Informacje o fakultatywnych ćwiczeniach dla studentów II Roku Wydziału Lekarskiego

Techniki medycyny molekularnej

Zakład Technik Molekularnych AM Wrocław

semestr letni 2010/11

1. Osoba odpowiedzialna za nauczanie przedmiotu:

Prof. dr hab. Tadeusz Dobosz

2.Nazwiska osób prowadzących zajęcia:

mgr Anna Jonkisz Zakład Technik Molekularnych, ul. Curie-Skłodowskiej 52, 50- 369 Wrocław, tel [phone]-mail: [e-mail]

dr Małgorzata Małodobra Zakład Technik Molekularnych, ul. Curie-Skłodowskiej 52, 50- 369 Wrocław, tel [phone]

3.Nazwa jednostki (jednostek) realizującej przedmiot:

Zakład Technik Molekularnych Katedry Medycyny Sądowej

4.Miejsce przedmiotu w programie studiów: Rok II Semestr IV (letni)

5.Liczba godzin

Jednostka(i) uczestniczące w nauczaniu przedmiotu	Semestr letni
		W	Ć	S
Zakład Technik Molekularnych Katedry Medycyny Sądowej	-	20	-
Razem:	-	20	-

6.Liczebność grup studenckich na podstawie Uchwały Senatu AM nr 239 z dnia 29 maja 2006 r.: ćwiczenia: grupa 12 osobowa

7.  Opis programu

Metody izolacji materiału genetycznego ( DNA i RNA ) - poznanie różnych technik.Trawienie DNA restryktazami, hybrydyzowanie DNA z odpowiednimi sondami. Reakcja odwrotnej transkrypcji. Analiza polimorfizmów typu STR metodą PCR multipleks, analiza instrumentalna mutacji punktowej przy użyciu analizatora genetycznego, sekwencjonowanie DNA Real-time PCR.

8.Tematyka poszczególnych seminariów:

Ćwiczenia - Semestr letni
Tematyka seminariów (20 godzin)		Imię i nazwisko osoby prowadzącej zajęcia
Ćwiczenie 1	Pobieranie krwi. Izolacja limfocytów na gradisolu. Zabezpieczenie limfocytów do izolacji DNA i RNA. Sporządzanie plam krwi na bibule.	mgr A. Jonkisz
Ćwiczenie 2	Izolacja DNA z limfocytów metodą fenolowo-solną. Preparacja DNA z plam krwi met.cheleksową.	mgr A. Jonkisz
Ćwiczenie 3	Izolacja całkowitego RNA metodą kolumienkową, reakcja odwrotnej transkrypcji. Real-Time PCR ( demonstracja).	mgr A. Jonkisz dr M. Małodobra
Ćwiczenie 4	Analiza DNA metodą fingerprinting - trawienie DNA restryktazami, elektroforeza żelowa, Southern blot, hybrydyzacja na folii nylonowej.	mgr A. Jonkisz
Ćwiczenie 5	Test na translokację białaczkową z wykorzystaniem techniki PCR. Indukcja angiogenezy w krytycznym niedokrwieniu kończyn dolnych- wykorzystanie terapii genowej.	mgr A. Jonkisz dr M. Małodobra
Ćwiczenie 6	Elektroforeza żelowa, detekcja produktów PCR w świetle UV. Automatyzacja met. izolacji materiału genetycznego.	mgr A. Jonkisz
Ćwiczenie 7	Analiza instrumentalna. Sekwencjonowanie i minisekwencjonowanie DNA .	mgr A. Jonkisz

UWAGA: Terminy zajęć są do uzgodnienia ze słuchaczami, proponowane przez nas od 08.03.2011-19.04.2011

9.Forma zaliczenia przedmiotu: zaliczenie na podstawie obecności

Dopuszczalna jest jedna nieobecność

10.Literatura: Zalecana literatura:

1. Turner P.C., McLennan A.G., Bates A.D., White M.R.H., Biologia molekularna. Krótkie wykłady, PWN, 2004.

2. Winter P.C., Hickey G.I., Fletcher H.L., Genetyka. Krótkie wykłady. PWN, 2004