysunek 3. Rysunek 4.

Inhibicja niekompetencyjna [3] Inhibicja kompetencyjna [3]

Jak widać inhibicja ma wpływ na parametry równania Michaelisa-Menten. Dodatkowo pojawia się nowy parametr jakim jest stała dysocjacji inhibitora Ki, którą wyraża się równaniem:

Gdzie: [E]- stężenie enzymu, [I] – stężenie inhibitora, [EI] – stężenie kompleksu inhibitor-enzym

  1. Analiza danych doświadczalnych

Cs r 1/Cs 1/r
0,1 0,021 10,00 46,68
0,2 0,037 5,00 26,69
0,3 0,050 3,33 20,04
0,5 0,068 2,00 14,73
0,8 0,083 1,33 12,10
1,0 0,093 1,00 10,80
1,5 0,105 0,67 9,53
2,0 0,112 0,50 8,93
2,5 0,116 0,40 8,60
3,0 0,119 0,33 8,40
4,0 0,122 0,25 8,20
5,0 0,123 0,20 8,13
7,5 0,122 0,13 8,20
10,0 0,119 0,10 8,40
15,0 0,112 0,07 8,93
20,0 0,105 0,05 9,53
25,0 0,098 0,04 10,16
30,0 0,093 0,03 10,80
35,0 0,087 0,03 11,45
40,0 0,083 0,03 12,10

Tabela 7.

Dane doświadczalne (zadane przez prowadzącą)

Legenda:

Cs – stężenie substratu

r- szybkość reakcji

Wykres 4.

Kinetyka Michaelisa-Menten

z inhibicją substratową

Wykres 5.

Kinetyka Michaelisa-Menten

z inhibicją substratową

wykres odwrotności

Wykres 4 różni się od wykresu idealnej kinematyki Michaelisa-Menten pokazanej na wykresie 1 co wskazuje na inhibicję. Ponieważ w początkowej fazie reakcji nie uzyskujemy produktu, wskazuje to na inhibicję substratową. Z wykresu 5 odczytujemy, że siła inhibicji wzrasta wraz ze wzrostem stężenia substratu.

W celu wyznaczenia parametrów reakcji korzystamy z warunków początkowych tej reakcji. Konieczne jest przy tym odrzucenie danych od stężenia substratu równego 5. Parametry obliczamy metodą regresji liniowej w programie Excel® oraz regresji nieliniowej w programie OriginPro®. Wykorzystanie danych, przy których inhibicja nie jest jeszcze widoczna pozwala nam wnioskować, że uzyskane parametry będą odbiegać od rzeczywistego stanu reakcji.

Wykres 6.

Kinetyka Michaelisa-Menten z inhibicją substratem w warunkach początkowych

  OriginPro® odchylenie standardowe Excel®
Vmax 0,15 1,24E-16 0,143
Km 0,6 1,61E-15 0,565
Ki 50 1,57E-13 -

Tabela 8.

Porównanie parametrów równania

Michaelisa-Menten z inhibicją substratową

wyniki zebrane z Excel® i OriginPro®

  1. Wnioski

Uzyskane wyniki są wzajemnie porównywalne. Dzięki obliczeniom uzyskaliśmy pierwszą wartość hamowania (Ki). W celu weryfikacji otrzymanych w doświadczeniu danych oraz obliczonych parametrów dokonano doświadczenia w reaktorze okresowym.

  1. Weryfikacja w reaktorze okresowym

t eksp Cp Cs t model
0 0 30 0,00
2,2 0,15 29,85 1,07
4 0,3 29,7 2,14
6 0,45 29,55 3,21
11 0,75 29,25 5,34
19 1,5 28,5 10,69
26 2,25 27,75 16,04
34 2,9 27,1 20,68
42 3,7 26,3 26,39
52 4,5 25,5 32,11
66 5,9 24,1 42,12
80 7,3 22,7 52,15
97 8,7 21,3 62,19
123 11,6 18,4 83,05
150 14,6 15,4 104,73
176 17,5 12,5 125,84
211 22 8 159,07
239 25,7 4,3 187,40
245 26,5 3,5 193,80
256 27,8 2,2 204,73
260 28,3 1,7 209,24
267 29 1 216,24
273 29,5 0,5 222,47
278 29,8 0,2 228,19

$t = \left( \frac{1}{V_{\max}} \right) \bullet (K_{m}\ \bullet ln\frac{\left\lbrack S_{0} \right\rbrack}{\left\lbrack S \right\rbrack} + \ \left\lbrack S_{0} \right\rbrack - \ \lbrack S\rbrack$)

Tabela 9.

Dane uzyskane z reaktora okresowego

przy stężeniu początkowym CS0=30

Legenda:

Cp – stężenie produktu

Cs – stężenie substratu

Wykres 7.

kinematyka Michaelisa-Menten z inhibicją substratem

Wykres zależności stężenia produktu od czasu

Legenda:

Cp – stężenie produktu

t – czas

Czas eksperymentalny

Czas modelowy

Czasy modelowy i doświadczalny na wykresie 7 nie pokrywają się. Pozwala to stwierdzić, że obliczanie czasu modelowego za pomocą postaci całkowej równania Michaelisa-Menten było założeniem błędnym.


$$t = \left( \frac{1}{V_{\max}} \right) \bullet (K_{m} \bullet \ln{\frac{\left\lbrack S_{0} \right\rbrack}{\left\lbrack S \right\rbrack} + \ \left\lbrack S_{0} \right\rbrack} - \ \left\lbrack S \right\rbrack + \ \frac{1}{K_{\text{is}}} \bullet \left( {\lbrack S}_{0}\rbrack^{2} - \left\lbrack S \right\rbrack^{2} \right))$$

Wykres 8.

kinematyka Michaelisa-Menten z inhibicją substratem

Wykres zależności stężenia produktu od czasu

Legenda:

Cp – stężenie produktu

t – czas

Czas eksperymentalny

Czas modelowy

wartość odchylenie standardowe
Vmax 0,1891 0,00534
Km 0,9775 0,11228
Ki 24,9145 1,44952

Tabela 10.

Parametry po weryfikacji w reaktorze okresowym

Vmax odchylenie standardowe Km odchylenie standardowe Ki odchylenie standardowe
metoda "biochemiczna" 0,15 1,24E-16 0,6 1,61E-15 50 1,57E-13
metoda "przemysłowa" 0,1891 0,00534 0,9775 0,11228 24,9145 1,44952

Tabela 11.

Porównanie parametrów uzyskanych metodą „biochemiczną” i „przemysłową”

  1. Wnioski

Wartości parametrów uzyskane z obu metod znacznie różnią się od siebie. W metodzie „przemysłowej” odchylenia standardowe są bardzo duże, przez co wartości tych parametrów nie mogą być brane pod uwagę. Uzyskane wyniki wskazują, że do obliczana kinetyki reakcji przy inhibicji substratem, nie powinno się używać metody regresji nieliniowej.

  1. Kinetyka Michaelisa-Menten z inhibicją produktem

  1. Wstęp teoretyczny

Hamowanie reakcji przez produkt końcowy, nazywane sprzężeniem zwrotnym jest podstawowym

mechanizmem regulacji szklaków metabolicznych w komórce. Dostępność produktu sygnalizuje, że dalsza jego synteza jest niepotrzebna i następuje hamowanie szlaku. Ponowne aktywowanie szlaku następuje przy zapotrzebowaniu organizmu na produkt.

  1. Analiza danych doświadczalnych

Cs r 1/Cs 1/r
0,1 0,021 10,0 46,7
0,2 0,038 5,0 26,7
0,3 0,050 3,3 20,0
0,5 0,068 2,0 14,7
0,8 0,083 1,3 12,0
1,0 0,094 1,0 10,7
1,5 0,107 0,7 9,3
2,0 0,115 0,5 8,7
2,5 0,121 0,4 8,3
3,0 0,125 0,3 8,0
4,0 0,130 0,3 7,7
5,0 0,134 0,2 7,5
7,5 0,139 0,1 7,2
10,0 0,142 0,1 7,1
15,0 0,144 0,1 6,9
20,0 0,146 0,1 6,9
30,0 0,147 0,0 6,8
40,0 0,148 0,0 6,8

Tabela 12.

Dane doświadczalne (zadane przez prowadzącą)

Legenda:

Cs – stężenie substratu

r- szybkość reakcji

Wykres 9.

Kinetyka Michaelisa-Menten

z inhibicją produktem

Wykres 10.

Kinetyka Michaelisa-Menten

z inhibicją produktem

wykres odwrotności

  Vmax Km
Excel® 0,15 0,6
OriginPro® 0,15 0,6
Odchylenie standardowe 9,82E-17 1,78E-15

Tabela 13.

Parametry równania Michaelisa-Menten

  1. Wnioski

Uzyskane wykresy są identyczne z wykresami idealnej kinetyki Michaelis-Menten (wykres 1 i 2). Pomimo iż, wykresy nie wskazują na inhibicję, należy pamiętać, że pod uwagę bierzemy jedynie początkowe warunki reakcji. Inhibicja produktem zachodzi zaś jedynie w końcowej fazie reakcji. Do przeprowadzenia poprawnej analizy danych doświadczalnych musimy zweryfikować wyniki w reaktorze okresowym, zakładając inhibicję produktem.

  1. Weryfikacja w reaktorze okresowym

$t = \left( \frac{1}{V_{\max}} \right) \bullet (K_{m}\ \bullet ln\frac{\left\lbrack S_{0} \right\rbrack}{\left\lbrack S \right\rbrack} + \ \left\lbrack S_{0} \right\rbrack - \ \lbrack S\rbrack$)

t eksp Cp Cs t model
0,0 0 30,00 0,0
1,0 0,15 29,85 1,0
2,0 0,3 29,70 2,0
3,1 0,45 29,55 3,1
5,1 0,75 29,25 5,1
10,4 1,5 28,50 10,2
15,8 2,25 27,75 15,3
20,5 2,9 27,10 19,7
26,4 3,7 26,30 25,2
32,5 4,5 25,50 30,7
43,6 5,9 24,10 40,2
55,1 7,3 22,70 49,8
67,2 8,7 21,30 59,4
94,6 11,6 18,40 79,3
127,0 14,6 15,40 100,0
164,0 17,5 12,50 120,2
240,2 22 8,00 152,0
342,0 25,7 4,30 179,1
463,7 28 2,00 197,5
627,5 29,3 0,70 210,4
821,3 29,8 0,20 218,7
928,2 29,9 0,10 222,1
1035,0 29,95 0,05 225,3

Tabela 14.

Dane uzyskane z reaktora okresowego

przy stężeniu początkowym CS0=30

Legenda:

Cp – stężenie produktu

Cs – stężenie substratu

Wykres 11.

kinematyka Michaelisa-Menten z inhibicją produktem

Wykres zależności stężenia produktu od czasu

Legenda:

Cp – stężenie produktu

t – czas

Czas eksperymentalny

Czas modelowy

Czas modelowy obliczony zgodnie z metodą całkową kinematyki idealnej Michaelisa-Menten jest założeniem błędnym, co widać na wykresie- czasy nie pokrywają się.


$$t = \left( \frac{1}{V_{\max}} \right) \bullet \lbrack\left( K_{m} \bullet \left( 1 + \frac{{\lbrack S}_{0}\rbrack}{\left\lbrack S \right\rbrack} \right) \bullet ln\frac{{\lbrack S}_{0}\rbrack}{\left\lbrack S \right\rbrack} + \left( 1 + \frac{K_{m}}{K_{I}} \right) \bullet \left( {\lbrack S}_{o} \right\rbrack - \ \left\lbrack S \right\rbrack \right)\rbrack$$

Wykres 12.

kinematyka Michaelisa-Menten z inhibicją produktem

Wykres zależności stężenia produktu od czasu

Legenda:

Cp – stężenie produktu

t – czas

Czas eksperymentalny

Czas modelowy

  wartość odchylenie standardowe
Vmax 0,1528 7,87E-11
Km 1,1854 1,60E-08
Ki 1,5907 2,16E-08

Tabela 15.

Parametry po weryfikacji w reaktorze okresowym

Vmax odchylenie standardowe Km odchylenie standardowe Ki odchylenie standardowe
metoda "biochemiczna" 0,15 1,24E-16 0,6 1,61E-15 - -
metoda "przemysłowa" 0,1528 7,87E-11 1,1854 1,60E-08 1,5907 2,16E-08

Tabela 16.

Porównanie parametrów uzyskanych metodą „biochemiczną” i „przemysłową”

  1. Wnioski

Odchylenia standardowe w metodzie „przemysłowej” są zaniedbywalnie małe, co pozwalałoby na stwierdzenie, że wyniki te są dobre. Jednak stała Km znacznie różni się od wyznaczonej w metodzie regresji liniowej. Dodatkowo zaobserwowano, że wprowadzając różne zakresy stałej Ki wyniki były odmienne. Przeprowadzono weryfikacje zmniejszając liczbę parametrów równania. Wiedząc, iż w fazie początkowej reakcji nie zachodzi inhibicja produktem wprowadzono do równania Vmax i Km jako stałe równe kolejno 0,15 i 0,6.

wartość odchylenie standardowe
Vmax 0,15 0
Km 0,6 0
Ki 0,8 1,13E-16

Tabela 17.

Parametry kinetyki Michaelisa-Menten przy inhibicji produktem.

Z przeprowadzonego ćwiczenia i po przeprowadzeniu obliczeń stwierdzić można, że do dokładnego oznaczenia parametrów kinetyki reakcji Michaelisa-Menten z hamowaniem produktem, konieczne jest połączenie obydwu poznanych metod, bowiem żadna z nich samodzielnie nie daje rzeczywistych wyników.

  1. Literatura

[1] J. Witwicki, Q. Ardelta, „Elementy enzymologii”, PWN, 1989r

[2] J.M.Berg, J.L.Tymoczko, L. Stryer, Biochemia, PWN, 2005

[3] http://pl.wikipedia.org/wiki/Enzymy z dnia 12.04.2012, rysunki

[4] Whiteley CG. Enzyme kinetics: partial and complete uncompetitive inhibition. „Biochemical education”. 2000, 28: 144–147,


Wyszukiwarka

Podobne podstrony:
Noworyta, inżynieria bioreaktorów, równania kinetyczne reakcji
Bryjak, inżynieria bioreaktorów L, reakcja hydrolizy sacharozy katalizowana przez inwertazę
(), Biochemia L, sprawozdanie kinetyka enzymatyczna (ćw A)(1)
Noworyta, inżynieria bioreaktorów L, sprawozdanie Bioreaktor mikrobiologiczny
Bryjak, inżynieria bioreaktorów L, reakcja izomeryzacji D glukozy do D fruktozy teoria
Bioreaktory sprawko 2, [2] Kinetyka enzymatyczna - komputery
Bryjak, inżynieria bioreaktorów L, pytania z wejściówek
Noworyta, inżynieria bioreaktorów, równania kinetyczne reakcji
Harmonogram zajęć i ogólne uwagi[2011], inżynieria bioreaktorów lab
inzynieria wytwarzania sprawozdanie 2
Kinetyka enzymayczna - komputery, [2] Kinetyka enzymatyczna - komputery
Sprawozdania, KINETYCZNA TEORIA GAZÓW, KINETYCZNA TEORIA GAZÓW
Koagulacja(1), Inżynieria Ekologiczna, Sprawozdania
wzór sprawozdania kinetyka
Noworyta, inżynieria bioreaktorów, rodzaje i opis bioreaktorów
Właściwości fizykochemiczne wody, Inżynieria Ekologiczna, Sprawozdania
Oznaczanie mętności (przezroczystości), Inżynieria Ekologiczna, Sprawozdania
Oznaczanie zawartości siarczkowodoru metodą jodometryczną, Inżynieria Ekologiczna, Sprawozdania

więcej podobnych podstron