DEZYNFEKCJA / STERYLIZACJA / ASEPTYKA / ANTYSEPTYKA
Gabinet kosmetyczny jest miejscem, w którym, ze względu na dużą rotację ludzi i wykonywanie wielu różnorodnych zabiegów z naruszeniem ciągłości powłok skórnych, istnieje ryzyko zakażenia drobnoustrojami chorobotwórczymi. Na zakażenie narażeni są zarówno klienci gabinetów, jak również personel świadczący usługi. Drobnoustroje mogą przenikać do organizmu głównie drogą kontaktową, przez kontakt skóry z bielizną zabiegową, przez odzież, narzędzia, stosowane preparaty, zanieczyszczenia oraz częściowo drogą kropelkową lub na cząstkach pyłu.
W zapobieganiu rozprzestrzenianiu się drobnoustrojów chorobotwórczych, a także we wszelkim postępowaniu, którego skutkiem może być naruszenie ciągłości powłok skórnych podczas wykonywania szerokiej gamy zabiegów, ważne znaczenie mają procesy wyjaławiania i dezynfekcji.
Wyjaławianie jest procesem, w wyniku którego zostają zniszczone wszystkie drobnoustroje, zarówno ich formy wegetatywne, jak i zarodniki. Natomiast dezynfekcja to proces polegający na zniszczeniu lub usunięciu form wegetatywnych drobnoustrojów do bezpiecznego poziomu dla człowieka. Oba procesy wykorzystywane są w postępowaniu określanym jako aseptyka i antyseptyka.
Aseptyka to wszelkie działania, które mają nie dopuścić do zakażenia powstałych w różnych okolicznościach ran. Działania te dotyczą także wszystkich materiałów opatrunkowych, które mają kontakt z uszkodzoną skórą. Opatrunki z mikrobiologicznego punktu widzenia muszą być jałowe (sterylne), czyli pozbawione wszelkich mikroorganizmów chorobotwórczych.
Antyseptyka to działania, których celem jest usunięcie i zniszczenie bakterii czy innych mikroorganizmów z pola zabiegowego (skóry, ran, błon śluzowych), dzięki zastosowaniu różnych preparatów chemicznych niszczących struktury bakterii, uszkadzających ich metabolizm oraz likwidujących zarodniki.
ZASADY WYJAŁAWIANIA (STERYLIZACJI)
W praktyce zabiegowej stan jałowości wymagany jest w odniesieniu do wielu przedmiotów. Dotyczy to zarówno narzędzi zabiegowych, materiałów opatrunkowych, igieł, strzykawek, jak i bielizny zabiegowej oraz rękawiczek. Przedmioty, które mają być poddane sterylizacji, muszą być idealnie czyste, suche, zdezynfekowane i zapakowane w sposób zapobiegający wtórnym zanieczyszczeniom, aby czynnik sterylizujący swobodnie przenikał do przedmiotów poddawanych temu procesowi. Proces sterylizacji musi być prawidłowo prowadzony (odpowiednie ułożenie w pojemniku do sterylizacji - puszce Schimmelbuscha i komorze sterylizatora) i kontrolowany. Artykuły po sterylizacji muszą być przechowywane w warunkach wykluczających możliwość wtórnych zanieczyszczeń.
W praktyce stosuje się kilka sposobów sterylizacji:
ciepłem wilgotnym (tzw. sterylizacja parowa),
suchym, gorącym powietrzem,
sterylizację gazową, niskotemperaturową (zastosowanie tlenku etylenu i formaldehydu oraz nadtlenku wodoru i plazmy gazowej),
radiacyjną,
chemiczną.
Sterylizacja ciepłem wilgotnym
Sterylizacja ciepłem wilgotnym jest metodą preferowaną, obecnie najszybszą, najpewniejszą, nietoksyczną, najbardziej ekonomiczną, niszczącą formy przetrwalnikowe drobnoustrojów. Polega na zastosowaniu nasyconej pary wodnej lub wrzącej wody o tempe raturze 121°C pod ciśnieniem 1 atmosfery lub 134°C pod ciśnieniem dwóch atmosfer, przy minimalnych czasach ekspozycji 15 i 5 minut. Przebiega w sterylizatorach parowych zwanych autoklawami. W praktyce jednak czas ekspozycji może być wydłużony, zależnie od rodzaju wyjaławianych przedmiotów. Metoda ta wykorzystywana jest przy sterylizacji sprzętu, który nie koroduje w wysokiej temperaturze i wilgotnej atmosferze. Jest także najskuteczniejsza w przypadku prionów (temp. 134°C, 18 min).
Proces sterylizacji parowej jest skuteczny, gdy z jego komory zostanie całkowicie usunięte powietrze. Skuteczność procesu musi być kontrolowana poprzez wskazania manometru, jak i termometru, gdyż nasycona para wodna może mieć różną temperaturę zależną od ilości powietrza pozostawionego w komorze. Czas ekspozycji powinien być liczony od momentu uzyskania właściwych wskazań obu mierników. Po zakończeniu sterylizacji materiał wyjaławiany należy wysuszyć, pozostawiając go w otwartym pojemniku na czas ok. 15 min., po czym przechowywać w czystych i suchych pomieszczeniach nie dłużej niż 1-2 tygodnie.
Sterylizacja suchym, gorącym powietrzem
Sterylizacja suchym, gorącym powietrzem przeprowadzana jest w sterylizatorach wykorzystujących suche powietrze (suszarki), w temperaturze 160-200CC. Najczęściej wyjaławia się w temperaturze 160°C przez 60 min lub 180°C przez 15 min. Ta metoda zalecana jest do sterylizacji materiałów, które nie mogą być poddane sterylizacji parowej w nadciśnieniu. Zaliczają się do nich pudry, oleje, wazelina, materiały oleiste. Materiał bardziej odporny, np. szkło, porcelanę czy niektóre przedmioty metalowe, można sterylizować w temperaturze 200°C. Gorące powietrze bardzo wolno oddaje ciepło, dlatego wymagane są długie czasy ekspozycji.
W praktyce wyjaławiania suchym powietrzem należy przestrzegać następujących zasad:
nie wliczać czasu nagrzewania komory do czasu ekspozycji,
materiał poddawany sterylizacji musi być suchy,
pakiety nie powinny przekraczać rozmiarów 10x10x30 cm,
• materiały oleiste (gliceryna, tłuszcz, olej) i sproszkowane należy przed sterylizacją podgrzać.
Ten typ sterylizacji nie jest zalecany do wyjaławiania materiałów opatrunkowych, bielizny zabiegowej, materiałów z tworzyw sztucznych, gumy i roztworów wodnych. Jako opakowania stosuje się folię aluminiową, papier, pojemniki metalowe i szklane.
Sterylizacja gazowa
Sterylizacja gazowa jest metodą wykorzystującą gazy o działaniu bakteriobójczym. Ten rodzaj sterylizacji określa się często mianem sterylizacji niskotemperaturowej, gdyż proces wyjaławiania przebiega w temperaturze 50-60°C. Najczęściej wykorzystuje się do tego celu tlenek etylenu w mieszaninie C02 lub jako gaz w formie jednorazowych nabojów po 100 i 130 g, formaldehyd oraz nadtlenek wodoru (źródło ciekłej plazmy).
Tlenek etylenu
Metoda ta ma zastosowanie szczególnie do wyjaławiania materiałów termolabilnych oraz wysoce specjalistycznego sprzętu wykorzystywanego w mikrochirurgii, laparoskopii czy endoskopii. Jej zastosowanie wymaga dużej wiedzy od osób przeprowadzających sterylizację, gdyż wyjaławiany sprzęt może różnić się znacznie konstrukcją i wrażliwością na warunki sterylizacji.
Ponieważ materiał zabrudzony, niedokładnie umyty utrudnia kontakt gazu z bakteriami, we wstępnym etapie z komory należy usunąć powietrze i wprowadzić parę wodną w celu nawilżenia zarodników i bakterii. Dzięki temu są one bardziej wrażliwe na wprowadzony do komory gaz.
Tlenek etylenu jest substancją przenikliwą, głęboko penetrującą sterylizowany sprzęt, jest również substancją toksyczną, dlatego po zakończeniu procesu sprzęt musi być poddany tzw. desorpcji bądź degazacji. Proces ten w zwykłych warunkach, w dobrze wietrzonym pomieszczeniu, trwa około tygodnia. Natomiast po zastosowaniu tzw. aeratorów (szafek powietrznych usuwających tlenek ze sterylizowanych materiałów) w temp. 50-55°C trwa od 18 godzin, w przypadku materiałów gumowych i lateksowych, do 32 godzin, w przypadku materiałów wykonanych z polichlorku winylu.
W trakcie sterylizacji z użyciem tlenku etylenu mogą powstawać pochodne tlenku z produktami zawierającymi chlor. Wśród pochodnych wymienia się etylenochlorhydrynę i glikol etylenowy. Obie pochodne, podobnie jak tlenek etylenu, są związkami o działaniu szkodliwym dla człowieka. Metoda ta wymaga ciągłej kontroli mikrobiologicznej.
Formaldehyd
Stanowi alternatywę wobec sterylizacji tlenkiem etylenu i podobnie jak on wykorzystywany jest do sterylizacji materiałów wykonanych z gumy i tworzywa sztucznego. Formaldehyd stosowany jest w mieszaninie z parą wodną. Najczęściej stosuje się roztwory o stężeniu 5-30 g na 100 ml w temperaturze 60-80°C lub 20 g na 100 ml w temperaturze 55°C. Metoda ta często określana jest jako parowo-formaldehydowa. Formaldehyd, w przeciwieństwie do tlenku etylenu, nie penetruje materiałów sterylizowanych. Jego działanie polega na pokrywaniu materiałów cienką warstwą, w związku z tym narzędzia o długim, cienkim świetle wymagają długich cykli i zmian ciśnienia. Podobnie jak w poprzedniej metodzie skuteczność sterylizacji zależy w dużej mierze od ilości wody zaabsorbowanej przez sterylizowane artykuły. W przypadku formaldehydu istnieje również niebezpieczeństwo dla personelu obsługującego sterylizatory. Formaldehyd jest substancją o działaniu drażniącym, toksycznym i mutagennym.
Plazma gazu
Obecnie jest metodą najnowszą. Wykorzystuje głęboką próżnię do przeprowadzenia gazu w stan jonizacji - plazmy. Metoda ta jest skuteczna, niszczy wszystkie formy drobnoustrojów w temperaturze 40-60°C, w środowisku o niskiej wilgotności. Jest również bezpieczna dla personelu i pacjentów. Omawiana metoda jest szczególnie korzystna w przypadku sterylizacji termolabilnego, specjalistycznego sprzętu, zwłaszcza diagnostycznego, aparatów do sztucznego oddychania, urządzeń światłowodowych, cewników, kamer czy narzędzi elektrochirurgicznych mających bezpośredni kontakt z tkankami i płynami ustrojowymi pacjenta. Nie można sterylizować bielizny, proszków, płynów, długich, ślepo zakończonych narzędzi. Na plazmę składają się elektrony, jony i obojętne jądra atomów. Stan plazmy uzyskuje się poprzez zastosowanie pola elektromagnetycznego o częstotliwości fal radiowych. Wolne rodniki oraz inne struktury składające się na plazmę działają destrukcyjnie na drobnoustroje, niszcząc ich struktury wewnątrzkomórkowe, błonę komórkową i DNA.
Sterylizacja radiacyjna
Sterylizacja radiacyjna wykorzystuje w procesie wyjaławiania promieniowanie izotopów Co60 i Cs137, przy czym większą część (ok. 90%) stanowi promieniowanie Co60. Metoda ta ma wiele zalet. Nie pozostawia toksycznych produktów, jest szybka (kilka minut), pozwala na wyjaławianie materiałów w ich ostatecznym opakowaniu. Sterylizacji tego typu poddawane są głównie sprzęty jednorazowego użytku, endoprotezy, protezy naczyniowe, zestawy do przetaczania krwi, środki farmaceutyczne i kosmetyki.
Sterylizacja chemiczna
Sterylizacja chemiczna polega na zastosowaniu tzw. chemosterylizatorów, czyli płynnych środków wykorzystywanych do sterylizacji przyborów i materiałów medycznych wrażliwych na działanie wysokich temperatur. Wszystkie czynności związane z wyjaławianiem chemicznymi środkami należy wykonywać w warunkach aseptycznych, posługując się jałowym sprzętem i wodą destylowaną. Do tego celu najczęściej wykorzystuje się kwas nadoctowy, zazwyczaj 0,5-2,5%, oraz nierozcieńczony aldehyd glutarowy. Zaletą sterylizacji kwasem nadoctowym jest niska temperatura procesu, krótki czas sterylizacji (30 min) i nie toksyczność produktów końcowych (tlen i kwas octowy). Sterylizacja w aldehydzie glutarowym jest dłuższa (do 10 godz.). Brak możliwości stosowania opakowań stwarza ryzyko wtórnych zanieczyszczeń, dlatego wyjaławiane w ten sposób przedmioty powinny być przeznaczone do natychmiastowego użytku. W czasie wyjaławiania naczynie z roztworem chemosterylizatora powinno być przykryte (szczególnie z aldehydem glutarowym). Po wyjęciu z roztworu przedmiot sterylizowany należy dokładnie spłukać wodą destylowaną i wytrzeć jałowym ręcznikiem, serwetą.
Kontrola procesu sterylizacji
Skuteczność procesu sterylizacji zależy od sprawności używanych urządzeń oraz przestrzegania następujących zasad:
• każdy przedmiot poddawany sterylizacji musi być wcześniej zdezynfekowany, po umyciu wysuszony i odpowiednio zapakowany,
należy stosować właściwe parametry sterylizacji ustalane dla poszczególnych materiałów i sprzętów (czas, ciśnienie, temperatura),
stosować monitoring sterylizacji poprzez wskaźniki chemiczne, fizyczne i biologiczne,
przechowywać we właściwych warunkach wysterylizowane materiały.
Wskaźniki chemiczne (indykatory)
Stosuje się substancje chemiczne, które po osiągnięciu wymaganych parametrów procesu zmieniają barwę. Wśród nich wykorzystuje się wskaźniki wewnętrzne umieszczane we wnętrzu pakietu, informujące o prawidłowości procesu i uzyskaniu wewnątrz pakietu wszystkich parametrów procesu. Indykatory zewnętrzne umieszczane są na powierzchni pakietu. Dostarczają informacji o tym, że pakiet został poddany działaniu czynników sterylizujących. Pozwalają również odróżnić pakiety wyjałowione od niewyjałowionych.
Wskaźniki fizyczne
Wskaźniki fizyczne to termometry, manometry, karty kontrolne, rurki Browna zmieniające barwę w zależności od temperatury i czasu działania, wszelka aparatura kontrolująca proces sterylizacji i sprawność techniczną urządzenia.
Wskaźniki biologiczne
Są to wskaźniki informujące o fakcie zabicia szczepów bakterii indykatorowych, wysoce odpornych na określony czynnik sterylizacyj-ny. Wskaźnik biologiczny umieszcza się w różnych miejscach komory sterylizacyjnej, zwłaszcza w miejscach, do których czynnik sterylizacyjny może mieć utrudniony dostęp. W Polsce do kontroli biologicznej stosuje się:
sporal A - spory Bacillus stearothermophi-lus umieszczane na bibule; po sterylizacji w czasie do 24 godzin przenoszone są na odpowiednie podłoże mikrobiologiczne i inkubowane w temp. 56°C przez 7 dni; pojawienie się zmętnienia pożywki informuje o nieprawidłowym przebiegu wyjaławiania; ten szczep bakterii wykorzystywany jest do kontroli sterylizacji parowej (w autoklawach);
sporal S - spory Bacillus subtilis również umieszczany na bibule; po sterylizacji przenoszony na odpowiednią pożywkę i inku-bowany w temperaturze 37°C przez 7 dni; podobnie i w tym przypadku zmętnienie świadczy o nieprawidłowościach sterylizacji; stosowany do okresowej kontroli procesu suchym, gorącym powietrzem i każdorazowo tlenkiem etylenu;
attest nr 1261 - zmodyfikowany szczep Bacillus stearothermophilus do kontroli sterylizacji parą wodną w cyklu Flash (3 min, 132°C);
attest nr 1262 - również zmodyfikowany szczep Bacillus stearothermophilus do kontroli wszystkich procesów sterylizacji parowej, z wyjątkiem cyklu Flash;
attest nr 1264 - spory Bacillus subtilis do kontroli sterylizacji tlenkiem etylenu.
DEZYNFEKCJA
Dezynfekcja jest procesem redukującym liczbę mikroorganizmów i przeciwdziałającym ich rozprzestrzenianiu. W dezynfekcji wykorzystuje się metody fizyczne i chemiczne. Powszechniej jednak stosowane są związki chemiczne, które powinny być skuteczne w stosunku do bakterii, grzybów i wirusów. Związki te wykorzystuje się do dezynfekcji narzędzi, podłóg, blatów, aparatury (środki dezynfekcyjne) oraz do odkażania powierzchni skóry, ran (środki antyseptyczne). Związki mające bezpośredni kontakt ze skórą nie mogą działać toksycznie, drażniąco ani alergizuj ąco, dlatego nie wszystkie związki dezynfekcyjne mogą być stosowane w antyseptyce.
Z punktu widzenia bezpieczeństwa personelu medycznego użyty w zabiegach sprzęt i narzędzia muszą być zdezynfekowane przed umyciem i sterylizacją.
Fizyczne metody dezynfekcji
Wśród metod fizycznych wyróżnia się metody termiczne i nietermiczne.
Metody termiczne polegają na wykorzystaniu gorącej wody lub pary wodnej. Jest to dezynfekcja wodą wrzącą lub podgrzaną do temperatury 80-100°C albo parą wodną w czasie 30 min. Dzięki temu niszczone są formy wegetatywne bakterii. Metoda nie jest skuteczna w stosunku do HBV. Zaleca się ją do dezynfekcji bielizny.
Pasteryzacja to krótkotrwałe, jednorazowe podgrzanie cieczy do temperatury 80-90°C na kilka sekund, po czym natychmiastowe oziębienie do temperatury pokojowej. Działanie takie obniża znacznie liczbę drobnoustrojów w roztworze i utrudnia ich wzrost. W gorącej wodzie o temp. 80 °C w czasie 30 min ulegają zniszczeniu wegetatywne formy bakterii, grzyby oraz większość wirusów.
Do metod nietermicznych należą filtracja i działanie promieniowania UV.
Filtracja to metoda mechanicznego zatrzymywania drobnoustrojów na filtrach o określonej średnicy porów. Stosowana jest głównie podczas produkcji leków i szczepionek, do oczyszczania powietrza z drobnoustrojów w instalacjach nawiewowych w pomieszczeniach czystych lub czystych stołach roboczych.
Działanie promieniowania UV. W dezynfekcji wykorzystuje się zakres UVC o najkrótszej fali i największej energii cząstek oraz UVB. Maksimum działania UV przypada na falę o długości 257 nm, która pochłaniana jest głównie przez DNA. Ze względu na ograniczoną przenikliwość UV stosuje się je do dezynfekcji powietrza lub czystej wody.
Metody chemiczno-termiczne
Są to metody wykorzystujące wilgotne, gorące powietrze ze środkiem dezynfekcyjnym. Metoda ta służy do odkażania przedmiotów, które mogłyby ulec uszkodzeniu w wysokiej temperaturze. Dezynfekcja przeprowadzana jest w automatach czyszczących. Płyn dezynfekcyjny podgrzewa się do temp. 40-60°C, co umożliwia zmniejszenie dawki związku chemicznego.
Metody chemiczne
W dezynfekcji i antyseptyce znalazły zastosowanie związki chemiczne należące do różnych grup chemicznych. Wśród nich wyróżnia się takie grupy związków jak:
alkohole,
aldehydy,
fenole,
środki utleniające,
chlorowce,
sole metali ciężkich,
barwniki,
środki powierzchniowo czynne.
W praktyce często łączy się różne związki w celu uzyskania większej skuteczności i zmniejszenia oporności drobnoustrojów.
W Polsce do dezynfekcji powinno używać się wyłączne środków dezynfekcyjnych dopuszczonych do obrotu. Jeszcze do niedawna obowiązywała informacja VII, czyli Wykaz preparatów dezynfekcyjnych przeznaczonych do stosowana w zakładach opieki zdrowotnej pozytywnie zaopiniowanych przez Państwowy Zakład Higieny (Dz. U. MZiOS Nr 11 z dnia 05.10.1996).
Obecnie, po zmianie przepisów prawnych i dostosowywaniu polskiego prawa do prawa unijnego, środki dezynfekcyjne klasyfikowane są w trzech odrębnych kategoriach:
preparaty przeznaczone do higieny rąk i skóry - traktowane są jako produkty lecznicze, ich rejestracja i dopuszczenie do stosowania podlega restrykcjom Ustawy Prawa Farmaceutycznego z dnia 6 września 2001 r.
preparaty przeznaczone do dezynfekcji wyrobów medycznych - traktowane są jako wyroby medyczne i podlegają restrykcjom ustawy o wyrobach medycznych z dnia 20 kwietnia 2004 r.
inne środki dezynfekcyjne - podlegają one wymogom ustawy o produktach biobójczych z dnia 13 września 2002 r.
Zgodnie z zasadami narzędzia i sprzęt, które mają kontakt z nieuszkodzoną powierzchnią skóry, mogą być poddawane tylko procesom dezynfekcji. W przeciwnym wypadku muszą być poddane sterylizacji. Ze względu na działanie drażniące i alergizujące jedynie niektóre z tych związków są stosowane jako antysep-tyki. Nie stosuje się związków o silnym, uszkadzającym działaniu (np. aldehydy, fenole).
Czynniki decydujące o skuteczności działania środków dezynfekcyjnych:
liczba i typ drobnoustrojów,
stan fizjologiczny mikroorganizmu,
typ środka chemicznego,
stężenie związku chemicznego w preparacie - im większe, tym szybszy efekt,
czas działania substancji chemicznej potrzebny do zabicia drobnoustrojów - odwrotnie proporcjonalny do liczby drobnoustrojów,
temperatura - im wyższa temperatura, tym szybszy efekt,
pH środowiska - odpowiednie pH ułatwia dysocjację związków chemicznych i powoduje przemieszczanie się ładunków elektrycznych na powierzchni komórek mikroorganizmu, np. wzrost pH prowadzi do obniżenia aktywności fenoli, chloranów (I), związków jodu i do podwyższenia aktywności IV-rzędowych zasad amoniowych,
wilgotność - im większa wilgotność, tym skuteczniejszy przebieg dezynfekcji; środki dezynfekcyjne, działając destrukcyjnie na komórki bakteryjne, przede wszystkim denaturują białko komórkowe, dlatego formy przetrwalnikowe drobnoustrojów posiadające małą ilość wody są mniej wrażliwe na działanie preparatów chemicznych,
obecność w środowisku materii organicznej - w większości przypadków obecność materii organicznej osłabia siłę działania związków chemicznych.
Charakterystyka głównych grup związków chemicznych stosowanych w antyseptyce
Alkohole
W dezynfekcji najczęściej stosowane są n-propanol, izopropanol oraz 70-80% roztwór etanolu. Jego większe stężenia nie działają szybko, gdyż powodują silne odwodnienie bakterii. Alkohole służą głównie do antyseptyki skóry, dezynfekcji rąk oraz dezynfekcji małych powierzchni i przedmiotów, szczególnie wtedy, gdy wymagany jest szybki efekt. Ich zaletą jest szybka penetracja skóry i stosunkowo krótki czas niszczenia drobnoustrojów (5-15 min). Są one składnikami wielu preparatów złożonych. Znane preparaty złożone zawierające alkohole to: Aldewir, Lysoformin 3000 (do dezynfekcji powierzchni i sprzętu), Aerodesin 2000 (do dezynfekcji narzędzi i powierzchni), Medisan 2000 (do narzędzi).
Aldehydy
Ta grupa związków charakteryzuje się dużą skutecznością w stosunku do bakterii (łącznie z prątkami), wirusów, grzybów, form przetrwalnikowych. Ich aktywność nie ulega obniżeniu w obecności zanieczyszczeń organicznych. Aldehydy są głównie składnikami preparatów złożonych, np. z detergentami. Stosowane są najczęściej do dezynfekcji narzędzi, powierzchni oraz wyrobów z mas plastycznych. Nie mogą być stosowane w antyseptyce, gdyż działają silnie drażniąco na skórę i błony śluzowe. Najbardziej znane związki tej grupy to formaldehyd, aldehyd glutarowy, glioksal, aldehyd bursztynianowy. Znane preparaty to Aldesan, Cidex, Alhydrex.
Fenole i ich pochodne
Zastosowanie fenolu zapoczątkowało erę antyseptyki. Związki fenolowe działają skutecznie zarówno przeciw bakteriom, grzybom, jak i niektórym wirusom. Ich działanie jest szczególnie wyraźne w środowisku kwaśnym. W postaci preparatów łączonych są stosowane do dezynfekcji powierzchni, narzędzi, urządzeń do odsysania. Znane preparaty to Manusan, Sebidin.
Związki jodu
W tej grupie związków największe znaczenie terapeutyczne ma sam jod. Rozpuszczony w rozpuszczalnikach organicznych (alkohol) niszczy wszystkie drobnoustroje (bakterie, grzyby). Działa szybko i silnie. Może być stosowany tylko na nieuszkodzoną skórę (otoczenia ran, pole operacyjne), ponieważ wywołuje silne podrażnienia. Zastosowany na błony śluzowe i rany powoduje pieczenie, ból, może także zostać wchłonięty i doprowadzić do zatrucia. Wywołuje nie tylko alergie skórne, ale również odczyny ogólne, jak wstrząs anafilaktyczny. Dlatego w antyseptyce częściej stosuje się nie roztwory jodu, a jego kompleksy z wielkocząsteczkowymi związkami organicznymi - jodofory. Jod uwalnia się z nich stopniowo, co przedłuża jego działanie i osłabia efekt drażniący. W praktyce najczęściej stosowany jest jodowany poliwinylopirolidon (Povidone-Iodine) działający na bakterie, grzyby, wirusy, formy przetrwalnikowe bakterii. Przygotowywany jest w formie roztworów wodnych, alkoholowych oraz maści i żelu. Jest dobrze tolerowany, wykazuje (szczególnie roztwory alkoholowe) niewielkie działanie drażniące i miejscowo alergizujące.
Ze względu na resorpcję jodu przez skórę i związany z tym wpływ na czynność gruczołu tarczowego nie należy stosować związków jodopochodnych w czasie ciąży, laktacji lub u noworodków.
Związki powierzchniowo czynne
Działanie bakteriobójcze związków powierzchniowo czynnych jest słabe i nie obejmuje zarodników, prątków, wirusów bez-otoczkowych. Słabo działają też na bakterie Gram-ujemne. Aktywność związków maleje w obecności nawet niewielkiej ilości substancji organicznych. Dlatego w preparatach antyseptycznych wykorzystywane są głównie jako składniki dodatkowe, np. w połączeniu z aldehydami wykorzystywane do dezynfekcji przedmiotów lub w połączeniu z alkoholami do dezynfekcji skóry i rąk.
Połączenia kationowe związków powierzchniowo czynnych, tzw. detergenty, wykazują działanie bakteriostatyczne.
Najczęściej stosowanym w antyseptyce związkiem powierzchniowo czynnym jest chloro-heksydyna. Wykazuje ona silne działanie prze-ciwbakteryjne i przeciwgrzybicze. Hamuje aktywność polimerazy DNA, dzięki temu inak-tywuje wiele wirusów, w tym wirusa HIV. Jest ona składnikiem wielu preparatów złożonych. Roztwór alkoholowy (Manusan) służy do dezynfekcji skóry i rąk. Inne preparaty wykorzystywane są do dezynfekcji narzędzi, błon śluzowych, ran pooperacyjnych, zębodołów. Mogą również być wykorzystane w leczeniu ropnych zakażeń skóry (ropnie, trądzik).
Podobnie jak w przypadku innych związków ich roztwory wodne wykazują słabsze działanie niż roztwory alkoholowe. Czasami mogą powodować miejscowe działanie alergiczne.
Związki chloru
Związki zaliczane do tej grupy używane są raczej w dezynfekcji niż antyseptyce, choć czasami stosuje się chloraminy do odkażania skóry. Obecność substancji organicznej osłabia ich działanie, podobnie jak związków o działaniu utleniającym. Do związków chlorowych stosowanych w antyseptyce zalicza się N-chlo-rotaurynę, o aktywności przeciwbakteryjnej porównywalnej z chloraminą T. Jej aktywność ulega zwiększeniu w obecności substancji organicznej, jest bardzo dobrym antyseptykiem, praktyczne niedającym efektów ubocznych.
Środki utleniające
Do tej grupy związków można zaliczyć ozon, 3% nadtlenek wodoru (woda utleniona) do dezynfekcji skóry oraz 6-8% do dezynfekcji sprzętu, nadtlenokwasy, nadmanganian potasu. Związki te nie są skuteczne w stosunku do prątków gruźlicy i grzybów, choć bardzo sprawnie inaktywują wirusy.
Obecność substancji organicznych w polu działania środków utleniających prowadzi do ich szybkiej inaktywacji. Wykorzystywane są do
dezynfekcji powierzchni oraz bielizny, gdyż wywołują korozję przedmiotów metalowych.
Barwniki
Do tej grupy zalicza się znaną etakrydynę działającą głównie na bakterie Gram-dodatnie. Służy ona do odkażania błon śluzowych i skóry, a jej skuteczność jest większa w roztworach o zasadowym pH. Inną substancją jest fiolet goryczki (krystaliczny) działający zarówno w roztworach wodnych, jak i alkoholowych na bakterie Gram-dodatnie i niektóre grzyby. Służy do odkażania błon śluzowych, skóry i ran.
Oprócz wymienionych grup związków chemicznych, od dawna w różnych chorobach skóry stosuje się substancje pochodzenia naturalnego. Ich lecznicze czy antyseptyczne właściwości polegają na działaniu substancji aktywnej, np. fenolowych składników olejków eterycznych - eugenolu, tymolu, karwakrolu. Związki fenolowe wielu preparatów roślinnych wykazują działanie przeciwdrobno-ustrojowe, przeciwzapalne i ściągające. Do związków roślinnych wykorzystywanych w gabinetach kosmetycznych do odkażania, przeciwzapalnie i ściągająco należą: flawono-idy, kumaryny, benzochinony, terpeny, fenolokwasy, garbniki. Do najczęściej stosowanych ekstraktów o działaniu odkażającym i przeciwzapalnym należą: wyciąg z wiesiołka, arniki górskiej, ogórecznika, rumianku, tymianku, dziurawca, krwawnika, szałwi i borówki brusznicy, łopianu, brzozy, jemioły, kory dębu, wierzby, aloesu.
W kosmetologii właściwości antyseptyczne wielu związków roślinnych i syntetycznych wykorzystuje się do konserwacji kosmetyków. Spośród syntetycznych związków najczęściej stosuje się glikol propylenowy, fenole, kwasy organiczne, estry kwasu hydroksybenzoeso-wego (nipagina). Ze związków pochodzenia naturalnego, stanowiących ważny składnik wielu kremów, mydeł, toników, szamponów, past do zębów i innych preparatów, stosuje się szczególnie olejki eteryczne, m.in. tymiankowy, rozmarynowy, pieprzowy, sorbowy, kwas cytrynowy, anetol i kwas benzoesowy.
Inną możliwością, która powinna być wykorzystywana w gabinecie kosmetycznym, jest stosowanie ultradźwięków do czyszczenia elementów sprzętu zabiegowego. Należy jednak pamiętać, że może to być jedynie metoda wspomagająca, szczególnie do usuwania białka. Energia ultradźwięków jest przetwarzana w wannach wibracyjnych na energię cieplną. Oscylatory ultradźwiękowe, znajdujące się w dolnej części wanny, wprawiają wodę w ruch wirowy pod wpływem wibracji o intensywności 35 000 drgań/min. Dzięki temu tworzą się maleńkie pęcherzyki próżni niszczące zabrudzenia białkowe. Po wymyciu narzędzi ultradźwiękami należy poddać je sterylizacji.
PODSUMOWANIE
Aseptyka to wszelkie działania, które mają zapobiec zakażeniu powstałych w różnych okolicznościach ran.
Antyseptyka to działania, których celem jest usunięcie, zniszczenie bakterii czy innych mikroorganizmów z pola zabiegowego (skóry, ran, błon śluzowych).
Sterylizacja to proces niszczenia wszystkich drobnoustrojów, zarówno ich form wegetatywnych, jak i zarodników. W praktyce stosuje się sterylizację:
ciepłem wilgotnym (tzw. sterylizacja parowa),
suchym, gorącym powietrzem,
gazową, niskotemperaturową (zastosowanie tlenku etylenu i formaldehydu oraz nadtlenku wodoru i plazmy gazowej),
radiacyjną,
chemiczną.
Dezynfekcja to proces niszczenia lub usuwania form wegetatywnych drobnoustrojów do bezpiecznego dla człowieka poziomu. Metody dezynfekcji:
fizyczne,
termiczne,
nietermiczne,
chemiczno-termiczne,
chemiczne.
W metodzie chemicznej do dezynfekcji stosuje się różne grupy związków chemicznych:
alkohole,
aldehydy,
fenole,
środki utleniające,
chlorowce,
sole metali ciężkich,
barwniki,
środki powierzchniowo czynne.
Literatura:
1. E. Murawska-Ciałowicz, M. Zawadzki „Higiena. Podręcznik dla studentów wydziałów kosmetologii”, Górnicki Wydawnictwo medyczne, Wrocław 2005, str. 169-179.
7