Materiał,
Dwutygodniowe siewki pszenicy hodowane w' warunkach optymalnej temperatury i oświetlenia w hodowlach hydroponicznych lub w doniczkach z ziemią potraktowane 350 mM roztworem siarczanu kadmu lub 350 mM siarczanu miedzi.
Bezpośrednim materiałem do analizy są korzenie i liście siewek pobrane po 48 godzinach od traktowania. Materiał kontrolny stanowią te same części roślin uzyskane z roślin nie traktowanych związkami Cd lub Cu.
Statyw z 12 probówkami, 3 pipety o poj. 1 cm3, 2 pipety o poj. 1 cm3, 3 kolbki miarowe 100 cm3,
1 kolba miarowa 500 cmJ, zlewki szklane 1x50 cm3, 2x400 cm3, 1x600 cm3, cylindry miarowe o poj.
100 cm3 i 50 cm3, spektrofotometr, stoper, mieszadło magnetyczne, 1 pęseta. Komplet 4 kuwet szklanych do spektrofotometru.
A. 20 mM guajakol (metoksyfenol) (rozpuszczony w H2O)
B. 50 mM bufor octanowy pH 5,6 o.
C. 60 mM roztwór H202 c .
D. 50 mM bufor fosforanowy pH 7,0 z dodatkiem 1 M NaCl (bufor do homogenizacji)
Wykonanie oznaczenia aktywności peroksydaz Przygotowanie ekstraktu enzymatycznego.
Materiał roślinny:
2 gramy liści kolejno z roślin kontrolnych i traktowanych związkami Cd lub Cu.
2 gramy korzeni kolejno z roślin kontrolnych i traktowanych związkami Cd lub Cu.
Korzenie przed ważeniem delikatnie odmyć wodą destylowaną i osuszyć za pomocą bibuły. Przygotowane korzenie i liście homogenizować osobno w schłodzonych moździerzach w 10 cm3 buforu do homogenizacji. Po przeniesieniu homogenatów do probówek wirowniczych obmyć moździerz dodatkowo 5 cm3 buforu do homogenizacji i uzupełniając w probówce wirowniczej objętość do 15 cm\