plik


ÿþWrocBaw, 2014-09-23 PROGRAM WICZEC Z MIKROBIOLOGII DLA STUDENTÓW II ROKU WYDZIAAU LEKARSKIEGO W ROKU AKADEMICKIM 2014/2015 semestr zimowy wiczenia wiczeD z mikrobiologii odbywaj si w sali wiczeD Katedry i ZakBadu Mikrobiologii Uniwersytetu Medycznego we WrocBawiu WYKAAD: Wtorek 13.00  14.30 sala wykBadowa Czwartek 07.30  09.00 sala wykBadowa OGÓLNY PLAN WICZEC Z MIKROBIOLOGII semestr zimowy 2014-2015 Semestr zimowy 2014-2015 wiczenie 1. (3 godz.) 06.X  10.X. 2014 Morfologia bakterii. Metody barwienia. 10 tygodni x 3 godz. = 30 h Metody hodowli bakterii 1 tydzieD x 1 godz. = 1 h wiczenie 2. (3 godz.) 13.X  17.X. 2014 Ziarniaki Gram-dodatnie: gronkowce i paciorkowce Razem: 31 h wiczenie 3. (3 godz.) 20.X  24.X. 2014 Gram-ujemne paBeczki fermentujce niefermentujce oraz bezwzgldnie beztlenowe wiczenie 4. (3 godz.) 27.X  31.X. 2014 Corynebacterium, Bacillus, Clostridium, Actinomyces, Nocardia, Mycobacterium wiczenie 5. (3 godz.) 03.XI  07.XI. 2014 Bakterie spiralne Kolokwium I (1-4) wiczenie 6. (3 godz.) 17.XI  21.XI. 2014 Sterylizacja i dezynfekcja. Antybiotyki cz. I wiczenie 7. (3 godz.) 24.XI  28.XI. 2014 Antybiotyki cz. II. Mechanizmy oporno[ci wiczenie 8. (3 godz.) 01.XII  05.XII. 2014 Choroby przenoszone drog pBciow. wiczenie 9. (3 godz.) 08.XII  12.XII. 2014 Flora fizjologiczna. Zaka|enia górnych i dolnych dróg oddechowych wiczenie 10. (3 godz.) 15.XII  19.XII. 2014 Zaka|enia ukBadu moczowego wiczenie 11 (1 godz.) 05.I  09.I. 2015 Kolokwium II (5-10) - 1 - PoniedziaBek (I) 12.30  14.45 / 14a, 14b, 8a (II) 15.00  17.15 / 8b, 7a, 7b, 10a Wtorek (I) 14.30  16.45 / 3a, 3b, 4a (II) 16.45  19.00 / 12a, 12b, 4b Zroda (I) 14.45  17.00 / 13a, 13b, 10b Czwartek (I) 13.00  15.15 / 1a, 1b, 2a, 2b (II) 15.30  17.45 / 5a, 5b, 9a, 9b Pitek (I)14.00  16.15 / 11a, 11b, 6a, 6b SZCZEGÓAOWY PLAN WICZEC Z MIKROBIOLOGII semestr zimowy 2014-2015 WICZENIE 1 (06.X  10.X. 2014) TEMAT: MORFOLOGIA BAKTERII. METODY BARWIENIA. METODY HODOWLI BAKTERII Cz[ teoretyczna: f& Organizacja i dyscyplina pracy w czasie wiczeD z mikrobiologii. f& Typy mikroskopów u|ywanych na wiczeniach: [wietlny, z ciemnym polem widzenia, fluorescencyjny. f& Morfologia bakterii. f& Metody barwienia preparatów mikroskopowych: barwienie proste, zBo|one, pozytywne, negatywne, negatywno-pozytywne. f& Warunki hodowli bakterii tlenowych i beztlenowych in vitro. WpByw temperatury, pH, potencjaBu oksydacyjno-redukcyjnego, egzogennych zwizków pokarmowych (czynników wzrostowych). f& PodziaB podBo|y mikrobiologicznych (proste, wzbogacone, wybiórczo-ró|nicujce, ró|nicujce). Cz[ praktyczna: f& Opisywanie morfologii kolonii na wybranych podBo|ach. f& Sporzdzanie i ogldanie w mikroskopie [wietlnym preparatów z hodowli bakterii, barwienie metod Grama. f& Demonstracja gotowych preparatów z bakterii w mikroskopie [wietlnym, cpw. i fluorescencyjnym. f& Demonstracja podBo|y bakteriologicznych oraz wzrostu bakterii w podBo|u pBynnym i na podBo|ach staBych. WICZENIE 2 (13.X  17.X. 2014) TEMAT: ZIARNIAKI GRAM-DODATNIE: GRONKOWCE I PACIORKOWCE Cz[ teoretyczna: f& Charakterystyka i chorobotwórczo[ Staphylococcus aureus, S. epidermidis, S. saprophyticus. f& Charakterystyka i chorobotwórczo[ Streptococcus pyogenes, S. pneumoniae, S. z gr. orale, Enterococcus spp. Cz[ praktyczna: f& Demonstracja hodowli na agarze z krwi, opis morfologii kolonii, rodzaje hemolizy. f& Demonstracja gotowych preparatów z omawianych bakterii w mikroskopie [wietlnym. f& Testy identyfikacyjne dla gronkowców: wytwarzanie katalazy, CF (wykonanie), wra|liwo[ na nowobiocyn i furazolidon, test koagulazowy (demonstracja), ID32 Staph do odczytu. f& Testy identyfikacyjne dla paciorkowców: wra|liwo[ na bacytracyn i optochin, szereg biochemiczny dla enterokoków, wykrywanie antygenów grupowych (demonstracja), Api20Strep do odczytu. - 2 - WICZENIE 3 (20.X  24.X. 2014) TEMAT: GRAM-UJEMNE PAAECZKI FERMENTUJCE, NIEFERMENTUJCE oraz BEZWZGLDNIE BEZTLENOWE Cz[ teoretyczna: f& Charakterystyka i chorobotwórczo[ paBeczek rodziny Enterobacteriaceae: Salmonella, Shigella, Escherichia coli, Proteus, Klebsiella. f& Charakterystyka i chorobotwórczo[ paBeczek niefermentujacych: Pseudomonas aeruginosa, Acinetobacter baumannii, Stenotrophomonas maltophilia. f& Charakterystyka i chorobotwórczo[ Gram-ujemnych bakterii bezwzgldnie beztlenowych (Prevotella, Porphyromanas, Bacteroides, Fusobacterium). Cz[ praktyczna: f& Demonstracja hodowli bakterii na podBo|ach wybiórczych: Mac Conkey a i SS (Enterobacteriaceae) oraz na agarze zwykBym i Mac Conkey a (Pseudomonas i Acinetobacter). f& Demonstracja gotowych preparatów bakteryjnych w mikroskopie [wietlnym. f& Identyfikacja Gram-ujemnych paBeczek: odczyt testów ID32GN dla G(-) paBeczek. Test na wytwarzanie oksydazy i barwników dla G(-) paBeczek niefermentujcych. f& Demonstracja i identyfikacja Gram-ujemnych paBeczek bezwzgldnie beztlenowych: odczyt testów ID32A. WICZENIE 4 (27.X  31.X. 2014) TEMAT: Corynebacterium, Bacillus, Actinomyces, Nocardia, Mycobacteriun Cz[ teoretyczna: f& Charakterystyka i chorobotwórczo[ laseczek: Bacillus anthracis, Clostridium tetani, Cl. difficile, Cl. botulinum, Cl. perfringens. f& Charakterystyka i chorobotwórczo[ maczugowców  Corynebacterium diphtheriae. f& Szczepionka DPT (diphtheria, pertussis, tetanus). f& PodziaB taksonomiczny prtków f& Charakterystyka i chorobotwórczo[ Mycobacterium tuberculosis oraz mykobakterii MOTT. f& Postacie kliniczne gruzlicy, diagnostyka, szczepienia (BCG), próby tuberkulinowe f& Odporno[ [ródzakazna  fenomen Kocha f& Charakterystyka i chorobotwórczo[ Actinomyces spp. i Nocardia spp. Cz[ praktyczna: f& Demonstracja hodowli i gotowych preparatów: Bacillus, Clostridium Corynebacterium. f& Testy identyfikacyjne maczugowców (ApiCoryne). f& Ogldanie preparatów plwociny od chorego prtkujcego barwionych metod Ziehl-Neelsena (czynnik wizkowy  cord factor). f& Oznaczanie wra|liwo[ci prtków na tuberkulostatyki. f& Demonstracja hodowli i gotowych preparatów Actinomyces spp. i Nocardia spp. WICZENIE 5 (03.XI  07.XI. 2014) TEMAT: BAKTERIE SPIRALNE. KOLOKWIUM I (z wiczeD 1-4) Cz[ teoretyczna: f& Charakterystyka i chorobotwórczo[ Treponema pallidum, Leptospira, Borrelia recurrentis, B. burgdorferi, Campylobacter jejuni, Helicobacter pylori. Cz[ praktyczna: f& Demonstracja hodowli Campylobacter i Helicobacter. - 3 - f& Demonstracja bezpo[redniego preparatu z bioptatu z H. pylori. f& Demonstracja preparatu srebrzonego z Treponema pallidum. f& Demonstracja Leptospira w mikroskopie z ciemnym polem widzenia. f& Demonstracja bezpo[redniego rozmazu krwi z B. recurrentis. f& Ogldanie gotowych preparatów z Campylobacter i Helicobacter. WICZENIE 6 (17.XI  21.XI. 2014) TEMAT: STERYLIZACJA i DEZYNFEKCJA. ANTYBIOTYKI cz[ I STERYLIZACJA i DEZYNFEKCJA Cz[ teoretyczna: f& Omówienie metod sterylizacji i dezynfekcji oraz preparatów stosowanych w antyseptyce. Cz[ praktyczna: f& Ocena skuteczno[ci higienicznego mycia rk (mycie + jednokrotna dezynfekcja) - jedna pBytka agarowa dla studenta. ANTYBIOTYKI Cz[ teoretyczna: " Charakterystyka najwa|niejszych grup antybiotyków (mechanizm i sposób dziaBania, spektrum przeciwbakteryjne, mechanizm(y) oporno[ci, farmakokinetyka): ²-laktamy, aminoglikozydy, makrolidy i ketolidy, linkozamidy, glikopeptydy, tetracykliny, tigecyklina, polimyksyny, oksazolidynony, fluorochinolony, sulfonamidy. " Metody oznaczania wra|liwo[ci bakterii i grzybów na antybiotyki: - metoda kr|kowo-dyfuzyjna (omówienie) - metoda seryjnych rozcieDczeD w podBo|u bulionowym MH  oznaczanie MIC i MBC (demonstracja) - oznaczanie MIC metod E-testu (demonstracja) - metoda rozcieDczenia leku w po|ywce Loewensteina-Jensena dla prtków gruzlicy (demonstracja ) Cz[ praktyczna: Wykonanie antybiogramu metod kr|kowo-dyfuzyjn dla wybranych szczepów bakterii: " Staphylococcus aureus MRSA z ropy " Pseudomonas aeruginosa MBL(+) z ropy " Klebsiella pneumoniae ESBL(+) z plwociny - zapalenie pBuc WICZENIE 7 (24.XI  28.XI. 2014) TEMAT: ANTYBIOTYKI cz[ II. MECHANIZMY OPORNOZCI Cz[ teoretyczna: Omówienie wybranych mechanizmów oporno[ci bakterii na antybiotyki: MRS, MLSB, VISA, VRSA, HLAR, VRE, MBL, ESBL, KPC Cz[ praktyczna: Odczyt i interpretacja antybiogramów z poprzedniego wiczenia. Odczyt antybiogramów przygotowanych metod ATB dla ró|nych szczepów bakterii. Wykonanie testu z cefinaz  wykrywanie beta-laktamaz u Moraxella. Demonstracja antybiogramu Enterococcus faecalis HLAR z krwi (zapalenie wsierdzia) Demonstracja antybiogramu Enterococcus faecalis VRE  E test Demonstracja testu do wykrywania MBLB Demonstracja E-testu do wykrywania ESBL Demonstracja E-testu do wykrywania MBL Demonstracja testu do wykrywania KPC Nosicielstwo S. aureus  antybiogram - 4 - WICZENIE 8 (01.XII  05.XII. 2014) TEMAT: CHOROBY PRZENOSZONE DROG PACIOW Cz[ teoretyczna " Omówienie zaka|eD przenoszonych drog pBciow oraz czynników etiologicznych STD. Cz[ praktyczna  wiczenie demonstracyjne " Diagnostyka kiBy: - USR i TPHA do odczytu i interpretacji - FTA-ABS i ELISA do omówienia - preparat srebrzony z tkanki mózgowej " Diagnostyka rze|czki (GU): - hodowla gonokoków na podBo|u Roiron - wykonanie testu na oksydaz - demonstracja preparatu z ropy rze|czkowej - omówienie testu przesiewowego Gonoline Duo 2 " Diagnostyka rzsistkowicy: - demonstracja preparatu z Trichomonas vaginalis (Giemsa) " Diagnostyka NGU: - hodowla Mycoplasma hominis - Mycoplasma IST-test do odczytu i interpretacji - Chlamydia trachomatis (zaka|ona linia komórkowa Mc Coy a - zdjcie) " Diagnostyka grzybicy dróg rodnych. Opracowanie materiaBów diagnostycznych do nastpnego wiczenia: ZAKA{ENIA GÓRNYCH I DOLNYCH DRÓG ODDECHOWYCH 1. wymaz z gardBa (podejrzenie anginy paciorkowcowej) 2. plwocina (zapalenie pBuc, pacjent ambulatoryjny) 3. wydzielina z drzewa oskrzelowego + krew (pacjent hospitalizowany  OIOM) WICZENIE 9 (08.XII  12.XII. 2014) TEMAT: FLORA FIZJOLOGICZNA. ZAKA{ENIA GÓRNYCH I DOLNYCH DRÓG ODDECHOWYCH Cz[ teoretyczna: f& Omówienie roli flory endogennej czBowieka. f& Omówienie postaci klinicznych oraz etiologii zaka|eD górnych i dolnych dróg oddechowych. f& Schemat badania mikrobiologicznego. Pobieranie i przesyBanie próbek do badania. Cz[ praktyczna: f& Odczyt posiewów próbek z zaka|eD dróg oddechowych: wymaz z gardBa (angina paciorkowcowa) preparat mikroskopowy barwiony, metod Grama (wykonanie), test wra|liwo[ci na bacytracyn (demonstracja). Test do wykrywania Ag S. pyogenes plwocina (zapalenie pBuc, pacjent pozaszpitalny)  preparat mikroskopowy barwiony metod Grama (wykonanie), test z optochin (demonstracja), antybiogram. wydzielina z drzewa oskrzekowego + krew (pacjent hospitalizowany  OIOM) preparat mikroskopowy barwiony metod Grama (wykonanie), odczyt testu ID32GN, antybiogram. f& Demonstracja hodowli wybranych patogenów górnych dróg oddechowych: Staphylococcus aureus, Corynebacterium diphtheriae. Demonstracja bezpo[redniego z wymazu z gardBa chorego na angin Plauta-Vincenta. - 5 - Opracowanie materiaBów diagnostycznych do nastpnego wiczenia: ZAKA{ENIA UKAADU MOCZOWEGO MateriaB 1 (mocz)  Posiew ilo[ciowy na: AK, MC i podBo|e Sabourauda. MateriaB 2 (mocz)  Posiew ilo[ciowy na: AK, MC i podBo|e Sabourauda. MateriaB 3 (mocz) - Posiew ilo[ciowy na: AK, MC i podBo|e Sabourauda. WICZENIE 10 (15.XII  19.XII. 2014) TEMAT: ZAKA{ENIA UKAADU MOCZOWEGO Cz[ teoretyczna: " Omówienie czynników etiologicznych zaka|eD ukBadu moczowego. Schemat badania mikrobiologicznego moczu. Pobieranie i przesyBanie materiaBów diagnostycznych do badania. Cz[ praktyczna: " Odczyt posiewów materiaBów diagnostycznych: Identyfikacja do materiaBu 1- test ID32GN, interpretacja antybiogramu, Identyfikacja do materiaBu 2 - preparat barwiony metod Grama, odczyt testu biochemicznego (krótki szereg dla paciorkowców grupy D, interpretacja antybiogramu, Identyfikacja do materiaBu 3 - test ID32GN, interpretacja antybiogramu, DEMONSTRACJE: demonstracja hodowli wybranych patogenów ukBadu moczowego: E. coli, Klebsiella spp., Proteus spp., Staphylococcus epidermidis, S. saprophyticus, S. aureus, Enterococcus faecalis, Candida albicans. demonstracja testu Golda  wynik dodatni i ujemny. demonstracja wyniku posiewu moczu zanieczyszczonego  4 szczepy: paBeczki lac(+) i lac(-), Enterococcus, Staphylococcus. demonstracja gotowych preparatów ww. patogenów w mikroskopie [wietlnym. demonstracja gotowych zestawów do póBilo[ciowego posiewu moczu: Uriline, Uricult. WICZENIE 11 (05.I  09.I. 2015) !!! wiczenie 45-minutowe TEMAT: KOLOKWIUM II (z wiczeD 5-10) WrocBaw, 2014-09-23 Kierownik Katedry i ZakBadu Mikrobiologii Prof. dr hab. Gra|yna Go[ciniak - 6 - PROGRAM WICZEC Z MIKROBIOLOGII DLA STUDENTÓW II ROKU WYDZIAAU LEKARSKIEGO W ROKU AKADEMICKIM 2014/2015 semestr letni OGÓLNY PLAN WICZEC Z MIKROBIOLOGII semestr letni 2014-2015 Semestr letni 2014-2015 wiczenie 12. Podstawy diagnostyki 16.II  20.II. 2015 chorób wirusowych. w. 2 godz. wiczenie 13. Podstawy diagnostyki 23.II  27.II. 2015 7 tygodni x 2 godz. = 14 h chorób grzybiczych. Razem: 14 h wiczenie 14. Zaka|enia przewodu 02.III  06.III. 2015 pokarmowego. wiczenie 15. Zaka|enia skóry i 09.III  13.III. 2015 tkanek mikkich. Kolokwium III (12-14) wiczenie 16. Zaka|enia 16.III  20.III. 2015 o[rodkowego ukBadu nerwowego wiczenie 17. Zaka|enia 23.III  27.III. 2015 ogólnoustrojowe (sepsa) Kolokwium IV (15-17) wiczenie 18. Egzamin praktyczny 20.IV  24.IV. 2015 SZCZEGÓAOWY PLAN WICZEC Z MIKROBIOLOGII semestr letni 2014-2015 WICZENIE 12 (16.II  20.II. 2015) TEMAT: PODSTAWY DIAGNOSTYKI ZAKA{EC WIRUSOWYCH Cz[ teoretyczna f& Pobieranie i przesyBanie materiaBów do badaD wirusologicznych. f& Metody hodowli wirusów. f& Odczyny serologiczne w diagnostyce chorób wirusowych. Cz[ praktyczna f& Demonstracja zaka|onych wirusami linii komórkowych ( efekt cytopatyczny). f& Demonstracja hodowli wirusów bakteryjnych (Bysinki). f& Demonstracja odczynu Hirsta ( miareczkowanie wirusa) i Hirsta-Salka. f& Demonstracja odczynu ELISA. WICZENIE 13 (23.II  27.II. 2015) TEMAT: PODSTAWY DIAGNOSTYKI CHORÓB GRZYBICZYCH. Cz[ teoretyczna: f& Omówienie najcz[ciej wystpujcych przypadków grzybic miejscowych i ukBadowych oraz czynników etiologicznych (Candida, Cryptococcus, Aspergillus). - 7 - f& Omówienie pobierania, przesyBania i zasad hodowli grzybów chorobotwórczych. f& Charakterystyka najwa|niejszych grup leków przeciwgrzybicznych: polieny (nystatyna, natamycyna, amfoteryczna B), imidazole, triazole, antymetabolity (5-fluorocytozyna), echinokandyny. Cz[ praktyczna: " Identyfikacja grzybów dro|d|opodobnych: - obserwacja morfologii hodowli na podBo|u Sabourauda i Chromagar Candida, - obserwacja blastospor i artrospor w preparatach barwionych metod Grama, - odczyt testu filamentacji (wykonanie preparatów natywnych), - obserwacja charakterystycznych struktur (chlamydospor) w mikrohodowli, - odczyt testu ID 32 C. " Grzyby ple[niowe i dermatofity: - obserwacja morfologii hodowli Aspergillus i Penicillium na podBo|u Czapka, - obserwacja gotowych preparatów dermatofitów w laktofenolu (Trichophyton, Epidermophyton, Microsporum). " Oznaczanie wra|liwo[ci grzybów metod Fungi-Test (demonstracja) Opracowanie materiaBów diagnostycznych do nastpnego wiczenia: ZAKA{ENIA PRZEWODU POKARMOWEGO Posiew wymazów z odbytu od trzech pacjentów na podBo|a wybiórcze: MC, SS i SF. MateriaB 1, MateriaB 2, MateriaB 3 WICZENIE 14 (02.III  06.III. 2015) TEMAT: ZAKA{ENIA PRZEWODU POKARMOWEGO Cz[ teoretyczna: " Omówienie czynników etiologicznych zaka|eD przewodu pokarmowego. Schemat badania mikrobiologicznego kaBu. Pobieranie i przesyBanie materiaBów diagnostycznych do badania. Cz[ praktyczna: Odczyt posiewów materiaBów diagnostycznych: " identyfikacja Salmonella: test ID32GN, demonstracja typowania serologicznego Salmonella metod aglutynacji szkieBkowej. " identyfikacja Shigella: test ID32GN, demonstracja typowania serologicznego Shigella metod aglutynacji szkieBkowej. " identyfikacja E. coli: test ID32GN, demonstracja typowania serologicznego EPEC metod aglutynacji szkieBkowej. DEMONSTRACJE: demonstracja hodowli wybranych patogenów ukBadu pokarmowego: Salmonella spp., Shigella spp., Escherichia coli, Yersinia enterocolitica, Campylobacter jejuni. demonstracja gotowych preparatów ww. patogenów w mikroskopie [wietlnym. demonstracja testu do wykrywania rotawirusów i adenowirusów w kale: Rota-Adeno Kit. demonstracja odczynu Widala Opracowanie materiaBów diagnostycznych do nastpnego wiczenia: ZAKA{ENIA SKÓRY i TKANEK MIKKICH . MateriaB 1. Pacjent z ropniem podprzeponowym, 2 wymazy: preparat bezpo[redni, posiew na podBo|a: AK, MC, agar Schaedlera z krwi i pBynne podBo|e tioglikolanowe. MateriaB 2. Pacjent z czyrakiem mnogim, 2 wymazy: preparat bezpo[redni, posiew na podBo|a: AK, MC, agar Schaedlera z krwi i pBynne podBo|e tioglikolanowe. MateriaB 3. Pacjent z ran po oparzeniu, 1 wymaz: posiew na podBo|a: AK, MC, bulion cukrowy. - 8 - WICZENIE 15 (09.III  13.III. 2015) TEMAT: ZAKA{ENIA SKÓRY i TKANEK MIKKICH. KOLOKWIUM III (12-14) Cz[ teoretyczna " Omówienie czynników etiologicznych zaka|eD skóry i tkanek mikkich. Schemat badania mikrobiologicznego ropy. Pobieranie i przesyBanie próbek do badania. Cz[ praktyczna " Odczyt posiewów próbek ze zmian ropnych, identyfikacja szczepów, interpretacja antybiogramów. - identyfikacja Bacteroides  odczyt testu api 20A. - identyfikacja E. coli: ID32GN. - identyfikacja Staphylococcus: preparat z hodowli barwiony metod Grama, wykonanie testu na katalaz, demonstracja testu na obecno[ koagulazy, odczyt testu ID32Staph. - identyfikacja Pseudomonas aeruginosa: test na oksydaz, odczyt testu ID32GN. - odczyt i interpretacja antybiogramów przygotowanych dla wyhodowanych szczepów. " Demonstracja hodowli wybranych patogenów zaka|eD skóry i tkanek mikkich: Escherichia coli, Pseudomonas aeruginosa, Staphylococcus aureus, Bacteroides fragilis. " Demonstracja gotowych preparatów ww. patogenów w mikroskopie [wietlnym. Opracowanie materiaBów diagnostycznych do nastpnego wiczenia: ZAKA{ENIA ÓZRODKOWEGO UKAADU NERWOWEGO. MateriaB 1. Pacjent z zapaleniem opon mózgowo-rdzeniowych: a) pByn mózgowo-rdzeniowy na podBo|u transportowo-wzrostowym Meningomedium po 24 godz. inkubacji; aseptyczny posiew na podBo|a: TSA z krwi, MC, Casmana b) próbka pBynu mózgowo-rdzeniowego w jaBowej probówce: preparat bezpo[redni barwiony metod Grama (wykonanie), testy koaglutynacji lateksowej wykrywajce antygeny bakteryjne (demonstracja), c) krew na podBo|u transportowo-wzrostowym po 24 godz. inkubacji: aseptyczny posiew na podBo|a: TSA, MC, Casmana, MateriaB 2. Pacjent z zapaleniem opon mózgowo-rdzeniowych: pByn mózgowo-rdzeniowy i krew  jak wy|ej WICZENIE 16 (16.III  20.III. 2015) TEMAT: ZAKA{ENIA OZRODKOWEGO UKAADU NERWOWEGO Cz[ teoretyczna " Omówienie czynników etiologicznych zaka|eD CUN. Schemat badania mikrobiologicznego pBynu mózgowo-rdzeniowego. Pobieranie i przesyBanie próbek do badania. Cz[ praktyczna " Odczyt posiewów próbek krwi i pBynu mózgowo-rdzeniowego oraz interpretacja antybiogramów: identyfikacja Neisseria meningitidis: preparat mikroskopowy barwiony metod Grama i test na oksydaz (wykonanie). Odczyt testu API NH identyfikacja Streptococcus pneumoniae: preparat mikroskopowy barwiony metod Grama, identyfikacja: test wra|liwo[ci na optochin, odczyt testu API 20 Strep. odczyt przygotowanych antybiogramów dla: Streptococcus pneumoniae Demonstracja hodowli wybranych patogenów zaka|eD centralnego ukBadu nerwowego: Neisseria meningitidis, Streptococcus agalactiae, Escherichia coli, Haemophilus influenzae (ró|nicowanie Casman + BX, demonstracja testu API NH), Candida albicans " Demonstracja gotowych preparatów z w/w drobnoustrojów w mikroskopie [wietlnym. - 9 - Opracowanie materiaBów diagnostycznych do nastpnego wiczenia: ZAKA{ENIA OGÓLNOUSTROJOWE (SEPSA). MateriaB 1. Pacjent z zapaleniem wsierdzia: krew na podBo|u transportowo-wzrostowym po 24 godz. inkubacji; aseptyczny posiew na podBo|a AK i MC MateriaB 2. Pacjent z seps: krew na podBo|u transportowo-wzrostowym po 24 godz. inkubacji, aseptyczny posiew na podBo|a AK i MC. MateriaB 3. Pacjent z zaka|eniem odcewnikowym krwi: krew na podBo|u transportowo-wzrostowym po 24 godz. inkubacji, aseptyczny posiew na podBo|a AK i MC. WICZENIE 17 (23.III  27.III. 2015) TEMAT: ZAKA{ENIA OGÓLNOUSTROJOWE (SEPSA) KOLOKWIUM IV (15-17) Cz[ teoretyczna " Omówienie czynników etiologicznych zaka|eD ogólnoustrojowych. Schemat badania mikrobiologicznego krwi. Pobieranie i przesyBanie próbek do badania. Cz[ praktyczna " Odczyt posiewów próbek krwi oraz interpretacja antybiogramów. - identyfikacja Streptococcus salivarius: preparat mikroskopowy barwiony metod Grama, identyfikacja: test wra|liwo[ci na optochin, API 20 Strep (demonstracja). - identyfikacja Klebsiella pneumoniae: odczyt testu ID32GN. - identyfikacja Staphylococcus epidermidis odczyt testu ID32Staph. - odczyt przygotowanych antybiogramów dla: Streptococcus salivarius, K. pneumoniae, S. epidermidis " Demonstracja hodowli wybranych patogenów zaka|eD ogólnoustrojowych: Streptococcus agalactiae, Streptococcus salivarius, Staphylococcus epidermidis, Escherichia coli, Enterobacter cloacae, Candida albicans " Demonstracja gotowych preparatów z w/w drobnoustrojów w mikroskopie [wietlnym. " Demonstracja podBo|y transportowo-namna|ajcych do posiewu pBynów ustrojowych. " Demonstracja aparatu Bact Alert do hodowli próbek pBynów ustrojowych. WICZENIE 18 (20.IV  24.IV. 2015) TEMAT: EGZAMIN PRAKTYCZNY UWAGA: MateriaBy teoretyczne do wiczeD diagnostycznych znajduj si na stronie internetowej Katedry: www.umed.wro.pl/mikrobiologia WrocBaw, 2014-09-23 Kierownik Katedry i ZakBadu Mikrobiologii Prof. dr hab. Gra|yna Go[ciniak - 10 -

Wyszukiwarka

Podobne podstrony:
mikrobiologia Cwiczenia
mikrobiol ćwiczenia
Ćwiczenia z Mikrobiologii dla Biotechnologii
cwiczenia mikrobiologia weterynaryjna
Ćwiczenia z mikrobiologii dla biotechnologów
ZARZÄ„DZANIE FINANSAMI cwiczenia zadania rozwiazaneE
zestawy cwiczen przygotowane na podstawie programu Mistrz Klawia 6
menu cwiczenia14
ćwiczenie5 tabele
Instrukcja do cwiczenia 4 Pomiary oscyloskopowe
Filozofia religii cwiczenia dokladne notatki z zajec (2012 2013) [od Agi]

więcej podobnych podstron