• Odczynniki: fiolet krystaliczny, płyn Lugola, etanol, fuksyna, 3% woda utleniona, 1% roztwór tetrametylo-p-fenylodwuaminy, liofilizowana plazma królicza z dodatkiem EDTA.
• Pożywki: płyn do rozcieńczeń, testy biochemiczne API, podłoże Muelłer--Hintona, wystandaryzowane krążki bibułowe nasycone określonymi antybiotykami.
• Wykonanie:
1. Z hodowli sporządzić preparat mikroskopowy barwiony metodą Grama.
2. Z hodowli 18-24-godzinnej sporządzić preparat w kropli wiszącej w celu sprawdzenia zdolności ruchu drobnoustrojów.
3. Zbadać zdolność drobnoustrojów do wytwarzania enzymów: katalazy, koagulazy i oksydazy cytochromowej.
4. W zależności od uzyskanych wyników przeprowadzić identyfikację drobnoustrojów na testach:
- API 20 E - dla pałeczek oksydazo-ujemnych;
- API 20 NE - dla pałeczek oksydazo-dodatnich;
- API Staph - dla gronkowców katalazo-dodatnich.
5. Sporządzić antybiogramy wybranych bakterii Gram-dodatnich i Gram--ujemnych metodą dyfuzyjno-krążkową na pożywce stałej lub płynnej Mueller-Hintona:
- nanieść odpowiednią ilość (2 x 10®-3 x 106 komórek w 1 ml) 18-24-go-dzinnej hodowli bakteryjnej na płytkę z wylanym, zestalonym oraz podsuszonym podłożem i rozprowadzić ją po powierzchni za pomocą głaszczki;
- na przygotowane podłoże nanieść wystandaryzowane krążki bibułowe nasycone określonymi antybiotykami - krążki należy rozmieścić w odległości 2-3 cm od siebie, aby uniknąć nakładania się stref zahamowania wzrostu;
- organizmy inkubować w temperaturze optymalnej przez 24 h;
- po inkubacji zmierzyć strefy zahamowania wzrostu i porównać stopień wrażliwości mikroorganizmów na działanie poszczególnych antybiotyków, wyróżnić antybiotyki o szerokim i wąskim spektrum działania.
W czasie inkubacji cząsteczki danego antybiotyku dyfundują do pożywki, hamując wzrost wrażliwych drobnoustrojów. W miarę oddalania się od krążka stężenie antybiotyku w podłożu maleje, aż do stężenia, które nie działa już na drobnoustroje - wówczas pojawia się wzrost komórek w postaci jednolitego nalotu. Wokół krążków z antybiotykami mogą się pojawiać strefy zahamowania wzrostu, których średnica jest miarą stopnia wrażliwości drobnoustroju na antybiotyk. Odczyt wyników polega na pomiarze strefy zahamowania wzrostu, łącznie ze średnicą krążka, a wartość średnicy strefy zahamowania wzrostu podaje się po odjęciu średnicy krążka (rys. 17.2).
152