Copyright © 2008 Cornetis, www.cornetis.com.pl
ISSN 1232-9886
251
PRACE POGLĄDOWE / Review articles
Gastroenetrologia Polska 2008, 15 (4): 251-254
¹ Klinika Gastroenterologii Dziecięcej i Chorób Metabolicznych Uniwersytetu Medycznego w Poznaniu
² Katedra i Zakład Bakteriologii Farmaceutycznej Uniwersytetu Medycznego w Poznaniu
³ I Katedra Pediatrii i Klinika Gastroenterologii Dziecięcej i Chorób Metabolicznych Uniwersytetu Medycznego w Poznaniu
Vancomycin resistant enterococci – risk characteristic and treatment perspectives
Wankomycynooporne enterokoki – charakterystyka zagrożeń i perspektyw
terapeutycznych
Enterokoki wankomycynooporne (VRE) są obecnie jednymi z głównych patogenów szpitalnych. Usunięcie VRE z raz zainfekowanego
środowiska szpitalnego jest niezwykle trudne, głównie z powodu ich wysokiej zdolności do nabierania cech oporności na antybiotyki.
Oporne enterokoki są ponadto zdolne do przekazywania tej cechy na inne drobnoustroje patogenne. Obecnie brak skutecznych metod
zapobiegania i zwalczania kolonizacji VRE. Celowym może być stosowanie probiotyków, ze względu na ich udowodnioną skuteczność
w eliminacji licznych mikroorganizmów chorobotwórczych. Dodatkową ich zaletą jest bezpieczeństwo stosowania i korzystny wpływ
na ludzkie zdrowie.
Słowa kluczowe: enterokoki wankomycynooporne (VRE), infekcje szpitalne, patogeny szpitale, antybiotykooporność
Vancomycin resistant enterococci (VRE) are nowadays one of the major nosocomial pathogens. Removal of VRE from infected hospital
environment is extremely difficult, mostly because of VRE ability to acquire high-level resistance to antibiotics. Resistant enterococci
are also able to exchange genetic information with other pathogens. Nowadays we don’t have effective methods to prevent and
eliminate VRE colonisation. Probiotics usage can be purposeful action, because of their proved ability to eliminate many harmful
microorganisms. Additional advantage of the probiotics is safely usage and beneficial effect on people’s health. (Gastroenterol. Pol.,
2008, Vol. 15, No. 4, p. 251-254)
Key words: vancomycin resistant enterococci (VRE), nosocomial infections, nosocomial pathogens, antibiotics resistance
Streszczenie
Abstract
Adres do korespondencji:
Patrycja Szachta¹, Michalina Pazgrat², Iwona Ignyś¹, Wojciech Cichy³
Wprowadzenie
Bakterie z rodzaju Enterococcus należą do ziarenkow-
ców Gram(+) i stanowią znaczną część mikroflory fizjolo-
gicznej przewodu pokarmowego człowieka. Z tego powodu
zwane są często również paciorkowcami kałowymi. Drob-
noustroje te występują także w jamie ustnej i pochwie.
Opisywane ziarniaki są obecne w środowisku naturalnym
(woda, powietrze, gleba czy rośliny). Początkowo zaliczano
je do rodzaju Streptococcus, z którego zostały wyodrębnione
w 1984 roku. Przez długi czas enterokoki uważane były za
drobnoustroje komensalne o znikomej szkodliwości. Opi-
sywano nieliczne przypadki urosepsy, zapalenia otrzewnej
czy wsierdzia. Obecnie jednak obserwuje się ciągle rosnącą
częstotliwość zakażeń, których czynnikiem etiologicznym są
ziarenkowce Gram(+), także z rodzaju Enterococcus. Wśród
opisywanych drobnoustrojów największą rolę w rozwoju
zakażeń odgrywają 2 gatunki: Enterococcus faecium (E.
faecium) i Enterococcus faecalis (E. faecalis) (1). Uważa się,
że E. faecalis odpowiedzialny jest za około 75-80 %, a E. fae-
cium za około 20% wszystkich zakażeń wywoływanych przez
Enterococcus sp. Zdecydowanie rzadziej izoluje się inne
gatunki, takie jak np. E. avium, E. casseliflavus czy E. durans
(2). Coraz częściej drobnoustroje z tego rodzaju są czynni-
kami etiologicznymi zakażeń układu moczowego, zapaleń
wsierdzia, opon mózgowo-rdzeniowych, uogólnionych zaka-
żeń pooperacyjnych, posocznic czy zakażeń uogólnionych
u noworodków i niemowląt (3). Uważa się obecnie, że obok
gronkowców złocistych i koagulazoujemnych, enterokoki są
jednymi z najczęstszych przyczyn bakteremii szpitalnych.
Szczególnie niebezpieczne są zakażenia wywołane przez
enterokoki oporne na wankomycynę, tzw. VRE (vancomycin
resistant enterococci).
Mgr. inż. Patrycja Szachta
Klinika Gastroenterologii Dziecięcej i Chorób Metabolicznych Uniwersytetu Medycznego;
ul. Szpitalna 27/33; 60-572 Poznań; tel. (061) 647 26 85; fax (061) 647 26 85; e-mail: patrycjapiatkowska@poczta.onet.pl
252
Gastroenterol. Pol., 2008, 15 (4), 251-254
Szachta P., Pazgrat M., Ignyś I. et al.
VRE – risk and perspectives
Rys historyczny
Enterococcus wankomycynooporny zidentyfikowany został
po raz pierwszy i opisany w 1978 roku. W Polsce pojawił się 10 lat
później. Zmutowane szczepy Enterococcus, charakteryzujące
się opornością na wankomycynę, są olbrzymim problemem w
szpitalach Europy i USA. Obok gronkowca złocistego, opornego
na metycylinę, tzw. MRSA (meticilin resistant Staphylococcus
aureus), enterokoki wankomycynooporne są obecnie jednym
z najpoważniejszych problemów klinicznych. Olbrzymie zagro-
żenie związane jest również z możliwością przeniesienia genu
oporności na wankomycynę na inne drobnoustroje. Szczególnie
niebezpieczny byłby transfer tej cechy na MRSA. Tak zmutowa-
ny patogen, niewrażliwy na oba stosowane antybiotyki, byłby
poważnym zagrożeniem dla hospitalizowanych pacjentów.
Przeniesienie cechy oporności jest uznawane obecnie za real-
ne ryzyko, zwłaszcza że gronkowiec oporny na wankomycynę
został już wyizolowany w 2002 roku (4).
Z tego powodu konieczne jest poszukiwanie nowych
profilaktycznych i terapeutycznych metod walki z opornymi
szczepami.
Antybiotykooporność VRE
W rozwoju zakażeń szpitalnych wywołanych przez rodzaj
Enterococcus dominującą rolę odgrywają czynniki inwazyjno-
ści tych drobnoustrojów. Mikroorganizmy te charakteryzuje
szeroka naturalna oporność na antybiotyki. Są one niewraż-
liwe między innymi na antybiotyki z grupy penicylin, cefalo-
sporyn i aminoglikozydów. Często obserwuje się oporność
na linkozamidy, makrolidy oraz fluorochinolony. Ze wzglę-
dów epidemiologicznych niezmiernie groźna jest ponadto
ich znaczna zdolność do wymiany fragmentów DNA kodują-
cych oporność na antybiotyki (5). Co za tym idzie, szczepy
te mogą z łatwością pozyskiwać i przekazywać oporność.
Uważa się, że wzrost uczestnictwa enterokoków w rozwoju
zakażeń szpitalnych spowodowany jest ich szeroką ekspozycją
na antybiotyki i szeroką opornością, zarówno wrodzoną, jak i
nabytą. Przykładowo, oporność na aminoglikozydy jest tylko
w niewielkim stopniu cechą wrodzoną, spowodowaną przede
wszystkim niewielką przepuszczalnością błon komórkowych.
Za niewrażliwość na tę grupę antybiotyków odpowiedzialny
jest jednak przede wszystkim transfer plazmidów, zawierają-
cych gen oporności na aminoglikozydy. Dochodzi również do
modyfikacji rybosomów na drodze enzymatycznej. Wynika z
tego, że wysoka oporność tych drobnoustrojów na antybiotyki
z grupy aminoglikozydów (High Level Aminoglicosides Resi-
stance – HLAR) jest cechą nabytą (6). Wzbudzająca największy
niepokój oporność na wankomycynę może być natomiast w
zależności od gatunku cechą wrodzoną lub nabytą. Wyróżniono
kilka fenotypów oporności na wankomycynę: vanA, vanB, vanC
oraz vanG. Oporność typu vanA obserwowana jest zarówno u
E. faecium, jak i E. faecalis, i polega na braku wrażliwości w sto-
sunku do wankomycyny i teikoplaniny, natomiast typu vanB tylko
w stosunku do wankomycyny. Typ vanC, wykryty u szczepów E.
gallinarum i E. casseliflavus, charakteryzuje się konstytutywną
opornością na wankomycynę, natomiast zjawisko to nie wystę-
puje w odniesieniu do teikoplaniny. Oporność vanD dotyczy
przede wszystkim rodzaju Staphylococcus (S. epidermidis i
S. heamolititicus) i polega na wrażliwości na wankomycynę i
jednoczesnej oporności na teikoplaninę (7). Takie gatunki, jak E.
gallinarum, E. flavescens i E. casseliflavus wykazują oporność
wrodzoną typu vanC. Gatunki te są zarazem oporne na teiko-
planinę. Najczęściej izolowane w warunkach szpitalnych szcze-
py E. faecium i E. faecalis charakteryzują się fenotypem oporno-
ści vanA (niewrażliwość na wankomycynę i teikoplaninę).
Czynniki inwazyjności
Cecha oporności na wankomycynę zlokalizowana jest
na transpozonie (genie skaczącym) Tn 1546 lub na plazmi-
dzie (8). Oporność nabyta jest indukowana w wyniku eks-
pozycji bakterii na antybiotyki glikopeptydowe (m.in. wan-
komycyna czy teikoplanina) oraz nieglikopeptydowe (9).
Rosnąca częstotliwość występowania VRE jest więc prze-
de wszystkim związana ze stosowaniem szerokowidmowej
antybiotykoterapii. Wykorzystywane antybiotyki, nieskuteczne
w odniesieniu do enterokoków, przyczyniają się do wzrostu
oporności na chemioterapeutyki. Z tego względu kontrola
podaży antybiotyków na oddziałach szpitalnych wydaje się być
priorytetem w ograniczaniu występowania VRE. Dotychczas
ciężkie zakażenia wywołane przez enterokoki oporne na peni-
cyliny leczone były z wykorzystaniem wankomycyny. Rosnąca
lekooporność wymusza konieczność poszukiwania nowych
metod walki z tymi drobnoustrojami.
Drobnoustroje z rodzaju Enterococcus dysponują ponadto
czynnikami inwazyjności, które ułatwiają im adhezję do komó-
rek, a co za tym idzie, umożliwiają kolonizację gospodarza.
Enterokoki zdolne są do syntezy enzymu hialuronidazy, umoż-
liwiającego rozkład mukopolisacharydów tkanki chrzęstnej i
kostnej. Uważa się, że enzym ten odgrywa znaczną rolę w
rozprzestrzenianiu się bakterii. Ponadto wytwarzane jest biał-
ko powierzchniowe Esp, zwiększające przyleganie bakterii do
nabłonka, białko Ace pośredniczące w przyleganiu i substancja
agregująca. Wymienione i pozostałe czynniki wirulencji ułatwiają
enterokokom kolonizację organizmu gospodarza (10, 11).
Ognisko epidemiczne VRE
Oprócz obniżonej wrażliwości na antybiotyki, rodzaj Ente-
rococcus charakteryzuje się również wysoką opornością na
niekorzystne cechy środowiska. Ekstremalne warunki tempera-
turowe czy niesprzyjająca wilgotność często nie są wystarcza-
jące do eliminacji opisywanych mikroorganizmów. Znacznym
utrudnieniem w ograniczaniu ekspansji VRE w warunkach szpi-
talnych jest również oporność na działanie środków dezynfek-
cyjnych. Usunięcie antybiotykoopornych mikroorganizmów ze
skolonizowanego środowiska szpitalnego jest więc niezwykle
trudne.
Ponadto wysokie ryzyko wiąże się ze wspomnianą wcześ-
niej możliwością transferu oporności. Jest to szczególnie niebez-
pieczne, zwłaszcza u pacjentów przewlekle hospitalizowanych,
z osłabionym układem immunologicznym, co zwiększa podat-
ność na kolonizację patogenami i rozwój zakażenia. Środowisko
szpitalne jest największym rezerwuarem szczepów zmutowa-
nych, o obniżonej oporności na stosowane powszechnie che-
mioterapeutyki. Transfer genów między szczepami szpitalnymi
wiąże się z niebezpieczeństwem powstawania drobnoustrojów
opornych na większość dostępnych antybiotyków, których
nie będzie można skutecznie wyeliminować. Opisane zostały
przypadki transferu informacji genetycznej pomiędzy różnymi
szczepami VRE, jej rekombinacji i powstawania nowych genoty-
pów (12). Znane są przypadki przeniesienia szczepu endemicz-
nego pomiędzy szpitalami. Dochodzić może również do przeka-
zania genu van na inny gatunek. Szczególne obawy wiążą się z
nabyciem oporności przez Staphylococcus aureus opornego na
Gastroenterol. Pol.,
253
2008, 15 (4), 251-254
Szachta P., Pazgrat M., Ignyś I. i wsp.
VRE – zagrożenia i perspektywy
metycylinę, będącego główną przyczyną zakażeń szpitalnych.
W 2002 roku w USA wykryto gronkowca z opornością na wan-
komycynę typu vanA (vancomycin resistant Staphylococcus
aureus – tzw. VRSA). Szczep ten wyizolowano z cewnika od
pacjenta cierpiącego na niewydolność nerek i cukrzycę. Od
tego samego pacjenta uzyskano szczep Enterococcus faecalis,
o identycznej sekwencji genu oporności na antybiotyk. Jest to
bezsprzecznym potwierdzeniem transferu DNA pomiędzy tymi
szczepami (13-15).
Gdy w środowisku danego szpitala wyizolowany zosta-
nie szczep VRE konieczne jest natychmiastowe opracowanie
ogniska epidemicznego. Głównymi drogami transferu opor-
nych bakterii jest personel medyczny (ręce), wspólny sprzęt
medyczny (np. aparaty do pomiarów) i środowisko sal, w któ-
rych przebywali nosiciele. Konieczne jest więc jak najszybsze
opracowanie wytycznych postępowania zarówno z nosicielem
VRE, jak i pacjentem nowo przyjętym do szpitala. Chory przyj-
mowany do ośrodka, w którym stwierdzono obecność VRE,
powinien zostać poddany badaniu mikrobiologicznemu w celu
potwierdzenia lub wykluczenia nosicielstwa VRE oraz izolacji
do momentu uzyskania wyniku posiewu. W przypadku wyniku
dodatniego, konieczne jest zachowanie ostrego reżimu sani-
tarnego i izolacja skolonizowanego pacjenta. Niezbędne jest
również odizolowanie chorych mających kontakt z nosicielem
(kohortacja). Pacjenci z dodatnim wynikiem posiewu powinni
pozostawać pod opieką wydzielonego personelu szpitalnego.
Konieczna jest dedykacja sprzętu medycznego oraz ograni-
czenie odwiedzin u skolonizowanych. Zalecanym sposobem
postępowania w opracowywaniu ogniska VRE jest ponadto
wszechstronna analiza epidemiologiczna, uwzględniająca typo-
wanie molekularne wyizolowanych szczepów.
Profilaktyka zakażeń VRE
Rosnący udział VRE w wywoływaniu infekcji szpitalnych
zmusza do poszukiwania nowych metod zwalczania tych
drobnoustrojów oraz opracowywania długofalowych metod
prewencji. Nie ulega wątpliwości, że rozprzestrzenianie się
tych patogenów spowodowane jest brakiem racjonalnej polityki
antybiotykoterapii. Konieczne jest również zwiększenie czę-
stotliwości badań mikrobiologicznych, umożliwiające szybkie
wykrycie wieloopornych mikroorganizmów. Najistotniejszym
zagadnieniem z punktu ograniczenia występowania VRE jest
znaczne zmniejszenie ekspozycji na wankomycynę. W celu
zredukowania oporności na ten antybiotyk Centrum Zwalczania
i ZapobieganiaChorób (Centers for Diesease Control and
Prevention – CDC) wystosowało wytyczne, dotyczące jego sto-
sowania tylko w określonych sytuacjach. Uznano, że wankomy-
cyna może być wykorzystana w przypadku ciężkich zakażeń,
wywołanych przez drobnoustroje Gram(+) oporne na antybio-
tyk ß-laktamowe; zakażeń wywołanych przez drobnoustroje
Gram(+) u pacjentów uczulonych na antybiotyki ß-laktamowe;
w przypadku zapalenia okrężnicy, gdy występują problemy ze
stosowaniem metronidazolu lub występuje poważne zagro-
żenie życia; w ramach profilaktyki chirurgicznej w przypadku
wszczepienia protez oraz w ośrodkach z wysoką częstością
występowania Gram(+) drobnoustrojów opornych na oxacilinę.
Dopuszczono również podawanie wankomycyny w przypadku
infekcji związanych z cewnikami żylnymi, uprzedniej profilaktyki
z użyciem fluorochinolonu oraz przy stwierdzeniu zakażenia
ogólnoustrojowego (16).
Metody walki z VRE
Mimo wprowadzenia zasad, mających na celu ograni-
czenie ekspozycji drobnoustrojów na wankomycynę, jest ona
nadal nadużywana i nieprawidłowo przepisywana w większości
szpitali (17, 18). Uważa się ponadto, ze opracowane kryteria są
zbyt mało szczegółowe dla ośrodków z wysoką częstotliwością
występowania wieloopornych bakterii Gram(+) (19).
Szeroka oporność Enterococcus w dużym stopniu ogra-
nicza możliwości terapeutyczne. W przypadku stwierdzenia
zakażenia wywołanego opisywanymi drobnoustrojami często
stosuje się ciprofloksacynę, która wykazuje względem ente-
rokoków działanie bakteriostatyczne. Coraz częściej dochodzi
jednak do pojawiania się oporności na ten antybiotyk (20).
Odporność na gentamycynę i streptograminę w wysokich stę-
żeniach ogranicza możliwość ich wykorzystania w przypadku
ciężkich zakażeń (21). Szczepy VRE pozostają nadal w większo-
ści przypadków wrażliwe na nitrofurantoninę, co ma jednakże
znaczenie tylko w przypadku zakażeń układu moczowego (22).
Wankomycyna w przypadku ciężkich zakażeń, których czynni-
kiem etiologicznym są bakterie z rodzaju Enterococcus, powin-
na być lekiem ostatniego rzutu, a jej wykorzystanie powinno
być dokładnie przeanalizowane. Duże nadzieje wiąże się ze
stosunkowo niedawno wprowadzonymi lekami: synercidem
(chinupristina i dalfopristina) i linezolidem, zarejestrowanymi
odpowiednio w 1999 i 2000 roku.
Linezolid należy do oksazolidynonów, aktywnych wzglę-
dem bakterii Gram(+). Jest to obecnie jedyny dopuszczo-
ny do obrotu antybiotyk z tej grupy leków. Lek ten wyka-
zuje aktywność zarówno względem VRE, jak i gronkow-
ców, również MRSA i o obniżonej wrażliwości na wanko-
mycynę. W stosunku do enterokoków wankomycynoopor-
nych jest on aktywny zarówno wobec E. faecium, jak i E.
faecalis. Antybiotyk działa także na E. avium, E. gallinarum,
E. casseliflavus czy E. raffinosus. Oszacowano że skuteczność
linezolidu w przypadku zakażeń wywołanych przez szczepy
VRE wynosi ok. 75-87% (23). Zalecany czas leczenia w celu
eliminacji enterokoków wankomycynoopornych wynosi 14-28
dni (24). Stosowanie linezolidu wiąże się jednak z możliwością
wystąpienia licznych działań niepożądanych, takich jak: wymio-
ty, mdłości, bóle głowy, biegunka, małopłytkowość (zwłaszcza
w przypadku przyjmowania leku dłużej niż 2 tygodnie) (25)
Mimo nadziei wiązanych z przedstawianym antybiotykiem, wyi-
zolowano już szczepy VRE oporne na jego działanie. Pojawiły
się również gronkowce niewrażliwe na linezolid (26).
Synercid należy do grupy streptogramin i składa się
z dwóch antybiotyków o działaniu synergistycznym: chinuprist-
iny i dalfopristiny. Oba antybiotyki streptograminowe działają
bakteriostatycznie, jednakże połączone w synercid wykazu-
ją działanie bakteriobójcze. Dzięki takiemu połączeniu anty-
biotyk jest skuteczny nawet wobec szczepów opornych na
jeden z jego elementów składowych (27). Synercid wykazuje
aktywność między innymi w stosunku do gronkowców, rów-
nież MRSA oraz względem E. faecium (także VRE). Sku-
teczność leku względem E. faecium wynosi około 65% (28).
E. faecalis jest niestety naturalnie oporny i nie wykazuje wrażli-
wości względem tego antybiotyku.
Dodatkową wadą tego antybiotyku jest znacznie większa,
w porównaniu z linezolidem, ilość działań niepożądanych.
W około 50% przypadków pojawia się odczyn miejscowy po
podaniu leku. U dużego odsetka pacjentów poddanych terapii
obserwuje się również hiperbilirubinemię, silne bóle mięśni i sta-
254
Gastroenterol. Pol., 2008, 15 (4), 251-254
Szachta P., Pazgrat M., Ignyś I. et al.
VRE – risk and perspectives
wów oraz niedokrwistość czy hiponatremię. Do mniej istotnych
klinicznie działań należą wymioty, biegunka czy bóle brzucha.
Synercid z racji swych właściwości biochemicznych może rów-
nież doprowadzić do zahamowania metabolizmu licznych leków
(np. cyklosporyny) (29). Wyizolowane zostały również szczepy
Enterococcus oporne na omawiany antybiotyk.
Podsumowanie
Stosowanie obu chemioterapeutyków, z którymi wiązano
nadzieje, ma więc znaczne ograniczenia w terapii VRE. Do głów-
nych wad należą przede wszystkim liczne działania niepożada-
ne oraz już istniejąca oporność szczepów VRE. W obliczu ciągle
malejącej wrażliwości, konieczne jest poszukiwanie nowych
terapeutyków, aktywnych względem enterokoków wankomycy-
noopornych i jednocześnie nieindukujących szybkiej oporności.
Należy również zwrócić uwagę na terapie alternatywne,
mogące odgrywać nie tylko rolę uzupełniającą w standardowej
terapii, ale również stanowić cenny środek profilaktyczny.
Obiecujące efekty dało zastosowanie terapii probiotycznej u
chorych skolonizowanych VRE. Badanie przeprowadzone w
2007 roku na oddziale nefrologicznym szpitala w Austin wyka-
zało, że podaż produktów probiotycznych może skutecznie
wyeliminować VRE z przewodu pokarmowego skolonizowanych
pacjentów (30). Uzyskane wyniki wskazują na konieczność dal-
szych badań nad możliwością wykorzystania szczepów probio-
tycznych w eliminacji enterokoków wankomycynoopornych. W
obliczu ciągle rosnącej lekooporności opisywanych szczepów,
poszukiwanie nowych metod terapii jest niezmiernie istotne.
Konieczne jest również opracowanie właściwych zasad postę-
powania w szpitalach i restrykcyjna kontrola podaży antybioty-
ków, zgodna z ustalonymi wytycznymi. Działania te są bowiem
niezbędne do obniżenia śmiertelności wśród pacjentów oraz
zmniejszenia kosztów opieki medycznej. Obecny stan wiedzy
wskazuje, że przytoczone standardy postępowania są główną
metodą przeciwdziałającą dalszemu pojawianiu się szczepów
wieloopornych.
Piśmiennictwo
1. Gordon S., Swenson J.M., Hill B.C., Pigott N.E., Facklam R.R., Cooksey RC,
Thornsberry C, Jarvis WR, Tenover FC: Antimicrobial susceptibility patterns of
common and unusual species of enterococci causing infections in the United
States. J. Clin. Microbiolol., 1992, 30, 2373-2378.
2. Moellering R.: The enterococcus – a versatile pathogen. J. Infect. Chemoter., 1997,
1, 1-4.
3. Jett B., Huycke M., Gilmore MS.: Virulence of enterococci. Clin. Microbiol. Rev.,
1994, 7, 462-478.
4. Centers for Disease Control and Prevention.: Staphylococcus aureus resistant to
vancomycin – United States 2002. MMWR Morb. Mortal. Wkly. Rep., 2002, 51,
565-567.
5. Mascini E.M., Bonten M.J.M.: Vancomycin – resistant enterococci: consequences
for theraphy and infection control. Clin. Microbiol. Infect., 2005, 11, 43-56.
6. Serafin I., Rokosz A., Sawicka-Grzelak A., Łuczak M.: Identyfikacja i lekowrazliwość
uropatogennych bakterii Gram(+). Przegl. Urolog. 2004, 5, 10-14.
7. Robak P., Robak T.: Zastosowanie antybiotyków glikopeptydowych u chorych z
gorączką neutropeniczną. Acta Haematol. Pol., 2006, 3, 317-328.
8. Severe infections in hospital: emerging pathogens – prevention and intervention.
Raport from a meeting of international experts in infectious diseases. San
Francisco, September 1999.
9. Cetinkaya Y., Falk P., Mayhall CG.: Vancomycin – resistant enterococci. Clin.
Microbiol. Rev., 2000, 13, 686-707.
10. Jett B., Huycke M., Gilmore M.: Virulence of enterococci. Clin. Microbiol.
Rev., 1994, 7, 462-478.
11. Shankar N.C. Lockatell V., Baghdayan A.S., Drachenberg C., Gilmore M.S., Johnson
D.E.: Role of Enterococcus faecalis surface protein Esp in the pathogenesis of
ascending urinary tract infection. Infect. Immun., 2001, 69, 4366-4372.
12. Barnaud G., Bingen E.: Genotypic characterisation of endemic VanA Enterococcus
faecium strains isolated in a paediatric hospital. J. Med. Microbiol., 2000, 49, 793-
799.
13. Mascini E., Bonten M.J.M.: Vancomycin – resistant enterococci: consequences fot
therapy and infection control. Clin. Microbiol. Infect., 2005, 11, 43-56.
14. Chang S., Sievert D.M., Hageman J.C., Boulton M.L., Tenover F.C., Downes F.P.,
Shah .S, Rudrik J.T., Pupp G.R., Brown W.J., Cardo D., Fridkin S.K: Infection with
vancomycin – resistant Staphylococcus aureus containing the vanA gene. N. Engl.
J. Med., 2003, 348, 1342-1347.
15. Nobel W.C., Virani Z., Cree R.G.: Co-transfer of vancomycin and other resistant
genes from Enterococcus Faecalis NCTC 12201 to Staphylococcus aureus. FEMS
Microbiol. Lett., 1992, 72, 195-198.
16. Centers for Disease Control and Prevention: Recommendations for preventing
spread of vancomycin resistance. Recommendations of the Hospital Infection
Control Practices Advisory Committee (HICPAC). MMWR Morb. Mortal. Wkly.
Rep., 1995, 44, 1-12.
17. Fridkin S.K.: Vancomycin-intermediate and resistant Staphylococcus aureus: What
the infectious disease specialist needs to know. Clin. Infect. Dis., 2002, 32, 108-
115.
18. Muto C.A., Jernigan J.A., Ostrowsky B.E., Richet H.M., Jarvis W.R., Boyce J.M.,
Farr B.M: SHEA Guideline for preventing nosocomial transmission of multidrug-
resistant strains of Staphylococcus aureus and Enterococcus. Infect. Control
Hosp. Epidemiol., 2003, 24, 362-386.
19. Junior M., Correa L., Marra A.R., Camargo L.F.A, Pereira C.A.P: Analysis of
vancomycin use and associated risk factors in a university teaching hospital: a
prospective cohort study. BMC Infect. Dis., 2007, 7, 88
20. Mehr S., Powell C.V.E., Curtis N.: Cephalosporin resistant urinary tract infections in
young children. J. Paediatr. Child Health, 2004, 40, 48-52.
21. Gordon S., Swenson J., Facklam R., Pigott N., Hill B., Cooksey R.: A multicenter
study of the epidemiology of enterococcal infections. Program Abstr. Intesci. Conf.
Antimicrob. Agents Chemoter., 1989, 29, 233.
22. Wilhelm M., Estes L.: Vancomycin. Mayo Clin. Proc., 1999, 74, 928-935.
23. Pharmacia and Upjohn Company: Linezolid for the treatment of vancomycin –
resistant enterococcal infections: a double – blind trial comparing 600 mg linezolid
every 12 hours with 200 mg linezolid every 12 hours. Data on file Kalamazoo,
1999.
24. Mądry K.: Nowe antybiotyki. Współcz. Onkol., 2004, 8, 52-57.
25. Bernstein W.: Mechanism for linezolid – induced anemia and thrombocytopenia.
Ann. Pharmacother., 2003, 37, 517-520.
26. Auckland C., Teare L., Cooke F., Kaufmann M.E., Warner M., Jones G., Bamford K.,
Ayles H. Johnson A.P.: Linezolid – resistant enterococci: report of the first isolates
in the UK. J. Antimicrob. Chemother., 2002, 50, 743-746.
27. Eliopoulos G.: Qinupristin – dafopristin and linezolid: evidence and opinion. Clin.
Infect. Dis., 2003, 36, 473-481.
28. Winston D.J., Emmanouilides C., Kroeber A., Hindler J., Bruckner D.A., Territo M.C.,
Busuttil R.W.: Quinupristin – dalfopristin therapy for infections due to vancomycin
– resistant Enterococcus faecium. Clin. Infect. Dis., 2000, 30, 790-797.
29. Launay O., Chemlal K., Andrieu V., Carbon C.: Severe reversible reticulocythopenic
anemia associated with quinupristin/ dalfopristin RP59500 therapy. Clin. Infect.
Dis., 1997, 25, 156.
30. Manley K.J., Fraenkel M., Mayall B.C. Power D.A.: Probiotic treatment of
vancomycin-resistant enterococci: a randomised controlled trial. Med. J. Aust.,
2007, 9, 454-457.
Received: 2008-05-02. Accepted: 2008-08-22.
Conflicts of interests: none declared