Mikrobiologiczne przemiany bezazotowej materii organicznej i związków organicznych.
Skrobia
Skrobia jest głównym materiałem zapasowym roślin. Zwykle występuje
w postaci kulistych, soczewkowatych lub jajowatych granul o wyraźnie
warstwowej budowie. Skrobia roślinna składa się z glukanów — amylozy
(15 do 27%) oraz amylopektyny. Amyloza jest rozpuszczalna bez
pęcznienienia w gorącej wodzie i jest odpowiedzialna za typowe niebieskie
zabarwienie w reakcji z jodyną. Zbudowana jest z helikalnie ułożonych,
nierozgałęzionych łańcuchów reszt D-glukozy połączonych 1,4-α-glikozydowo.
W jednym łańcuchu występuje 200-500 jednostek. Amylopektyna
pęcznieje w wodzie, a przy podgrzewaniu tworzy klej skrobiowy. W reakcji
z jodyną daje zabarwienie od purpurowego do brązowego. Również jest
poli-l,4-α-D-glukozą, lecz, tak jak glikogen, ma rozgałęzienia w pozycjach
1,6 przy mniej więcej co 25 reszcie glukozy. Oprócz tego zawiera reszty
fosforanowe, jak również jony wapnia i magnezu. Skrobia z różnych źródeł różni się rodzajem rozgałęzień, liczbą jednostek w łańcuchu oraz
właściwościami.
Skrobię można przeprowadzić do glukozy w drodze kwaśnej hydrolizy
lub enzymatycznie. Występują trzy rodzaje enzymatycznej degradacji
glukanów: 1) fosforoliza, 2) hydroliza, 3) transglikozylacja.
Fosforoliza. Przekształcenie skrobi, glikogenu i podobnych wielocukrów
do glukozo-1-fosforanu jest katalizowane przez α-l,4-glukanofosforylazę
(fosforylazy). Chociaż reakcja jest odwracalna, przebiega ona wewnątrzkomórkowo
jedynie w katabolizmie wielocukrów i nie ma znaczenia dla
syntez. Fosforylacja rozpoczyna się od wolnego nieredukującego końca
łańcucha amylozy, z uwolnieniem kolejnych reszt glukozo-1-fosforanu.
W przypadku amylopektyny fosforoliza zatrzymuje się przy rozgałęzieniach
w pozycji 1,6 i postępuje dalej dopiero po rozszczepieniu tych
ostatnich przez amylo-l,6,-glukozydazę. Fosforylazy odgrywają ważną rolę
w aktywowaniu i wykorzystywaniu wewnątrzkomórkowych wielocukrów
zapasowych (glukanów).
Hydroliza. Wielocukry wewnątrz komórki są rozszczepianie hydrolitycznie
przez amylazy. α-Amylaza występuje u roślin, zwierząt i drobnoustrojów.
Szybko upłynnia ona skrobię, równocześnie atakując wiele wiązań
1,4-glikozydowych, łącznie z wiązaniami w środku łańcucha (jest zatem
nazywana również endoamylazą). Uwalnia ona maltozę, glukozę oraz
oligomery zawierajÄ…ce od 3 do 7 reszt glukozy. Z powodu szybkiej
degradacji struktury makrocząsteczkowej lepkość roztworu oraz jego
zdolność wchodzenia w reakcję z jodyną również szybko maleją,
z równoczesnym stopniowym pojawieniem się cukrów ulegających
fermentacji (glukoza, maltoza, maltotrioza). W obecności enzymów
odcinających rozgałęzienia, jak pullulanaza lub izoamylaza, zachodzi
również degradacja dekstryn
β-amylazy występują przede wszystkim w roślinach (np. w jęczmieniu, pszenicy), lecz
również w bakteriach. W przeciwieństwie do α-amylazy, przejawiają aktywność od wolnych
nieredukujących końców makrocząsteczki. Ich działanie na skrobię prowadzi do szybkiej
akumulacji cukrów z zachowaniem zdolności reagowania z jodem. Hydroliza zatrzymuje się
w miejscach rozgałęzień, a pozostające reszty noszą nazwę granicznej β-dekstryny. Gdy
miejsca rozgałęzień ulegną enzymatycznemu rozszczepieniu, następuje całkowite przekształcenie
substratu do maltozy, która z kolei na zewnątrz komórki może być rozkładana przez
maltazę. W obecności odpowiednich permeaz maltoza i inne oligomery są transportowane
do wnętrza komórki i tam rozszczepiane fosforolitycznie.
Transglikozylacja. Schardinger odkrył w podłożach zawierających skrobię,
w których hodowano Bacillus macerans, pewne związki o charakterze
krystalicznym. Składają się one z pierścieniowo zamkniętych łańcuchów
reszt glukozy połączonych wiązaniami α-l,4-glikozydowymi. Pierścienie
tych α-, β- lub y-cyklodekstryn składają się z sześciu, siedmiu lub ośmiu
reszt glukozy i powstają ze skrobi w wyniku działania transglikozylaz.
Zarówno grzyby, jak i bakterie wytwarzają α-amylazy. Zdolność
rozkładania skrobi przez zewnątrzkomórkowe enzymy amylolityczne jest
wśród drobnoustrojów szeroko rozpowszechniona; trudno mówić o mikroflorze
swoiście degradującej skrobię. Wiele grzybów glebowych wytwarza duże ilości amylaz, a preparaty tych enzymów są produkowane na skalę
przemysłową z wykorzystaniem Aspergillus oryzae, A. niger i A. wentii.
Na przykład, Taka-amylaza i Taka-diastaza to przemysłowe, nie oczyszczone
preparaty otrzymywane z hodowli A. oryzae, które hydrolizują
skrobię do glukozy. Wśród bakterii do aktywnych producentów a-amylaz
można zaliczyć niektóre gatunki z rodzaju Bacillus {Bacillus macerans,
B. polymyxa, B. subtilis), kilku przedstawicieli rodzaju Pseudomonas oraz
niektóre promieniowce. Enzymy wytwarzane przez B. stearothermophilus
i B. licheniformis można przez krótki czas ogrzewać w 100°C bez utraty
przez nie aktywności. Niektóre termofilne gatunki Clostridium, jak
Clostridium thermosulfurogenes i C. thermohydrosulfuricum, również
wydzielają ciepłostałe α-amylazy i pullulanazy. Ponieważ drożdże produkujące
alkohol nie wydzielają α-amylaz, skrobia rozkładana jest do cukru
przez dodatek amylaz zawartych w słodzie lub uzyskanych z Aspergillus
oryzae.
W warunkach beztlenowych, w glebach nasyconych wodą i świeżo
wzbogaconych węglowodanami, skrobia jest rozkładana przede wszystkim
przez sacharolityczne bakterie z rodzaju Clostridium. Ponieważ bakterie
te wiążą azot cząsteczkowy, beztlenowy rozkład bogatego w wielocukry
materiału roślinnego może prowadzić w glebie do nagromadzenia dużych
ilości azotu.
Celuloza
Celuloza stanowi podstawowy składnik materiału roślinnego i powstaje
w większych ilościach niż jakakolwiek inna substancja. Mniej więcej
połowa biomasy powstającej w fotosyntezie to celuloza. Resztki roślinne
w glebie składają się (przeciętnie) w 45% do 90% (bawełna) z celulozy,
która ma zatem — obok dwutlenku węgla — ważne znaczenie w obiegu
węgla.
Celuloza składa się z łańcuchów utworzonych z jednostek β-D-glukopiranozy połączonych
wiÄ…zaniem 1,4-glikozydowym. Liczba reszt glukozy tworzÄ…cych jednÄ… czÄ…steczkÄ™ celulozy
waha się od 3 500 u bakterii Acetobacter xylinum, 14 000 u roślin, do 25000 u zielenicy
Valonia. PodstawowÄ… jednostkÄ… tworzÄ…cÄ… celulozÄ™ nie jest jednak glukoza, lecz disacharyd
celobioza. Celuloza ma charakter częściowo krystaliczny, to jest strefy krystaliczne przeplatają
siÄ™ w niej ze strefami amorficznymi. Strefy krystaliczne wykazujÄ… zdecydowany pleomorfizm;
celuloza I (naturalna celuloza) i celuloza II (bawełna merceryzowana) różnią się ułożeniem
łańcuchów glukozy w sieci krystalicznej. Duża wytrzymałość mechaniczna oraz nierozpuszczalność
celulozy wynikają, na poziomie molekularnym, z obecności między- i wewnątrzcząsteczkowych
mostków wodorowych. Te pierwsze łączą ze sobą pojedyncze łańcuchy.
Pojedyncze łańcuchy są stabilizowane przez wewnątrzcząsteczkowe mostki wodorowe (dwa
na każdą resztę glukozy). W ten sposób powstaje dwuwymiarowa sieć mostków. Silne
związki między poszczególnymi poziomami sieci wynikają z sił Van der Waalsa (celuloza
I) lub z mostków wodorowych (celuloza II), co prowadzi do powstania sieci trójwymiarowej.
Enzymatyczne rozszczepienie celulozy jest katalizowane przez celulazÄ™.
Badania przeprowadzone na grzybach wykazały, że system celulazy
składa się z co najmniej trzech enzymów. 1. Endo-β-1,4-glukanazy
atakują wiązania β-1,4 wewnątrz cząsteczki, wytwarzając długie łańcuchy
o wolnych końcach. 2. Egzo-β-l,4-glukanazy odcinają disacharyd celobiozę
od końców łańcuchów celulozy. 3. β-glukozydazy hydrolizują celobiozę
do glukozy.
Regulacja syntezy celulozy zachodzi albo przez katabolicznÄ… represjÄ™, albo
w drodze indukcji substratowej przez celobiozę, kiedy w sposób konstytutywny
wytwarzana jest celulaza. Stężenia celobiozy powodujące indukcję lub
represję różnią się u poszczególnych organizmów. Najogólniej, małe
stężenia celobiozy mają aktywność indukującą, a duże hamującą. W dodatku,
na poziomie enzymatycznym celobioza może również być kompetetycyjnym
inhibitorem. Sama celuloza, będąc nierozpuszczalna w wodzie, nie
wpływa bezpośrednio na syntezę i może oddziaływać na nią jedynie
pośrednio przez celobiozę powstającą w wyniku degradacji łańcuchów.
Tłumaczy to pozorne działanie indukujące krystalicznej celulozy.
Degradacja w warunkach tlenowych. W dobrze nawietrzanych glebach
celuloza jest rozkładana i wykorzystywana przez drobnoustroje tlenowe
(grzyby, miksobakterie i inne bakterie), a w warunkach beztlenowych
— przez bakterie, kilka beztlenowych grzybów oraz pierwotniaki
Grzyby odgrywajÄ… znaczÄ…cÄ… rolÄ™ w degradacji celulozy w warunkach
tlenowych. Przeprowadzają one ten proces skuteczniej niż bakterie
w kwaśnych glebach oraz tam, gdzie celuloza jest inkrustowana ligniną
(drewno). Wyróżniają się tu gatunki z rodzajów Fusarium i Chaetomium.
Inne gatunki celulolityczne to Aspergillus fumigatus i A. nidulans, Botrytis
cinerea, Rhizoctonia solani, Trichoderma viride, Chaetomium globosum
i Myrothecium verrucaria. Trzy ostatnie gatunki są używane do wykazywania
aktywności celulolitycznej, np. do badania środków impregnacyjnych
stosowanych na tkaninach i okrywach w celu zapobiegania szkodom ze
strony drobnoustrojów celulolitycznych. Grzyby te wydzielają celulazy,
które można wyizolować zarówno z grzybni, jak i podłoża hodowlanego.
Cytophaga i Sporocytophaga to bakterie najłatwiejsze do wyizolowania
spośród tlenowych bakterii celulolitycznych; osiąga się to stosując
hodowle wzbogacające w płynnym podłożu. Niewiele wiadomo o wykorzystywaniu
i wstępnej degradacji celulozy przez bakterie śluzowe, gdyż
nigdy nie wykazano zewnątrzkomórkowej celulazy ani wstępnych produktów
rozszczepienia celulozy. Komórki bakteryjne przytwierdzają się do
włókna celulozy tak, że ich oś podłużna jest równoległa do osi włókna.
Wydaje się, że hydrolizują celulozę tylko wtedy, gdy są z nią w bezpośrednim
kontakcie i natychmiast wchłaniają produkty jej hydrolizy.
Oprócz gatunków należących do Cytophaga zdolność wzrostu na celulozie
wykazują również bakterie śluzowe wytwarzające ciała owocowe, należące
do rodzajów Polyangium, Sorangium i Archangium.
Zdolność wzrostu na celulozie jako substracie jest dość częsta u wielu
tlenowych bakterii uważanych za „wszystkożerne". Niektóre z nich atakują
celulozę jedynie wobec braku innych źródeł węgla. Niektóre bakterie
przypominajÄ…ce Pseudomonas niegdyÅ› zebrano w grupÄ™ Cellvibrio. Dopiero
niedawno opisano gatunek Pseudomonas fluorescens var. cellulosa.
Cellulomonas z kolei należałoby zaliczyć do bakterii z grupy maczugowców.
Niewiele gatunków celulolitycznych opisano wśród promieniowców,
sÄ… to: Micromonospora chalcea, Streptomyces cellulosae, S. sporangium.
Degradacja w warunkach beztlenowych. W warunkach beztlenowych
celulozę rozkładają bakterie mezofilne i termofilne oraz nieliczne grzyby
i pierwotniaki. Termofilna bakteria Clostridium thermocellum rośnie na
prostym podłożu syntetycznym z celulozą lub celobiozą jako substratem
oraz solami amonowymi jako jedynym źródłem azotu. Glukoza oraz wiele
innych cukrów nie są przez nią metabolizowane. Degradację celulozy
poprzedza wydzielanie żółtawej substancji przypominającej karotenoidy,
co zaobserwowano również u innych bakterii celulolitycznych. Zwiększa
to powinowactwo enzymu celulolitycznego do celulozy. Żółte zabarwienie
celulozy jest dobrym wskaźnikiem rozpoczęcia hydrolizy. W przypadku
C. thermocellum opisane powyżej wieloenzymatyczne kompleksy przyjmują
postać tzw. celulosomów o masie cząsteczkowej rzędu kilku
milionów. Produktami fermentacji celulozy są etanol, octan, mleczan,
mrówczan, wodór cząsteczkowy i dwutlenek węgla. Na zewnątrz komórki
celuloza prawdopodobnie jest przekształcana do glukozy. Podobne produkty
powstajÄ… podczas fermentacji celulozy przez mezofilnÄ… bakteriÄ™
Clostridium cellobioparum. DÅ‚ugie laseczki noszÄ…ce nazwÄ™ Bacillus
cellulosae-dissolvens, podobnie jak w przypadku Cytophaga, wydajÄ… siÄ™
ściśle przylegać do włókien celulozy i nie wydzielają one celulazy do
podłoża.
Przekształcanie celulozy w żwaczu. W żwaczu celulozę rozkładają
bakterie beztlenowe, grzyby i pierwotniaki. Głównymi źródłami węg-
lowodanów dla przeżuwaczy jest siano, słoma i trawa. Około 50% suchej
trawy to fruktozany i ksylany, reszta węglowodanów jest w postaci
celulozy. Ten ostatni składnik karmy byłby bezużyteczny dla przeżuwaczy,
gdyby w trakcie ewolucji nie weszły one w symbiotyczny związek
z drobnoustrojami, z których część ma zdolność degradacji celulozy.
Pierwsze dwa odcinki żołądka przeżuwacza, żwacz i czepiec, tworzą dużą komorę
fermentacyjną o objętości od 100 do 250 litrów. Zapewnia ona idealne warunki do wzrostu
licznych drobnoustrojów. Zwierzę zapewnia w tej symbiozie stalą temperaturę od 37°C do
39°C, ciągłą dostawę roztworu mineralnego dobrze zbuforowanego przez dwuwęglan
i fosforan (pH 5,8 do 7,3) (około 100-200 litrów śliny na dobę), okresowe dostarczanie
substratów odżywczych w postaci dobrze rozdrobnionego pokarmu zawierającego celulozę
oraz mechaniczne mieszanie na skutek ruchów żwacza. Żwacz przypomina zatem system
hodowli półciągłej.
Wśród drobnoustrojów w żwaczu dominują pierwotniaki i bakterie.
W 1 ml treści żwacza znajduje się około 105 pierwotniaków, przede
wszystkim orzęsków należących do rodzajów Diplodinium i Entodinium.
Są one wysoce wyspecjalizowane i rzadko występują poza żwaczem.
Stanowią one od 6 do 10% masy zawartości żwacza, a do części tej masy
przyczyniają się wielocukry będące materiałami zapasowymi. Ich rola
w żwaczu nie wydaje się niezbędna do życia organizmu gospodarza.
Z punktu widzenia funkcji, najważniejszymi mieszkańcami żwacza są
bakterie. W 1 ml soku żwacza występuje do 1011 komórek stanowiących
5 do 10% suchej masy jego zawartości. Bakterie swoiste dla żwacza są
ścisłymi beztlenowcami.
Bakterie przeprowadzają polimeryczne węglowodany w pokarmie do
takich prostych związków, jak kwasy tłuszczowe i alkohole. Celuloza,
skrobia, fruktozan i ksylan sÄ… katabolizowane przede wszystkim do
kwasów tłuszczowych. Około 90% pobranej celulozy ulega rozkładowi.
Powstają duże ilości kwasów — przede wszystkim octowy jako główny
produkt (50-70%), propionowy 17-21%), masłowy (14-20%) oraz
mniejsze ilości kwasu walerianowego i mrówkowego. Równocześnie
dziennie powstaje około 900 1 gazu, który składa się w 65% z dwutlenku
węgla, 27% metanu, 7% azotu, 0,18% wodoru oraz śladowych ilości
siarkowodoru. Ponieważ bakterie celulolityczne, wyizolowane w ostatnich
latach z treści żwacza, w warunkach laboratoryjnych wytwarzają te same
kwasy w zbliżonych proporcjach, można sądzić, że kwasy powstające
w żwaczu pochodzą z degradacji celulozy. Do organizmów rozkładających
celulozę w żwaczu należą: gramujemne ziarniaki Ruminococcus albus
i R. flavefaciens, gramujemna, nieruchliwa pałeczka Fibrobacter succinogenes,
która wytwarza głównie octan i bursztynian, Butyrivibrio
fibrisolvens oraz Clostridium cellobioparum.
Brak mleczanu w żwaczu jest przypisywany obecności Veilonella
alcalescens (Micrococcus lactilyticus), która fermentuje mleczan do octanu,
propionianu i dwutlenku węgla. Powstający w trakcie degradacji celulozy
metan tworzy się z kwasów tłuszczowych oraz z wodoru cząsteczkowego
i dwutlenku węgla. Siarkowodór w żwaczu powstaje na
skutek redukcji siarczanu przez Desulfotomaculum ruminis. Selenomonas
ruminantium) fermentuje glukozÄ™ do mleczanu, octanu
i propionianu. Spośród beztlenowych grzybów obecnych w żwaczu
najlepiej jest zbadany Neocallimastix frontalis (Chytridriomycetes). Rozkłada
on celulozę do glukozy, a następnie fermentuje glukozę do octanu,
mrówczanu, etanolu, mleczanu, CO2 i H2.
Pokarm przeżuwaczy w ich naturalnym środowisku na sawannach i stepach jest bardzo
ubogi w azot i białko. Aby zapewnić syntezę białka przez organizmy symbiotyczne
w żwaczu, przeżuwacze wykształciły odpowiedni cykl, tzw. żwaczowo-wątrobowy. Mocznik
powstający w wątrobie, w celu uniknięcia zatrucia amoniakiem, tylko częściowo jest
usuwany z moczem; część poprzez ścianę żwacza oraz z wydzielinami gruczołów
śliniankowych trafia do przedżołądków, stając się tym samym dostępna dla syntezy białka
przez mikroflorę żwacza. Symbioza z drobnoustrojami zamieszkującymi żwacz
czyni zwierzę niezależnym od źródła białka. Wielokrotnie powtarzane doświadczenia
wykazały, że krowy mogą odżywiać się pokarmem bezbiałkowym.
Bakterie dwojako pomagają przeżuwaczom w procesach odżywiania:
kwasy wytwarzane w trakcie katabolicznych przemian węglowodanów są
w żwaczu resorbowane, a masa bakteryjna, przesuwająca się wraz
z zawartością żwacza, jest trawiona w jelicie i wchłaniana. Bakterie
ulegają lizie na skutek aktywności enzymu zwanego lizozymem, który jest
wydzielany przez nabłonek żołądka. Ponieważ bakterie rosnące w żwaczu
wykorzystują azot nieorganiczny, zapewniają one zwierzęciu znaczny
poziom białka.
Twardnienie tłuszczy. Roślinne kwasy tłuszczowe różnią się od tłuszczów
zwierzęcych niskim stopniem nasycenia; zawierają one kwas olejowy,
oleinowy, linolowy, linoleinowy i arachidowy oraz majÄ… rzadszÄ… konsystencjÄ™
(niższy punkt topnienia). U zwierząt nie mających żwacza (świnie,
gryzonie, gęsi) kwasy tłuszczowe pochodzenia roślinnego są pobierane
w jelitach i nie ulegajÄ…c zmianie sÄ… wykorzystywane w tworzeniu tkanki
tłuszczowej. Tłuszcz tych zwierząt ma zatem rzadką konsystencję.
U przeżuwaczy roślinne kwasy tłuszczowe w żwaczu na skutek aktywności
bakterii ulegajÄ… silnemu uwodorowaniu (nasyceniu), po czym kwasy
nasycone są absorbowane z jelita i wbudowywane do tkanki tłuszczowej.
Tłuszcz tych zwierząt (masło, łój) ma gęściejszą konsystencję. Ponieważ
opisane przemiany przeprowadzają bakterie oraz biorąc pod uwagę, że 60
do 90% białka w mięsie wołowym jest również pochodzenia bakteryjnego,
to zjedzenie befsztyka w ostatecznym rozrachunku odbywa siÄ™ kosztem
bakterii, a skonsumowanie kotleta schabowego kosztem roślin stanowiących
karmÄ™.
Lignina
Pod względem ilości lignina, po celulozie i hemicelulozie, jest najważniejszym
składnikiem roślin. Zawartość ligniny w tkance drzewnej wynosi
od 18 do 30% suchej masy. Lignina stanowi inkrustację tkanki roślinnej
i znajduje się we wtórnych lamellach ściany komórkowej. Kompleks
celulozy i ligniny zwany jest lignocelulozÄ…. Lignina jest najwolniej
degradowalnym składnikiem roślin. Stanowi zatem główne źródło wolno
rozkładanych substancji organicznych w glebie, szczególnie kwasów
huminowych.
Pod względem chemicznym lignina nie jest jednorodna, lecz jest bardzo złożonym
związkiem. Złożoność ta nie wynika z dużej liczby różnych monomerów,
ponieważ podstawowe jednostki są pochodnymi fenylopropanowymi, przede wszystkim
alkoholu koniferylowego. Jest ona natomiast spowodowana dużą liczbą rozmaitych wiązań
łączących ze sobą poszczególne monomery. Nieregularna struktura ligniny jest zgodna
z założeniem, że proces enzymatycznej syntezy ligniny ogranicza się do tworzenia rodników
alkoholu koniferylowego. Rodniki te następnie łączą się spontanicznie ze sobą, a charakter
i możliwości tych połączeń zależą od mezomerycznego stanu poszczególnych rodników.
Wyizolowano szereg dimerów i oligomerów alkoholu koniferylowego
będących produktami pośrednimi w syntezie ligniny. Podczas
gdy lignina świerka złożona jest głównie z alkoholu koniferylowego,
lignina drzew liściastych zawiera alkohol koniferylowy i alkohol sinapylowy.
Z kolei ligina przedstawicieli Gramineae składa się z alkoholu
kumarylowego. Różnice w składzie ligniny wyrażają się głównie zawartością
grup metoksylowych: 20,5-21% w ligninie drewna drzew
liściastych, 15-16% w przypadku świerka i 14-15% u przedstawicieli
Gramineae.
Fenylopropanowe jednostki budulcowe w ligninie sÄ… silnie usieciowane
wiązaniami eterowymi i C—C (ryc. 14.5). Wiązania te są niezwykle oporne
na działanie enzymów. U roślin lignina jest nieczynnym produktem
końcowym metabolizmu; nie jest ona ponownie wykorzystywana w procesach
metabolicznych i pełni jedynie funkcje strukturalne. Rozkładana
jest wyłącznie przez drobnoustroje. W porównaniu z celulozą lub
hemicelulozą rozkład ten zachodzi nadzwyczaj wolno. Proces degradacji
ligniny przeprowadzają grzyby niszczące drewno, jak również bakterie
i grzyby glebowe.
Rozkład ligniny. Niektóre grzyby rozkładają ligninę nawet w żywej
roślinie. Wśród postawczaków niszczących drewno można wyróżnić dwie
grupy. Pierwsza to grzyby, które wywołują brunatną zgniliznę zamieniając
drewno w brunatonoczerwonÄ… masÄ™; degradujÄ… one przede wszystkim
celulozowe i hemicelulozowe składniki drewna, pozostawiając nietknięte
polimery fenylopropanowe. Druga grupa to grzyby powodujące białą
zgniliznę drewna zmieniając je w białą masę. Atakują one głównie ligninę
i przez dłuższy czas pozostawiają nietkniętą celulozę. Do grzybów
atakujących przede wszystkim ligninę należą: Polystictus versicolor,
Stereum hirsutum i Phanerochaete chrysosporium. Inne grzyby atakujÄ…
równocześnie ligninę i celulozę (Pleurotus ostreatus, Ganoderma applanatum,
Polyporus adustus, Armillaria mellea). Rozkład drewna przez
czyste kultury grzybów postępuje tak wolno, że eksperymenty tego typu
trwają miesiącami, a nawet latami. Stosując różne metody można wykazać
rozkład ligniny przez przedstawicieli następujących rodzajów: Pholiota,
Clitocybe, Lenzites, Panus, Poria i Trametes).
Jednym z najaktywniejszych grzybów powodujących białą zgniliznę
drewna, wykorzystywanym obecnie jako organizm modelowy w badaniach
nad rozkładem ligniny przez grzyby, jest Phanerochaete chrysosporium.
Rozkłada on ligninę wyłącznie w obecności tlenu i glukozy.
W warunkach beztlenowych degradacja ligniny nie zachodzi. Lignina
jest rozkładana przez kompleks enzymatyczny zwany niegdyś ligninazą.
Na kompleks ten składają się dobrze zbadane peroksydazy, w tym dwie
peroksydazy hemowe; peroksydaza ligninowa i peroksydaza zależna od
manganu. Peroksydazy, aby były aktywne, wymagają H2O2 i katalizują
oksydatywne rozszczepienie eterowych wiązań β-Ο-4 oraz wiązań C—C
w ligninie. Nadtlenek wodoru prawdopodobnie pochodzi z utlenienia
glukozy (pochodzÄ…cej z celulozy) przez oksydazÄ™ glukozowÄ…. Tworzeniu
peroksydaz sprzyja ograniczenie azotu. Ten sposób regulacji syntezy
peroksydazy sprzyja hipotezie, że rozkład ligniny nie ma celu uzyskiwania
energii do metabolizmu, lecz jest ukierunkowany na uzyskiwanie
składników drewna zawierających azot, które inaczej byłyby
niedostępne.
Badania nad wyizolowanymi peroksydazami wykazały, że proces
degradacji rozpoczyna przeniesienie pojedynczego elektronu. Elektron ten
tworzy względnie trwałe aromatyczne rodniki kationowe w szkielecie
ligniny. Te z kolei majÄ… charakter jednoelektronowych utleniaczy aktywnych
w pewnej odległości od enzymu. Rodniki te powodują rozszczepienie
wiązań C—C oraz wiązań eterowych i rozpad szkieletu ligniny do
niskocząsteczkowych związków fenolowych, które z kolei są utleniane
przez oksydazy fenolowe. Zjawisko powstawania rodników pośrednich
w trakcie działania oksydaz jest dobrze znane. Biorąc pod uwagę dużą
liczbę związków fenolowych powstających podczas degradacji kompleksu
ligniny, wątpliwe jest, by jej mechanizm był kiedykolwiek wyjaśniony do
końca. Warto jednak prowadzić dalsze badania nad pośrednim powstawaniem
rodników pełniących rolę w przenoszeniu elektronów katalizowanym
przez oksygenazy.
Nie ulega wątpliwości, że ligninę rozkładają nie tylko grzyby, lecz
również bakterie. Rozkład ten jest jednak tak wolny, że nie ma on
większego znaczenia w porównaniu z innymi procesami metabolicznymi.
Ciągle poszukuje się drobnoustrojów degradujących ligninę lub przekształcających
ją w sposób pozwalający na jej dalsze utlenienie przez inne
mikroorganizmy.
Chityna
Chityna uważana jest za drugi po celulozie najpowszechniej występujący wielocukier na
naszej planecie. Formalnie, chitynę można wyprowadzić z celulozy podstawiając grupę
hydroksy przy drugim atomie węgla glukozy acetylowaną grupą aminową (rozdz. 2.2.4).
Stabilność chityny wynika z wiązań wodorowych między N-acetylowymi grupami bocznymi.
Chityna jest materiałem podtrzymującym w świecie zwierzęcym, gdzie tworzy szkielet
zewnętrzny wielu bezkręgowców. W sposób ciągły jest syntetyzowana również w glebie
przez grzyby, gdyż jest głównym składnikiem wielu workowców i podstawczaków.
Nic więc dziwnego, że bardzo wiele bakterii wodnych i glebowych
wykorzystuje chitynę. Wśród 50 bakterii rozkładających chitynę, wyizolowanych
z gleby uprawnej, znajdują się następujące rodzaje: Flavobacterium,
Bacillus, Cytophaga, Pseudomonas, Streptomyces, Nocardia
i Micromonospora. Do grzybów degradujących chitynę należą gatunki
Aspergillus, Mucor i Mortierella. W jednym gramie gleby ornej znajduje
się do 106 organizmów zdolnych do rozkładu chityny. Tak duża liczba
tych drobnoustrojów w glebie świadczy o tym, że Chityna może być
zawsze dostępnym substratem. Dodatek drobno sproszkowanej chityny do
gleby powoduje przyśpieszony wzrost promieniowców. Dodatek do
podłoża chityny jako jedynego źródła węgla i azotu tworzy zatem warunki
do selekcji tych organizmów. W warunkach tlenowych Chityna jest
rozkładana przez pewne wyspecjalizowane, bezwzględnie beztlenowe
bakterie chitynolityczne. Warto byłoby poszerzyć wiadomości na temat
degradacji chityny w układzie pokarmowym zwierząt morskich żywiących
się krewetkami i krabami, jak również chityny w osadach.
Chityna jest również rozkładana przez enzymy pozakomórkowe
pochodzące z drobnoustrojów. Enzymy wydzielane przez Streptomyces
griseus rozdzielono na chitynazÄ™ i chitobiazÄ™. Degradacja chityny najprawdopodobniej
polega na równoczesnym ataku chitynazy w wielu
miejscach polimeru, co prowadzi do powstania małych ilości N-acetyloglukozoaminy
oraz przede wszystkim chitobiozy i chitotriozy. Chitobiaza
przeprowadza te ostatnie do monomerów. Drobnoustroje, np. Absidia
coerula, rozkładają chitynę do chitozanu. Związek ten jest poliglukozoaminą
i łatwo powstaje w drodze deacetylacji chityny. W dużych ilościach
jest otrzymywany metodami biotechnologicznymi i znajduje zastosowanie
jako klej, środek opatrunkowy, chelator oraz dodatek do gleby i pokarmu
zwierzęcego.