110
1 |
2 |
2 |
2 |
3 |
2 |
2 |
21 | |
1 |
2 |
3 |
2,4 |
3 |
2 |
3 |
29 | |
1 |
3 |
0 |
1.6 |
3 |
3 |
0 |
24 | |
1 |
3 |
1 |
2 |
3 |
3 |
1 |
46 | |
1 |
3 |
2 |
2,4 |
3 |
3 |
2 |
110 | |
1 |
3 |
3 |
2,9 |
3 |
3 |
3 |
>110 |
Materiały:
!
1. Próby mleka Inokulowane szczepem wzorcowym E.coli |
2. Po 4 probówki z płynem do rozcieńczeń (po 9 ml) :
4. Probówki z podłożem LPB i rurkami Durhama i
5. Cieplarka ustawiona na 37°C i
S. Dermatograf
Wykonanie (patrz: Metoda NPL- zasada metody)
1. Przygotować kolejne rozcieńczenia dziesiętne badanych prób wody j Z Przenieść po 1 ml materiału nierozcieńczonego oraz po 1 ml z rozcieńczeń 101.10J i 10s do probówek z podłożem LPB. Posiew wykonać w 2 powtórzeniach Probówki oznakować posianymi rozcieńczeniami
3. Posiewy inkubować w 37°C/ 24-48 h
4. Odczytać wyniki posiewów; wynik dodatni = zmętnienie podłoża, gaz w rurkach, Durhama, zmiana barwy podłoża z fioletowej na żółtą
5. Wynik odczytu zanotować w tabeli 49
6. Potwierdzanie wyników; materiał z probówek z potencjalnie dodatnim wynikiem j (obserwowane wszystkie zmiany lub któraś z wymienionych zmian) przesiać do; pojedynczych kolonii na podtoże Endo, Posiewy inkubować w 37°C /24-4Bh
7. Typowe kolonie E.coli na podłożu Endo - ciemnoczerwone z takąż zmianą barwy j podtoża pod wzrostem, z metalicznym połyskiem lub różowe z ciemniejszym centrum j
8. Określić NPL bakterii z grupy coli w wodzie; wyniki zanotować w tabeli 49
Tabela 49
Odczyt NPL bakterii z grupy coli w wódzia
(Posiane ,i' rozcieńczenie |
Zmiany widoczne w podłożu LPB |
. Wynik- ; , ■■odczytu |
- •. Wynik potwierdzenia. . na podłożu Endo |
;NPL , •■E.coli w Im! ' | |||||||
zmęt nienie |
gaz |
barwa | |||||||||
1 |
2 |
1 |
2 |
1 |
2 |
1 |
2 |
1 |
2 | ||
W | |||||||||||
To3- | |||||||||||
10>' |
Rys. 24
Potwierdzenie na podłożu ENDO^