20120110405

94 WZROST, SUBSTANCJE WZROSTOWE

94 WZROST, SUBSTANCJE WZROSTOWE

\I Doświadczenie 78 Wpływ kinetyny na zawartość chlorofilu w odciętych liściach pszenicy

M: liście pszenicy

P: wirówka, spektrofotometr, szalki Petriego, pipety, porcelanowe moździerze

O: wodne roztwory kinetyny o stężeniu 1 i 10 mg/dm³,80% aceton,

1 N NaOH

Liście ucięte 2-3 dni przed rozpoczęciem doświadczenia wkładamy po 5 sztuk do 3 szalek Petriego. Do jednej wlewamy 25 cm³ wody destylowanej, do następnych po 25 cm³ roztworów kinetyny o stężeniach 1 i 10 mg/dm³ (kine-tynę rozpuszczamy w kropli 1 N NaOH i uzupełniamy wodą). Szalki pozostawiamy na 8-14 dni w następujących warunkach: 16 godz. ciemności (4-10'C) i 8 godz. światła (20-25‘C); takie warunki zapobiegają rozwojowi mikroorganizmów. Po tym czasie oznaczamy zawartość chlorofilu. Około 50 mg liści (zapisujemy dokładny ciężar) rozcieramy w moździerzu, dodajemy 5 cnr 80% acetonu, mieszamy i przelewamy do probówek wirówkowych. Po odwirowaniu (10 min przy 10 000 x g) supernatant przelewamy do szklanej probówki. W spektrofotometrze odczytujemy absorbancję światła o długości 652 nm. Zawartość chlorofilu w gramie tkanki obliczamy ze wzoru: mg chlorofilu/g tkanki = [(Ę552 • 1000): 34,5] • [V: (1000 • W)], gdzie V- objętość acetonu (cm³), W- ciężar liści (g).

Uwaga! Wszystkie naczynia używane przy ekstrakcji chlorofilu powinny być suche.    fr-ń    V«c s'3 W' f : TkXse> -n

M: nasiona pszenicy    .    vj

P: płytki Petriego, pipety

O: wodne roztwory kinetyny o stężeniu 10 i 100 mg/dm³

Wysiewamy po 20 nasion pszenicy na 3 płytki Petriego wyłożone krążkami bibuły. Do jednej płytki wiewamy 10 cm³ roztworu kinetyny o stężeniu 10 mg/dm³, do drugiej - o stężeniu 100 mg/dm³, a do trzeciej wodę destylowaną (kontrola). Po 3 dniach mierzymy długość korzeni. Kinetynę rozpuszczamy w sposób-opisany w (poświadczeniu 78.

Doświadczenie 79 Wpływ kinetyny na wzrost korzeni