1. Hodowle komórek roślinnych
2. Plant cell culture
3. WNB, Ogród Botaniczny  Pracownia Kultur Tkankowych
4.
5. fakultatywny
6. Mikrobiologia
7. Poziom studiów: I
8. Rok studiów: II
9. Semestr: letni
10. wykład z prezentacją multimedialną oraz demonstracją filmową -15 godz., Zajęcia w
laboratorium, praca w warunkach aseptycznych, techniki rozmnażania roślin, sposoby
eliminacji wirusów, transformacji komórek, aklimatyzacji mikrosadzonek ex vitro - 30
godz.
11. Prof. dr hab. Krystyna Kromer
12. Wymagania wstępne:
podstawowa wiedza z zakresu biologii, morfologii, fizjologii i biochemii roślin
13. Cele przedmiotu: Celem przedmiotu jest przekazanie wiedzy z zakresu nowoczesnych metod,
zasad i zastosowań hodowli komórek i tkanek roślinnych.
14. Zakładane efekty kształcenia: Student
potrafi opisać mechanizmy i sygnały warunkujące rozmnażanie K_W01, K_W18
komórek roślinnych in vitro. Zna techniki zakładania i prowadzenia
hodowli. Potrafi zaplanować badania z wykorzystaniem tych hodowli
oraz ma wiedzę z zakresu biologii i chemii niezbędną dla
zrozumienia podstawowych zjawisk i procesów zachodzących w
przyrodzie ożywionej i nieożywionej.
rozumie znaczenie kultury in vitro w podwyższaniu statusu K_W02
zdrowotnego roślin uprawnych i potrafi określić interakcje rośliny z
różnymi mikroorganizmami, wskazuje powiązania problemów
mikrobiologii z innymi dyscyplinami przyrodniczymi oraz sektorami
działalności społeczno-gospodarczej.
rozumie procesy transformacji roślin przy pomocy określonych K_W08
mikroorganizmów oraz tłumaczy podłoże i mechanizmy zmienności
genetycznej wszystkich grup organizmów.
przeprowadza obserwacje, pomiary fizyko-chemiczne i biologiczne w K_U14
warunkach terenowych i laboratoryjnych,
korzysta z różnych z
ródeł informacji, także elektronicznych, które K_U19
opracowuje pisemnie i prezentuje ustnie,
docenia rolę mikrobiologii w ochronie środowiska i zdrowia, K_K02
jest zdolny do krytycznej oceny wyników badań laboratoryjnych i K_K03
terenowych,
jest odpowiedzialny za sprzęt, aparaturę, pracę własną i innych, K_K04
potrafi inspirować, organizować działalność i prezentować racje K_K08
innych osób.
15. Treści programowe:
Osiągnięcia w hodowli komórek, tkanek i organów roślinnych. Przebieg różnicowania embrionów
somatycznych, pąków, korzeni i kalusa. Metody klonowania komórek. Otrzymywanie roślin
haploidalnych i wykorzystania linii podwojonych haploidów. Fuzja protoplastów i tworzenia
mieszańców somatycznych - hybrydów i cybrydów. Transformacja komórek roślinnych. Zmienność
somaklonalna i inne aplikacyjne zastosowania tej techniki. Biosynteza metabolitów wtórnych i
kultury roślinne w bioreaktorach, produkcja białek, przeciwciał i antygenów.
Technologia rozmnażania klonalnego:
-inicjacja kultury, eksplantaty pierwotne i drobnoustroje endogenne (patogeny, saprofity,
symbionty). Wykrywanie i eliminowanie drobnoustrojów bezobjawowo zasiedlających eksplantaty.
Terapia antybiotykowa in vtro, naturalne substancje antybakteryjne i przeciwgrzybicze.
-mikrorozmnażanie z wykorzystaniem różnych procesów rozwojowych, czynniki i sygnały
umożliwiające rozmnażanie komórek, tkanek i organów. Monitoring mikrobiologiczny podczas
namnażania.
-Ukorzenianie, elongacja pędów i przygotowanie do ukorzeniania
-Aklimatyzacja, stan fizjologiczny roślin, aktywność fotosyntetyczna i bilans wodny. Biotyzacja
(bakteryzacja i mikoryzacja), kultury w stadium aklimatyzacji, indukowanie molekularnych
mechanizmów odporności jako sposobu zabezpieczenia przed stresem środowiskowym. Rola
szczepionek glebowych w precyzyjnej gospodarce agrarnej.
Typy mikoryzy i sposoby jej inicjowania w kulturze in vitro. Infekcje bakteriami Rhizobium
roślin motylkowych. Zachowanie i właściwości patogennych bakterii kulturze.
Zastosowanie korzystnych bakterii i istotność związków ilościowych między liczbą
komórek bakteryjnych i komórek gospodarza. Zróżnicowany wpływ bakterii na wzrost
kultury zależny od gatunku. Znaczenie kultury in vtro w hodowli oraz w poszukiwaniu
nowych genotypów roślin uprawnych odpornych na choroby. Metody uwalniania roślin od
wirusów.
16. Zalecana literatura: (wybrane rozdziały)
 Hodowla komórek i tkanek roślinnych M. Zenkteler, PWN 1984
 Biotechnologia roślin Red. S. Malepszy, PWN, 2005 i 2010
 Podstawy fizjologii roślin J. Kopcewicz i S. Lewak, PWN, 2004
17. Forma zaliczenia:
wykład: na zaliczenie, ocena z wykładów na podstawie przygotowanego projektu (K_W02;
K_W08) i przedstawienia analizy wyników doświadczeń prowadzonych na ćwiczeniach.
Efekty kształcenia sprawdzane tą metodą to K_W01; K_W18; K_U14; K_U19; K_K03;
K_K08.
laboratorium: zaliczenie na podstawie średniej oceny uzyskanej z pisemnych opisowych
kolokwiów (4), dotyczących poszczególnych ćwiczeń (K_W01; K_W02; K_W18) oraz
oceny umiejętności pracy w warunkach septycznych (K_U14; K_U19; K_K03; K_K04;
K_K08) i aktywności na zajęciach (K_U14; K_K03; K_K04; K_K08).
18. Język wykładowy polski
19. Obciążenie pracą studenta
Forma aktywności studenta Średnia liczba godzin na
zrealizowanie aktywności
Godziny zajęć z nauczycielem:
- wykład: 15
- laboratorium: 30
- konsultacje: 5
Praca własna studenta,
- przygotowanie do zajęć: 15
- opracowywanie wyników: 10
- przygotowanie do testu końcowego: 10
Suma godzin 85
Liczba punktów ECTS 3