Program ćwiczeń z mikrobiologii dla studentów III roku Wydziału Lekarskiego w roku akademickim
2008/2009.
Semestr zimowy
Zajęcia rozpoczynają się 6 paz
dziernika 2008 r.
ćwiczenie 1 (06-09.10.08)
Temat: Hodowla i morfologia bakterii. Cel badania bakteriologicznego.
Część teoretyczna
f&Organizacja i dyscyplina pracy w czasie ćwiczeń z mikrobiologii.
f&Omówić przebieg i cele badania mikrobiologicznego (preparaty bezpośrednie, hodowla, identyfikacja, antybiogram,
badanie serologiczne, interpretacja).
f&Typy mikroskopów używanych na ćwiczeniach: świetlny, z ciemnym polem widzenia, fluorescencyjny.
f&Morfologia bakterii.
f&Metody barwienia preparatów mikroskopowych: barwienie proste, złożone, pozytywne, negatywne, negatywno-
pozytywne.
Część praktyczna
f&Opisywanie morfologii kolonii na wybranych podłożach.
f&Sporządzanie i oglądanie w mikroskopie świetlnym preparatów ze stałych hodowli bakterii, barwienie metodą
Grama.
f&Demonstracja gotowych preparatów z bakterii w mikroskopie świetlnym.
ćwiczenie 2 (13-16.10.08)
Temat: Ziarniaki Gram-dodatnie: gronkowce i paciorkowce.
Część teoretyczna
f&Charakterystyka i chorobotwórczość Staphylococcus: aureus, epidermidis, saprophyticus i Micrococcus.
f&Charakterystyka i chorobotwórczość Streptococcus: pyogenes, pneumoniae, orale i Enterococcus.
Część praktyczna
f&Demonstracja hodowli na agarze z krwią, opis morfologii kolonii, rodzaje hemolizy.
f&Demonstracja gotowych preparatów z omawianych bakterii w mikroskopie świetlnym.
f&Testy identyfikacyjne dla gronkowców : wytwrzanie katalazy, CF, (wykonanie).Wrażliwość na nowobiocynę i
furazolidon , koagulaza (demonstracja), ID Staph. do odczytu.
f&Testy identyfikacyjne dla paciorkowców: wrażliwość na bacytracynę i optochinę, szereg biochemiczny dla
enterokoków, wykrywanie antygenów grupowych ( demonstracja ), API Strep. do odczytu.
ćwiczenie 3 (20-23.10.08)
Temat: Gram-dodatnie bakterie cylindryczne: laseczki, maczugowce,
promieniowce.
Część teoretyczna
f&Charakterystyka i chorobotwórczość laseczek: Bacillus anthracis, Clostridium tetani, Cl. difficile, Cl. botulinum ,
Cl. perfringens.
f&Charakterystyka i chorobotwórczość maczugowców  Corynebacterium diphtheriae .
f&Szczepionka DPT ( diphtheria, pertusis, tetanus )
f&Charakterystyka i chorobotwórczość promieniowców  Actinomyces i Nocardia.
Część praktyczna
f&Demonstracja hodowli omawianych bakterii.
f&Demonstracja gotowych preparatów bakteryjnych w mikroskopie świetlnym barwionych metodami Grama, Neissera
i Mellera.
f&Testy identyfikacyjne dla promieniowców i maczugowców ( API ANA, Coryne.).
f&Próba Eleka (demonstracja  zdjęcie).
ćwiczenie 4 (27-30.10.08)
Temat: Gram-ujemne pałeczki jelitowe i niefermentujące.
Część teoretyczna
f&Charakterystyka i chorobotwórczość pałeczek Enterobacteriaceae: Salmonella, Shigella, Escherichia coli, Proteus,
Klebsiella.
f&Charakterystyka i chorobotwórczość pałeczek niefermentujacych : Pseudomonas aeruginosa i Acinetobacter
baumanii.
1
Część praktyczna
f&Demonstracja hodowli bakterii na podłożach wybiórczych: Mac Conkey,a i SS (Enterobacteriaceae), oraz na agarze
zwykłym i Mac Conkey,a Pseudomonas i Acinetobacter ).
f&Demonstracja gotowych preparatów bakteryjnych w mikroskopie świetlnym.
f&Identyfikacja gramujemnych pałeczek: odczyt testów ID 32 GN dla Enterobacteriaceae, Pseudomonas i
Acinetobacter. Test na wytwarzanie oksydazy i barwników dla G(-) niefermentujących.
ćwiczenie 5 (04-06.11.08 i 10.11.08)
Temat: Bakterie spiralne: Treponema, Leptospira, Borrelia,
Campylobacter, Helicobacter.
Część teoretyczna
f&Charakterystyka i chorobotwórczość Treponema pallidum, Leptospira, Borrelia recurrentis i B. burgdorferi,
Campylobacter jejuni, Helicobacter pylori.
Część praktyczna
f&Demonstracja hodowli Campylobacter i Helicobacter.
f&Demonstracja bezpośredniego preparatu z bioptatu z H.pylori.
f&Demonstracja preparatu srebrzonego z Treponema pallidum .
f&Demonstracja Leptospira w mikroskopie z ciemnym polem widzenia.
f&Demonstracja bezpośredniego rozmazu krwi z B.recurrentis.
f&Oglądanie gotowych preparatów z Campylobacter i Helicobacter.
ćwiczenie 6 (17-20.11.08) Temat: Antyseptyka
Sprawdzian opisowy I z ćwiczeń od 1 do 5
Część teoretyczna
f&Omówienie preparatów stosowanych w antyseptyce na podstawie przygotowanych materiałów wcześniej
dostarczonych studentom.
Część praktyczna
f&Ocena skuteczności higienicznego mycia rąk (mycie + jednokrotna dezynfekcja) - jedna płytka agarowa z krwią dla
1 studenta.
Przygotowanie do następnego ćwiczenia: posiewy redukcyjne wymazów z błon śluzowych nosa, jamy ustnej i
skóry studenta na podłożach agarowych z krwią.
ćwiczenie 7 (24-27.11.08)
Temat: Flora fizjologiczna organizmu.
Część teoretyczna
f&Omówienie roli flory endogennej człowieka.
Część praktyczna
f&Odczyt posiewów własnych:
- ocena morfologii kolonii bakterii,
- wykonanie i ocena preparatów mikroskopowych sporządzonych z różnych kolonii i zabarwionych metodą Grama.
f&Wykonanie natywnych preparatów bezpośrednich z kieszonek zębowych i oglądanie ich w mikroskopie z ciemnym
polem widzenia.
f&Preparat bezpośredni z kału barwiony met. Grama  demonstracja.
ćwiczenie 8 (01-04.12.08)
Temat: Antybiotyki  część I
Część teoretyczna
f&Metody oznaczania wrażliwości bakterii i grzybów na antybiotyki:
- metoda krążkowo-dyfuzyjna (omówienie)
- metoda seryjnych rozcieńczeń w pożywce bulionowej i oznaczanie MIC i MBC (demonstracja)
- oznaczanie MIC metodą E-testu ( demonstracja )
- metoda rozcieńczenia leku w pożywce Loewensteina-Jensena dla prątków gruz
licy ( demonstracja )
- oznaczanie wrażliwości grzybów metodą Fungi-Test (demonstracja) .
Część praktyczna
f&Wykonanie antybiogramu metodą krążkowo-dyfuzyjną dla wybranych bakterii:
Staphylococcus aureus z ropy (czyraczyczność)
Staphylococcus aureus z wymazu z nosa (nosicielstwo)
Enterococcus faecalis z krwi (zapalenie wsierdzia)
2
Proteus mirabilis z moczu (zapalenie cewki moczowej)
Pseudomonas aeruginosa z ropy (rana pooperacyjna)
ćwiczenie 9 (08-11.12.08)
Temat: Antybiotyki  część II
Część teoretyczna
f&Omówienie wybranych mechanizmów oporności bakterii na antybiotyki  MRS, MLSB,VRE, GRE, MBL, HLAR,
ESBL.
Część praktyczna
f&Odczyt i interpretacja własnych antybiogramów.
f&Odczyt antybiogramów przygotowanych metodą ATB dla różnych bakterii.
f&Wykonanie testu z cefinazą  wykrywanie beta-laktamaz u Moraxella.
f&Demonstracja testu dwóch krążków wykonanego w celu wykrycia ESBL u Klebsiella pneumoniae (wynik dodatntni
i ujemny).
f&Demonstracja metody E-test do wykrywania ESBL.
ćwiczenie 10 (15-18.12.08)
Temat: Podstawy diagnostyki zakażeń wirusowych.
Sprawdzian opisowy II z ćwiczeń od 6 do 9
Część teoretyczna
f&Pobieranie i przesyłanie materiałów do badań wirusologicznych.
f&Metody hodowli wirusów.
f&Odczyny serologiczne w diagnostyce chorób wirusowych.
Część praktyczna
f&Demonstracja zakażonych wirusami linii komórkowych ( efekt cytopatyczny ).
f&Demonstracja hodowli wirusów bakteryjnych (łysinki).
f&Demonstracja odczynu Hirsta ( miareczkowanie wirusa ) i Hirsta-Salka. (serologiczny odczyn zahamowania
aglutynacji).
f&Demonstracja odczynu ELISA.
Ćwiczenie 11 (05-08.01.09)
Temat: Podstawy diagnostyki zakażeń grzybiczych.
Część teoretyczna
f&Omówienie najczęściej występujących przypadków grzybic miejscowych i układowych oraz czynników
etiologicznych ( Candida, Cryptococcus, Aspergillus).
f&Omówienie pobierania, przesyłania i zasad hodowli grzybów chorobotwórczych.
Część praktyczna
f&Identyfikacja grzybów drożdżopodobnych:
- obserwacja morfologii hodowli na podłożu Sabourauda i Chromagar Candida,
- obserwacja blastospor i artrospor w preparatach barwionych metodą Grama,
- odczyt testu filamentacji (wykonanie preparatów natywnych),
- obserwacja charakterystycznych struktur (chlamydospor) w mikrohodowli,
- odczyt testu ID 32 C.
f&Identyfikacja grzybów pleśniowych:
- obserwacja morfologii hodowli Aspergillus i Penicillium na podłożu Czapka,
- wykonanie preparatów w laktofenolu i obserwacja charakterystycznych konidioforów.
Materiały teoretyczne do ćwiczeń diagnostycznych znajdują się na stronie internetowej: www.mbio.am.wroc.pl
Przygotowanie do następnego ćwiczenia.
Opracowanie próbek z górnych dróg oddechowych.
1. Pacjent z anginą  2 wymazy z gardła: 1 preparat bezpośredni barwiony metodą Grama, 2-gi posiew na podłoża
agarowe: agar z krwią, Mac Conkey,a, Casmana.
2. Pacjent z ostrym zapaleniem nagłośni  wymaz spod nagłośni: posiew na podłoża: agar z krwią, Mac Conkey,a,
Casmana.
3
3. Pacjent z przewlekłym zapaleniem zatok  punktat z zatoki: preparat bezpośredni barwiony metodą Grama i
posiew na podłoża: agar z krwią,Mac Conkey,a, Casmana.
ćwiczenie 12 (12-15.01.09)
Temat: Zakażenia górnych dróg oddechowych.
Część teoretyczna
f&Omówienie możliwych czynników etiologicznych zakażeń górnych dróg oddechowych, ukierunkowanie i schemat
badania mikrobiologicznego. Pobieranie i przesyłanie próbek do badania.
Część praktyczna
f& Odczyt posiewów próbek z górnych dróg oddechowych, identyfikacja wyhodowanych patogenów.
- Identyfikacja Streptococcus pyogenes: preparat mikroskopowy barwiony, metodą Grama (wykonanie), test
wrażliwości na bacytracynę (demonstracja ).
- Identyfikacja Haemophilus: preparat mikroskopowy barwiony metodą Grama ( wykonanie ) i wzrost na podłożu
Casmana w obecności czynników wzrostowych X i V ( demonstracja ).
- Identyfikacja Moraxella: preparat mikroskopowy barwiony metodą Grama ( wykonanie ) i wzrost na podłożu M-H z
krążkiem BC zawierającym glukozę i błękit bromotymolowy ( demonstracja ).
- Wykonanie testu cefinazowego wykrywającego beta-laktamazy u Moraxella i Haemophilus.
f&Demonstracja hodowli wybranych patogenów górnych dróg oddechowych:
- Staphylococcus aureus,
- Corynebacterium diphtheriae.
f&Demonstracja gotowych preparatów z w/w patogenów i preparatu bezpośredniego z wymazu z gardła chorego na
anginę Plauta-Vincenta w mikroskopie świetlnym.
Przygotowanie do następnego ćwiczenia.
Opracowanie próbek z dolnych dróg oddechowych.
1. Pacjent z zapaleniem płuc.
a/ próbka krwi na podłożu transportowo-wzrostowym po 24 godz. inkubacji;aseptyczny posiew na podłoża: agar z
krwią, Mac Conkey,a
b/ plwocina - posiew na podłoża: agar z krwią, Mac Conkey,a, Casmana iSabouraud.
2. Pacjent z zapaleniem płuc  wydzielina oskrzelowa - posiew na podłoża: agar z krwią, Mac Conkey,a, Casman,
Sabouraud.
3. Pacjent z zapaleniem płuc  plwocina - posiew na podłoża: agar z krwią, Mac Conkey,a, Casmana i Sabouraud.
ćwiczenie 13 (19-22.01.09)
Temat: Zakażenia dolnych dróg oddechowych.
Część teoretyczna
f&Omówienie możliwych czynników etiologicznych zakażeń dolnych dróg oddechowych, ukierunkowanie i schemat
badania mikrobiologicznego. Pobieranie i przesyłanie próbek do badania.
Część praktyczna
f&Odczyt posiewów próbek z dolnych dróg oddechowych, identyfikacja szczepów, odczyt i interpretacja
antybiogramów.
- identyfikacja Streptococcus pneumoniae: preparat mikroskopowy barwiony metodą Grama ( wykonanie ) test z
optochiną (demonstracja).
- identyfikacja Gram-ujemnych pałeczek: odczyt przygotowanych testów ID 32-GN
- odczyt antybiogramu dla Klebsiella ( ocena ESBL ) wykonanego metodą krążkowo-dyfuzyjną i dla Acinetobacter
wykonanego metodą ATB.
- badanie wrażliwości na penicylinę Streptococcus pneumoniae (demonstracja)
f&Demonstracja hodowli wybranych patogenów dolnych dróg oddechowych:
- Psudomonas aeruginosa
- Moraxella catarrhalis
f&Demonstracja gotowych preparatów z w/w patogenów w mikroskopie świetlnym.
SEMESTR LETNI
ćwiczenie 14 (16-19.02.09.)
Temat: Zakażenia przenoszone drogą płciową
Część teoretyczna
f&Omówienie zakażeń przenoszonych drogą płciową i czynników etiologicznych.
Część praktyczna  ćwiczenia demonstracyjne
4
 - diagnostyka kiły:
- USR i TPHA do odczytu i interpretacji,
- FTA-ABS i ELISA do omówienia,
- preparat srebrzony z tkanki mózgowej,
- diagnostyka rzeżączki (GU):
- hodowla gonokoków na podłożu Roiron,
- wykonanie testu na oksydazę,
- interpretacja preparatu z ropy rzeżączkowej,
- omówienie testu przesiewowego Microcult GC,
- diagnostyka rzęsistkowicy:
- demonstracja preparatu z Trichomonas vaginalis (Giemsa),
- diagnostyka NGU:
- hodowla M.hominis ,
- Mycoplasma IST-test do odczytu i interpretacji,
- Chlamydia trachomatis (zakażona linia komórkowa Mc Coy,a foto.),
- diagnostyka grzybicy dróg rodnych (odwołanie do ćw. o grzybach).
Przygotowanie do następnego ćwiczenia.
f& Opracowanie próbek moczu. Posiew ilościowy moczu od 3 pacjentów na agar z krwią Mac Conkey,a i
Sabourauda.
ćwiczenie 15 (23-26.02.09.)
Temat: Zakażenia układu moczowego
Sprawdzian opisowy III z ćw. od 10 do 14
Część teoretyczna
f&Omówienie możliwych czynników etiologicznych zakażenia, ukierunkowanie i schemat badania mikrobiologicznego
moczu. Pobieranie i przesyłanie moczu do badania.
(Materiały teoretyczne znajdują się na stronie internetowej: www.mbio.am.wroc. pl)
Część praktyczna
f&Odczyt posiewów moczu, identyfikacja szczepów, interpretacja antybiogramów:
- identyfikacja pałeczek jelitowych, odczyt szeregów biochemicznych i testów ID  32E
- identyfikacja Staphylococcus: preparat barwiony metodą Grama, wykonanie szkiełkowych testów na
obecność CF i katalazy, odczyt testu ID-32 Staph, demonstracja wzrostu na podłożu Chapmana
- demonstracja testu Golda dodatniego i ujemnego
f&Demonstracja hodowli wybranych patogenów układu moczowego
- E.coli
- Klebsiella
- Proteus
- Staphylococcus epidermidis, St. saprophyticus, St. aureus
- Enterococcus faecalis
- Candida albicans
f&Demonstracja gotowych preparatów ww. patogenów w mikroskopie świetlnym.
f&Demonstracja Uriline , Uricult  gotowy zestaw namnażający do ilościowego posiewu moczu.
Przygotowanie do następnego ćwiczenia.
f& Opracowanie próbek kału. Posiewy wymazów z odbytu od trzech pacjentów na podłoża wybiórcze: Mac
Conkey,a, SS i SF.
ćwiczenie 16 (2-5.03.09.)
Temat: Zakażenia układu pokarmowego
Część teoretyczna
f&Omówienie możliwych czynników etiologicznych zakażeń, ukierunkowanie i schemat badania mikrobiologicznego
kału. Pobieranie i przesyłanie próbek do badania.
(Materiały teoretyczne znajdują się na stronie internetowej: www.mbio.am.wroc. pl)
Część praktyczna
f& Odczyt posiewów kału, identyfikacja szczepów:
- odczyt testów ID-32GN,
- typowanie serologiczne szczepów metodą aglutynacji szkiełkowej (demonstracja Salmonella)
f&Demonstracja hodowli wybranych patogenów układu pokarmowego:
- Salmonella
- Shigella
- Escherichia coli
5
- Yersinia enterocolitica
- Campylobacter jejuni.
f&Demonstracja testu do wykrywania rotawirusów
- Slidex Rota Kit
f&Odczyn Widala ( demonstracja )
Przygotowanie do następnego ćwiczenia.
f&Opracowanie próbek z tk.miękkich (ropa):
1. Pacjent z ropniem podprzeponowym:
Preparat bezpośredni, posiew na podłoża: agar z krwią, MC, oraz dla beztlenowców  agar Schaedlera z krwią i
płynne podłoże tioglikolanowe.
2. Pacjent z czyrakiem mnogim:
Preparat bezpośredni, posiew na podłoża: agar z krwią, MacConkey,a, Schaedlera z krwią i płynne podłoże
tioglikolanowe.
3. Pacjent z raną po oparzeniu:
Preparat bezpośredni, posiew na podłoża: agar z krwią, Mac Conkey,a, bulion cukrowy. (w każdym materiale 2
wymazy)
ćwiczenie 17 9-12.03.09.)
Temat: Zakażenia skóry i tkanek miękkich
Część teoretyczna
f&Omówienie możliwych czynników etiologicznych zakażeń, ukierunkowanie i schemat badania mikrobiologicznego
ropy. Pobieranie i przesyłanie próbek do badania.
(Materiały teoretyczne znajdują się na stronie internetowej: www.mbio.am.wroc. pl )
Część praktyczna
f&Odczyt posiewów próbek ze zmian ropnych, identyfikacja szczepów, interpretacja antybiogramów.
- Identyfikacja Gram-ujemnych pałeczek: odczyt testów ID 32 GN
- Identyfikacja Staphylococcus: preparat z hodowli własnej barwiony metodą Grama, wykonanie testu na katalazę,
demonstracja reakcji na koagulazę, odczyt testu ID-32 Staph.
- Identyfikacja Bacteroides  odczyt testu API 20A.
- Odczyt i interpretacja antybiogramów przygotowanych dla wyhodowanych szczepów.
- Identyfikacja Pseudomonas  reakcja na oksydazę.
f&Demonstracja hodowli wybranych patogenów zakażeń skóry i tkanek miękkich.
- Escherichia coli
- Pseudomonas aeruginosa
- Staphylococcus aureus
- Bacteroides fragilis
f&Demonstracja gotowych preparatów z ww. bakterii w mikroskopie świetlnym.
Przygotowanie do następnego ćwiczenia.
Opracowanie próbek: płynu mózgowo-rdzeniowego.
1. Pacjent z zapaleniem opon mózgowo-rdzeniowych:
a/ płyn mózgowo-rdzeniowy na podłożu transportowo-wzrostowym Meningomedium po 24 godz. inkubacji;
aseptyczny posiew na podłoża agarowe: TSA z krwią, Mac Conkey,a, Casmana,
b/ Próbka płynu mózgowo-rdzeniowego w jałowej probówce; preparat bezpośredni barwiony metodą Grama (
wykonanie ) i testy koaglutynacji lateksowej wykrywające antygeny bakteryjne (demonstracja),
c/ krew na podłożu transportowo-wzrostowym po 24 godz. inkubacji, aseptyczny posiew na podłoże agarowe:
TSA,Mac Conkey,a, Casmana,
2. Pacjent z zapaleniem opon mózgowo-rzdeniowych
- krew na podłożu transportowo-wzrostowym po 24 godz. Inkubacji; aseptyczny posiew na podłoża agarowe:
agar z krwią i Mac Conkey,a.
3. Pacjent z ropniem mózgu.
- krew na podłożu transportowo-wzrostowym po 24 godz. Inkubacji; aseptyczny posiew na podłoża agarowe:
agar z krwią i Mac Conkey,a.
ćwiczenie 18 (16-19.03.09.)
Temat: Zakażenia centralnego układu nerwowego
Część teoretyczna
f&Omówienie możliwych czynników etiologicznych zakażeń, ukierunkowanie i schemat badania mikrobiologicznego
kału. Pobieranie i przesyłanie próbek do badania.
(Materiały teoretyczne znajdują się na stronie internetowej:www.mbio. am.wroc. pl )
6
Część praktyczna
f&Odczyt posiewów próbek z centralnego układu nerwowego i interpretacja antybiogramów.
- Identyfikacja Neisseria meningitidis: preparat mikroskopowy barwionyMetodą Grama i test na oksydazę
(wykonanie)
- Identyfikacja Steptococcus orale: preparat mikroskopowy barwiony metoda Grama (wykonanie), test wrażliwości na
optochinę (demonstracja)
- Identyfikacja Enterobacter: odczyt testu ID-32GN.
- Odczyt przygotowanego antybiogramu dla Enterobacter i Str. orale.
Demonstracja hodowli  wybranych patogenów krwi i płynu mózgowo-rdzeniowego:
- Neisseria meningitidis
- Streptococcus agalactiae
- Streptococcus orale
- Escherichia coli
- Enterobacter cloaceae
- Candida albicans
Demonstracja gotowych preparatów z w/w drobnoustrojów w mikroskopie świetlnym.
Demonstracja podłoży transportowo-namnażających do posiewów krwi, płynu mózgowo-rdzeniowego.
Demonstracja aparatu Bact Alert do hodowli posiewów.
Przygotowanie do następnego ćwiczenia.
Opracowanie próbek krwi:
2. Pacjent z zapaleniem wsierdzia:
- krew na podłożu transportowo-wzrostowym po 24 godz. Inkubacji; aseptyczny posiew na podłoża agarowe:
agar z krwią i Mac Conkey,a.
3. Pacjent z posocznicą:
- krew na podłożu transportowo-wzrostowym po 24 godz. Inkubacji; aseptyczny posiew na podłoża agarowe:
agar z krwią i Mac Conkey,a.
ćwiczenie 19 (23-26.03.09.)
Temat: Zakażenia ogólnoustrojowe (sepsa)
Sprawdzian opisowy IV z ćw. od 15 do 19
Część teoretyczna
f&Omówienie możliwych czynników etiologicznych zakażeń, ukierunkowanie i schemat badania mikrobiologicznego
krwi. Pobieranie i przesyłanie próbek do badania.
(Materiały teoretyczne znajdują się na stronie internetowej: www.mbio.am.wroc. pl )
Część praktyczna
f&Odczyt posiewów próbek z krwi i interpretacja antybiogramów.
- Identyfikacja Steptococcus orale: preparat mikroskopowy barwiony metoda Grama (wykonanie ), test wrażliwości
na optochinę (demonstracja )
- Identyfikacja Enterobacter: odczyt testu ID-32GN.
- Odczyt przygotowanego antybiogramu dla Enterobacter i Str. orale.
Demonstracja hodowli  wybranych patogenów krwi i płynu mózgowo-rdzeniowego:
- Neisseria meningitidis
- Streptococcus agalactiae
- Streptococcus orale
- Escherichia coli
- Enterobacter cloaceae
- Candida albicans
Demonstracja gotowych preparatów z w/w drobnoustrojów w mikroskopie świetlnym.
Demonstracja podłoży transportowo-namnażających do posiewów krwi, płynu mózgowo-rdzeniowego.
Demonstracja aparatu Bact Alert do hodowli posiewów.
ćwiczenie 20 (30.04- 2.05.09)
Egzamin praktyczny
Wykonanie preparatu z hodowli, barwienie metodą Grama i wstępna identyfikacja drobnoustroju.
Ocena gotowego , barwionego preparatu mikroskopowego w mikroskopie świetlnym.
7