Wskazania do skierowania pacjenta (rodziny)
do Poradni Genetycznej
-‐ Każda choroba genetycznie uwarunkowana lub o podejrzewanej e9ologii genetycznej.
-‐
Choroba
o
niewyjaśnionej
e9ologii
powtarzająca
się
w
rodzinie
u
dwóch
lub
więcej
osób.
-‐
Wrodzona
wada
rozwojowa
lub
zespół
wad
(także
wówczas,
gdy
jest
to
pierwszy
przypadek
wady
rozwojowej
w
rodzinie).
-‐
Upośledzenie
umysłowe
lub
opóźnienie
rozwoju
psycho-‐motorycznego
(nawet
jeśli
jest
to
pierwszy
przypadek
w
rodzinie).
-‐
Zaburzenia
determinacji
i
różnicowania
płci
oraz
rozwoju
płciowego.
-‐
Osoby
w
wieku
rozrodczym,
narażone
na
działanie
szkodliwych
czynników
mutagennych.
Ciężarne
eksponowane
na
czynniki
teratogenne
(np.
infekcje
wirusowe,
niektóre
leki,
alkohol
i
inne).
-‐
Pary
małżeńskie
z
niepowodzeniami
rozrodu
(dwa
lub
więcej
poronienia
samoistne,
martwe
porody
lub
niepłodność
małżeńska).
-‐
Kobiety
powyżej
35
roku
życia,
planujące
potomstwo.
Model dziedziczenia autosomalnego
dominującego
Model dziedziczenia autosomalnego
recesywnego
Model dziedziczenia sprzężonego z chromosomem X
(cechy sprzężone recesywnie)
Model dziedziczenia sprzężonego z chromosomem X
(cechy sprzężone dominująco)
Model dziedziczenia mitochondrialnego
Metody diagnostyki prenatalnej
Metody nieinwazyjne:
-‐
ultrasonografia
-‐
oznaczanie
specyficznych
substancji
pochodzenia
płodowego
obecnych
w
surowicy
krwi
matki
-‐
badanie
komórek
i
DNA
pochodzenia
płodowego
obecnych
w
krążeniu
matczynym
Metody inwazyjne:
-‐ amniocenteza
-‐
biopsja
kosmówki
-‐
kordocenteza
Cele diagnostyki prenatalnej
q
ocena stanu płodu
q
w ciążach podwyższonego ryzyka wykluczenie wady rozwojowej i/lub
choroby uwarunkowanej genetycznie
q
wykrycie wady rozwojowej i/lub choroby uwarunkowanej genetycznie
w przypadku których interwencja lekarska w okresie życia wewnątrzmacicznego
stwarza
szanse
uratowania
dziecka
lub
zmniejsza
ryzyko
powikłań
okresu
okołoporodowego
q
wykrycie u płodu wad wrodzonych, w przypadku których istnieje szansa uratowania
dziecka
pod
warunkiem
interwencji
lekarskiej
bezpośrednio
po
urodzeniu
q
wykrycie wad letalnych
Metody nieinwazyjne
Ultrasonografia
Zaleca
się
przynajmniej
3-‐krotne
wykonanie
w
czasie
trwania
ciąży:
•
11 – 14 tydzień
•
ok. 20 tygodnia
•
ok. 30 tygodnia
Cele:
•
potwierdzenie wieku ciążowego
•
ocena żywotności płodu
•
ocena ilości płodów
•
diagnostyka wad płodu
•
ocena przezierności fałdu karkowego (11-‐14 tydzień ciąży)
Przezierność karkowa (NT
-‐
nuchal translucency)
rośnie wraz z wiekiem ciążowym
a tym samym długością ciemieniowo-‐siedzeniową
(CRL-‐ crown-‐rump lenght)
Normy:
CRL
=
45
mm
(11
Hbd);
mediana
wynosi
1.2
mm
CRL
=
84
mm
(13+6
Hbd);
mediana
wynosi
1.9
mm
Ryzyko indywidualne obliczamy mnożąc wartość ryzyka wstępnego dla
danej pacjentki (wynikającego z jej wieku oraz wieku ciążowego) przez
różnicę między wartością NT zmierzoną a medianą dla danego CRL
Badanie NT
pozwala zidentyfikować około 72% płodów z zespołem Downa
(odsetek wyników fałszywie dodatnich 5%)
NT
=
3
mm
-‐
ryzyko
trisomii
podwyższone
ponad
ryzyko
wynikające
z
wieku
matki
3
razy
NT
=
4
mm
-‐
ryzyko
trisomii
podwyższone
ponad
ryzyko
wynikające
z
wieku
matki
18
razy
NT
=
5
mm
-‐
ryzyko
trisomii
podwyższone
ponad
ryzyko
wynikające
z
wieku
matki
28
razy
NT
>
5
mm
-‐
ryzyko
trisomii
podwyższone
ponad
ryzyko
wynikające
z
wieku
matki
36
razy
Inne przyczyny zwiększenia grubości fałdu karkowego:
q
niewydolność płodowego układu krążenia związana z wadą serca i/lub dużych
naczyń
q
zastój krwi żylnej spowodowany uciskiem
q
nieprawidłowy lub opóźniony rozwój układu limfatycznego
q
niedokrwistość płodowa
q
hipoproteinemia
q
infekcje płodu powodujące niedokrwistość lub niewydolność krążenia
Brak lub niedorozwój kości nosowej u płodu
jako marker aberracji chromosomowych
Brak kości nosowej stwierdza się:
q
u 67% płodów z trisomią 21
q
u 55% płodów z trisomią 18
q
u 34% płodów z trisomią 13
q
u 11% płodów z monosomią X (zespół Turnera)
q
u 7% płodów z triploidią
Wady wrodzone a aberracje chromosomowe
Wskazania do wykonania inwazyjnej diagnostyki prenatalnej z
oceną kariotypu płodu:
q
zesp. Dandy-‐Walkera (1/1000) – występuje w ok.50 zespołach
genetycznych
(40%
aberracje
chromosomowe)
q
cys9c hygroma (torbielowate struktury w okolicy potyliczno-‐
szyjnej)
–
75%
aberracje
chromosomowe
(gł.zespół
Turnera)
q
brak ciała modzelowatego (1/1000) -‐ wystepuje w ok.100
zespołach
genetycznych
,
w
tym
trisomii
13
i
18
q
małogłowie (1/1000) – 15% aberracje chromosomowe (trisomia 13,
delecja
4p
i
5p)
q
przepuklina przeponowa (1/3000) – 20% aberracje chromosomowe
q
przepuklina sznura pępowinowego (1/3000) -‐ 60% aberracje
chromosomowe
Wady wrodzone a aberracje chromosomowe
Wskazania do wykonania inwazyjnej diagnostyki prenatalnej z
oceną kariotypu płodu:
q
wady serca (5-‐10/1000) -‐ 5% aberracje chromosomowe
q
zarośnięcie przełyku (1/3000) -‐ 4% aberracje chromosomowe
q
hipotrofia płodu -‐ 1% aberracje chromosomowe (trisomia 21,
triploidia)
q
wodonercze -‐ 3% aberracje chromosomowe
Ryzyko aberracji chromosomowych wzrasta wraz z ilością wad
wrodzonych
Badania przesiewowe surowicy krwi matki
I trymestr ciąży:
Badania przesiewowe w 1. trymestrze (test PAPP-‐A):
1.
Wolna
podjednostka
beta-‐hCG
2.
PAPP-‐A
Test
PAPP-‐A
wraz
z
pomiarem
NT
(wykonywane
między
11
a
14
tygodniem
ciąży):
-‐
dla
trisomii
21
(tzn.
zespołu
Downa)
–
wykrywalność
wynosi
86,3%,
przy
odsetku
wyników
fałszywie
dodatnich
równym
5%
-‐
dla
wszystkich
aberracji
chromosomowych
wykrywalność
sięga
90%,
przy
6%
wyników
fałszywie
dodatnich
Polegają
na
oznaczeniu
markerów
biochemicznych
w
surowicy
krwi
kobiet
ciężarnych:
-‐
Alfa-‐fetoproteina
(AFP)
-‐
Podjednostka
beta
ludzkiej
gonadotropiny
kosmówkowej
(beta-‐hCG)
-‐
Nieskoniugowany
estriol
(uE3)
-‐
PAPP-‐A
-‐
Inhibina
A
II trymestr ciąży:
Test
potrójny
(wykonywany
między
15
a
19
tygodniem
ciąży):
Test
potrójny
-‐
polega
na
określeniu
stężeń
podjednostki
beta-‐hCG,
alfa-‐fetoproteiny
(AFP)
i
nieskoniugowanego
estriolu
(uE3).
Wykrywa
ono
50-‐75%
ciąż
z
trisomią
21
(zespołem
Downa),
a
fałszywie
dodatnie
wyniki
otrzymuje
się
w
5%
przypadków.
Przy
uwzględnieniu
NT,
wykrywalność
sięga
85-‐90%
przy
odsetku
wyników
fałszywie
dodatnich
wynoszącym
5%.
Patologie
ciąży,
w
jakich
obserwuje
się
wzrost
lub
spadek
stężeń
markerów
biochemicznych,
badanych
testem
potrójnym.
q
podjednostka beta-‐hCG – wyższe stężenie w ciąży z trisomią 21, zaśniadzie
groniastym,
ciąży
mnogiej;
-‐
niższe
stężenie
w
ciąży
z
trisomią
18,
ciąży
obumarłej
q
nieskoniugowany estriol (uE3) – niższe stężenie w ciąży z trisomią 21,
bezmózgowiem, aplazją lub hipoplazją nadnerczy
Badania przesiewowe surowicy krwi matki
q
AFP
Patologia
płodu,
w
której
podwyższone
jest
stężenie
AFP
w
surowicy:
1)
otwarte
wady
cewy
nerwowej
2)
ubytki
ściany
brzucha
3)
cys$c
hygroma
4)
atrezja
przewodu
pokarmowego
5)
niektóre
wady
układu
pokarmowego
6)
choroby
skóry
(epidermolysis
bullosa
simplex,
aplasia
cu$s
congenita)
Inne
przyczyny
matczyno-‐płodowe
wzrostu
AFP
w
surowicy:
-‐
ciąża
mnoga,
ciąża
obumarła,
wady
łożyska
lub
pępowiny,
immunizacja
Rh
Choroby
matki,
w
których
podwyższone
jest
stężenie
AFP:
-‐
guzy
wątroby,
ostre
zapalenie
wątroby
Badania przesiewowe surowicy krwi matki
Komórki i DNA pochodzenia płodowego we krwi kobiety ciężarnej
q
We krwi ciężarnych krąży pewna ilość komórek płodowych (komórki trofoblastu,
pierwotne
erytrocyty
jądrzaste,
granulocyty)
dostępnych
badaniu.
Ograniczeniami
metody
są
jednak
mała
ilość
komórek
pochodzenia
płodowego
we
krwi
ciężarnej
oraz
trudności
w
odróżnieniu
komórek
matczynych
od
komórek
płodowych.
q
Odsetek komórek pochodzenia płodowego w pobranej próbce krwi kobiety ciężarnej
może
zostać
zwiększony
poprzez
zastosowanie
metod
automatycznego
sortowania
komórek:
MACS
(magne$c
cell
sor$ng)
lub
FACS
(fluorescence
ac$vated
cell
sor$ng).
Na
uzyskanych
komórkach
można
następnie
przeprowadzać
badania
cytogenetyczne
techniką
FISH.
Czułość
metody
podobna
jest
do
czułości
biochemicznych
testów
przesiewowych.
q
We krwi kobiet ciężarnych występują także niewielkie ilości wolnego DNA pochodzenia
płodowego, który może być wykorzystany do badań genetycznych techniką PCR.
Badania przesiewowe surowicy krwi matki
METODY INWAZYJNE
Amniopunkcja (amniocenteza)
-‐ wykonywana jest między 15-‐18 tygodniem ciąży
-‐
pobranie
15-‐20
ml
płynu
owodniowego
-‐
ryzyko
utraty
ciąży
(poronienia)
w
związku
z
badaniem
wynosi
0,5-‐1%
Amniocenteza
jest
możliwa
do
wykonania
także
między
10
a
14
tygodniem
ciąży
(amniocenteza
wczesna),
ale
wówczas
ryzyko
poronienia
wzrasta
do
2%,
a
ryzyko
wystąpienia
wad
kończyn
(m.
in.
stóp
końsko-‐szpotawych
u
płodu)
jest
wysokie.
METODY INWAZYJNE
Amniopunkcja (amniocenteza)
Wskazania:
1)
Podwyższone
ryzyko
urodzenia
dziecka
z
aberracją
chromosomową:
-‐
wiek
ciężarnej
powyżej
35
lat
-‐
urodzenie
dziecka
z
aberracją
chromosomową
z
poprzedniej
ciąży
-‐
nosicielstwo
translokacji
lub
innej
aberracji
chromosomowej
u
jednego
z
rodziców
-‐
stwierdzenie
w
USG
patologii
płodu
sugerującej
występowanie
aberracji
chromosomowej
-‐
nieprawidłowy
wynik
testów
biochemicznych
(test
PAPP-‐A,
test
potrójny)
–
ryzyko
aberracji
u
płodu
>1:200
2) Urodzenie dziecka z wadą cewy nerwowej z poprzedniej ciąży
METODY INWAZYJNE
Biopsja kosmówki
-‐ wykonywana jest między 10-‐14 tygodniem ciąży
-‐
pobranie
5-‐10
g
tkanki
-‐
oczekiwanie
na
wynik
1-‐3
tygodnie
-‐
ryzyko
poronienia
około
2
%
Stwierdzono
związek
między
biopsją
kosmówki
wykonywaną
przed
10
tygodniem
ciąży,
a
występowaniem
wad
ubytkowych
kończyn
płodu
oraz
niedorozwojem
żuchwy i języka.
METODY INWAZYJNE
Biopsja kosmówki
Wskazania:
-‐
podobne
jak
w
przypadku
amniocentezy
z
wyjątkiem
podwyższonego
ryzyka
urodzenia
dziecka
z
wadą
cewy
nerwowej
-‐
CVS
jest
metodą
z
wyboru
w
przypadku
molekularnej
diagnostyki
prenatalnej
chorób
monogenowych
Kordocenteza
-‐
wykonywana
od
17
tygodnia
ciąży
do
momentu
porodu
-‐
pobranie
0,5-‐1,0
ml
krwi
płodu
z
żyły
pępowinowej
-‐
ryzyko
poronienia
ok.
1,0-‐1,5%
-‐
istnieje
ryzyko
zanieczyszczenia
krwią
matki
i
otrzymania
błędnego
wyniku
kariotypu
płodu
METODY INWAZYJNE
Kordocenteza
Wskazania:
-‐
wykrycie
w
USG
po
18.
tygodniu
ciąży
wad
sugerujących
możliwość
aberracji
chromosomowych
u
płodu
-‐
uzyskanie
materiału
do
badań
cytogenetycznych
(np.
weryfikacja
mozaikowatości)
lub
badań
molekularnych
-‐
diagnostyka
i
leczenie
konfliktu
serologicznego,
ocena
morfologii
krwi
płodu
-‐
diagnostyka
prenatalna
genetycznie
uwarunkowanych
chorób
krwi
METODY INWAZYJNE
Nowoczesne metody badań cytogenetycznych
w diagnostyce prenatalnej
FISH (fluorescencyjne hybrydyzacja in situ):
·∙
stosowana
od
lat
80-‐tych
XX
wieku
·∙
obok
analizy
chromosomów
umożliwia
także
badanie
jąder
w
stadium
interfazy
·∙
zastosowanie
sond
specyficznych
dla
chromosomów
pary
13,
18,
21,
X
i
Y
umożliwia
szybką
diagnostykę
najczęściej
występujących
aneuploidii
chromosomowych
·∙
wymaga
pozyskania
niewielkiej
ilości
amniocytów
bądź
komórek
kosmówki
·∙
wyniki
badania
uzyskuje
się
w
przeciągu
24
godzin
Nowoczesne metody badań cytogenetycznych
w diagnostyce prenatalnej
Array-‐CGH
(porównawcza
hybrydyzacja
genomowa
z
wykorzystaniem
mikromacierzy):
·∙
DNA pacjenta (wyizolowany z amniocytów płynu owodniowego) i DNA
referencyjny (kontrolny) wyznakowane na różne kolory są hybrydyzowane
do
płytek
mikromacierzy
zawierających
fragmenty
genomowego
DNA
·∙
umożliwia
detekcję
niewielkich
zmian
ilościowych
(duplikacje,
delecje)
w
obrębie
chromosomów
pacjenta
·∙ wysoka rozdzielczość (1 mln -‐ 500 tys. par zasad)
Nowoczesne metody badań cytogenetycznych
w diagnostyce prenatalnej
QF-‐PCR
(ilościowy,
fluorescencyjny
PCR):
·∙
fragmenty DNA (powtórzenia mikrosatelitarne) podlegają amplifikacji, znakowaniu
fluorescencyjnemu a ilość kopii mierzona jest podczas rozdziału elektroforetycznego
·∙
umożliwia
szybką
detekcję
aneuploidii
chromosomowych
z
wykorzystaniem
DNA
wyizolowanego
z
amniocytów
lub
komórek
kosmówki
·∙
technika
umożliwia
również
identyfikację
przypadków
disomii
jednorodzicielskiej
(UPD)
Nowoczesne metody badań cytogenetycznych
w diagnostyce prenatalnej
MLPA (ang. Mul$plex Liga$on-‐dependent Probe Amplifica$on )
-‐ metoda oparta o reakcję ligacji odpowiednich sond połączoną z reakcją amplifikacji.
-‐
polega
na
amplifikacji
nie
łańcucha
DNA,
lecz
sondy
dodawanej
do
badanej
próbki.
Pojedyncza
sonda
zawiera
dwa
różne
oligonukleotydy,
z
których
każdy
wiąże
się
ze
starterem
PCR.
Każda
z
sond
wiąże
się
specyficznie
z
wybranym
miejscem
sekwencji
Liczba
otrzymanych
w
wyniku
reakcji
PCR
sond
zależy
od
liczby
odpowiadających
sekwencji
w
badanym
DNA.
-‐
równoczesna
ocena
ilościowa
obecności
ilości
kopii
wieloeksonowych
genów.
Na
podstawie
zmian
stosunków
ilościowych
poszczególnych
fragmentów
można
wnioskować
o
delecjach
bądź
duplikacjach
odpowiednich
odcinków
genów.