plik


ÿþPOLITECHNIKA ZLSKA WYDZIAA CHEMICZNY KATEDRA CHEMII ORGANICZNEJ, BIOORGANICZNEJ KATEDRA CHEMII ORGANICZNEJ, BIOORGANICZNEJ I BIOTECHNOLOGII I BIOTECHNOLOGII WICZENIE 4 Oznaczanie masy czsteczkowej biaBek metod filtracji |elowej Laboratorium z Chemii Zwizków Naturalnych Miejsce wiczenia: sala 102 Prowadzcy: dr in|. Ilona WANDZIK Opracowanie: dr in|. Ilona WANDZIK wiczenie 4. Oznaczanie masy czsteczkowej biaBek metod filtracji |elowej 2/11 1. Cel wiczenia Celem wiczenia jest oznaczenie masy czsteczkowej ±-amylazy metod filtracji |elowej. wiczenie skBada si z dwóch zasadniczych cz[ci: " wykalibrowania kolumny Sephadex G-75 za pomoc makroczsteczek o znanej masie czsteczkowej (bBkit dekstranowy, hemoglobina, witamina B-12, cytochrom C). " u|ycie wykalibrowanej kolumny do oznaczenia masy czsteczkowej wybranego biaBka. 2. Wstp teoretyczny Polipeptydy i biaBka Polipeptydy i biaBka s polimerami wielkoczsteczkowymi zBo|onymi z ±-aminokwasów. Pojedyncze czsteczki ±-aminokwasów poBczone s ze sob wizaniami amidowymi (peptydowymi). Wizanie peptydowe powstaje w ten sposób, |e grupa aminowa jednego aminokwasu Bczy si z grup karboksylow drugiego z wydzieleniem czsteczki wody. H O H O H O H O N CH C N CH C N CH C N CH C R R' R" R Liczb powizanych aminokwasów (dBugo[ BaDcucha) mo|na z pewnym przybli|eniem okre[li przez oznaczenie masy czsteczkowej biaBka. Przyjmuje si, |e [rednia masa czsteczkowa aminokwasu wynosi 115 Da. Polimery aminokwasów o masie czsteczkowej do 10 000 s zaliczane do polipeptydów, natomiast polimery o masie czsteczkowej przekraczajcej t warto[ zalicza si do biaBek. Mas czsteczkow biaBek i innych makroczsteczek poza metod spektrometrii masowej mo|na oznaczy m. in.: metod sedymentacji w ultrawirowaniu, metod elektroforezy lub filtracji |elowej. Masy czsteczkowe biaBek wahaj si w granicach od ok. 11,5 kDa do wielu milionów Daltonów. PrzykBadowe masy czsteczkowe biaBek najcz[ciej stosowanych jako markery masy czsteczkowej przedstawia Tabela 1. Tabela 1. Masy czsteczkowe biaBek  markerów. BiaBko Masa czsteczkowa (Da) 14 200 ±-lactalbumin z mleka krowiego Lizozym z jaja kurzego 14 300 Mioglobina 15 000 Inhibitor trypsyny z soi 20 100 Anhydraza wglanowa 29 000 Albumina jaja kurzego 45 000 53 000 ±-amylaza z Bacillus species Hemoglobina 68 000 Albumina surowicy woBowej 67 000 Fosforylaza B z mi[ni królika 94 000 116 000 ²-galaktozydaza z Escherichia coli Miozyna z mi[ni królika 205 000 Blue Dextran 2 000 000 Cytochrom C 12 400 Witamina B-12 1 355 BBkit tymolowy 483 wiczenie 4. Oznaczanie masy czsteczkowej biaBek metod filtracji |elowej 3/11 Istnieje kilka sposobów klasyfikacji biaBek, z których najbardziej rozpowszechniony dzieli biaBka ze wzgldu na budow na biaBka proste i zBo|one. BiaBka proste zbudowane s z BaDcuchów polipeptydowych, które po hydrolizie daj wyBcznie aminokwasy lub ich pochodne. BiaBka zBo|one skBadaj si z czsteczki biaBka prostego poBczonego z inn, niebiaBkow czsteczk, zwykle organiczn (tzw. grup prostetyczn) z udziaBem wizaD kowalencyjnych, jonowych i koordynacyjnych. Ze wzgldu na ksztaBt czsteczki, wyró|nia si biaBka wBókniste (fibrylarne) i kBbuszkowe (globularne). BiaBka fibrylarne s podstawowymi elementami budowy tkanek zwierzcych, charakteryzuj si znaczn asymetri czsteczek, tj. du|ym stosunkiem dBugo[ci osi dBugiej do krótkiej. BiaBkami globularnymi s enzymy, przeciwciaBa i niektóre hormony. BiaBka globularne maj ksztaBt eliptyczny i zazwyczaj dobrze rozpuszczaj si w wodzie. BiaBka mo|na oczyszcza w formie aktywnej wykorzystujc ich wBa[ciwo[ci fizykochemiczne, takie jak: " wielko[, " Badunek, " rozpuszczalno[, " specyficzne powinowactwo wizania do innych czsteczek. Technik wykorzystywan do rozdziaBu makroczsteczek jest chromatografia. GBównie stosowane typy chromatografii to: " filtracja |elowa; rozdziaB nastpuje z uwagi na rozmiar czsteczek, " chromatografia jonowymienna; wykorzystuje si ró|nice w Badunku wypadkowym odmiennych czsteczek biaBkowych " chromatografia powinowactwa; wykorzystuje si powinowactwo biaBek do specyficznych grup chemicznych, " wysokoci[nieniowa chromatografia cieczowa; usprawnia wcze[niej wymienione metody chromatograficzne. Przedmiotem wiczenia jest oznaczanie masy czsteczkowej MCZ biaBek metod filtracji |elowej, dlatego tylko ta technika zostanie omówiona w instrukcji. Chromatografia metod filtracji |elowej. Filtracja |elowa, inaczej chromatografia rozmiarów wykluczajcych jest technik majc zastosowanie preparatywne do oczyszczania biaBek lub innych makroczsteczek. Ponadto za pomoc filtracji |elowej mo|na oznacza mas czsteczkow biaBek i innych biopolimerów. W filtracji |elowej: " Kryterium rozdziaBu makroczsteczek jest ich wielko[. " Wiksze czsteczki wymywane s z kolumny jako pierwsze. " Mniejsze czsteczki wymywane s z kolumny jako ostatnie. Dlaczego makroczsteczki o ró|nych MCZ wymywane s z ró|n szybko[ci? Zasada separacji przedstawiona na Rysunku 1 oparta jest na wykorzystaniu porowato[ci wypeBnienia kolumny. WypeBnienie takie zawiera liczne mikroskopijne kanaliki lub pory o powtarzalnej wielko[ci. Po naniesieniu na kolumn rozdzielanych substancji, nastpuje wymywanie poszczególnych skBadników mieszaniny za pomoc buforu wymywajcego. Wzgldnie maBe czsteczki mog przemieszcza si pomidzy ziarnami zBo|a lub wnika do wiczenie 4. Oznaczanie masy czsteczkowej biaBek metod filtracji |elowej 4/11 wewntrz porów. Z kolei wiksze czsteczki mog tylko przemieszcza si pomidzy ziarnami zBo|a. Je[li jaka[ czsteczka wniknie w gBb pora jej przemieszczanie w dóB kolumny zostaje spowolnione, gdy| przepByw buforu wymywajcego wewntrz ziaren jest du|o wolniejszy ni| na zewntrz. A zatem czsteczki znajdujce si w mieszaninie ulegaj podziaBowi pomidzy fazy VO (poza ziarnami zBo|a) i VI (wewntrz ziaren zBo|a, w porach |elu). Próbka biaBka Ziarno zBo|a MaBe czsteczki zatrzymywane s w porach ziaren MaBe czsteczki wymywane jako ostatnie Du|e czsteczki wymywane jako pierwsze Rysunek 1. Chromatografia na drodze filtracji |elowej Podstawowe oznaczenia: VE Objto[ elucji VO Objto[ swobodna (martwa), czyli objto[ cieczy zalegajcej midzy ziarenkami |elu VT Objto[ caBkowita VM Objto[ samego |elu VI Objto[ wewntrzna, objto[ cieczy zawartej w porach |elu Eluent  rozpuszczalnik stosowany do wymywania (elucji) skBadników mieszaniny z kolumny chromatograficznej Eluat - roztwór wypBywajcy z kolumny chromatograficznej, eluent wraz z rozpuszczonymi w nim skBadnikami rozdzielanej chromatograficznie mieszaniny. Objto[ cieczy poza zBo|em nazywana jest objto[ci swobodn i oznaczana VO. Objto[ swobodn VO mo|na wyznaczy przepuszczajc przez kolumn substancj barwn o bardzo du|ej masie czsteczkowej, która w ogóle nie wniknie do porów. Najcz[ciej stosuje si bBkit dekstranowy, polisacharyd o masie czsteczkowej rzdu 2*106 Da. Mierzy si ilo[ wycieku od chwili naniesienia próbki do momentu jej wyj[cia z kolumny. Z kolei VI mo|na wyznaczy, przepuszczajc przez kolumn substancj barwn o bardzo maBej masie czsteczkowej. CaBkowit objto[ utworzonego wypeBnienia mo|na okre[li wzorem: VT = VO + VI + VM gdzie VM oznacza objto[ samego |elu, któr jako znacznie mniejsz od pozostaBych pomija si. wiczenie 4. Oznaczanie masy czsteczkowej biaBek metod filtracji |elowej 5/11 Wyznaczanie objto[ci elucji VE skBadników mieszaniny Zazwyczaj wyciek z kolumny zbierany jest w postaci frakcji o okre[lonej objto[ci. W wikszo[ci przypadków wymywane makroczsteczki nie s barwne, a zatem zachodzi konieczno[ oznaczenia, które frakcje zawieraj biaBko i w jakiej ilo[ci. Oznaczenia takiego nale|y dokona za pomoc innych technik, jak np. analiza spektrofotometryczna frakcji, elektroforeza w warunkach denaturujcych lub pomiar aktywno[ci enzymatycznej poszczególnych frakcji (gdy oznaczane biaBko jest enzymem i znany jest jego substrat). W przypadku substancji barwnych jako VE mo|na przyj [rodkow warto[ objto[ci pomidzy pierwsz i ostatni zebran kropl barwnego wycieku z kolumny. Oznaczone st|enia makroczsteczek przedstawia si w funkcji objto[ci elucji (Rysunek 2) St|enie VE Rysunek 2. St|enie poszczególnych skBadników w funkcji objto[ci elucji Podczas filtracji próbki zBo|onej z kilku skBadników o zró|nicowanych wielko[ciach, du|e czsteczki bd sporadycznie wnikaBy do porów, ale zostan wymyte z kolumny pózniej w stosunku do bBkitu dekstranowego. Z kolei maBe czsteczki, które bd regularnie wnikaBy do porów |elu opuszcz kolumn jako ostatnie. Im mniejsza czsteczka tym Batwiej bdzie zatrzymywana na |elu. A zatem rozmiar czsteczek decyduje o objto[ci elucji danej substancji VE . Rozmiar geometryczny czsteczki skorelowany jest z mas czsteczkow. Do[wiadczalnie wyznaczono zale|no[ masy czsteczkowej w funkcji objto[ci elucji VE. W pewnym zakresie mas czsteczkowych otrzymuje si wykres liniowy: logMCZ = a + b*VE/VO 7 6 5 4 3 2 1 0 0510 15 20 25 30 wzgldna objto[ elucji Ve/Vo Rysunek 3. Zale|no[ masy czsteczkowej od objto[ci elucji log Mcz wiczenie 4. Oznaczanie masy czsteczkowej biaBek metod filtracji |elowej 6/11 Objto[ elucji jest odwrotnie proporcjonalna do logarytmu z MCZ. Mo|na sporzdzi krzyw wzorcow dla biaBek o znanej masie czsteczkowej  markerów, a nastpnie po wyznaczeniu wspóBczynników a i b charakterystycznych dla danego wypeBnienia wyznaczy mas czsteczkow nieznanego biaBka (Rysunek 3). Na rynku istnieje wiele wypeBnieD kolumnowych do przeprowadzenia filtracji |elowej. S to wypeBniacze wglowodanowe (dextran, agaroza) lub poliakryloamidowe. Najcz[ciej stosowanymi |elami do tej chromatografii s preparaty o nazwach handlowych: Sephadex, Sepharose i Biogel. Wybór wypeBnienia zale|y od wielko[ci czsteczek, które bd rozdzielane w procesie filtracji. Zestawienie kilku przykBadowych wypeBnieD typu dekstranowego i ich charakterystyk przedstawia Tabela 2. WypeBnienie nanoszone na kolumn w zawiesinie w buforze przypomina |el, std nazwa filtracja |elowa. Do przygotowania zawiesiny w buforze nie nale|y u|ywa mieszadeB magnetycznych, gdy| to mo|e spowodowa fragmentacj zBo|a. Przed naBo|eniem |elu na kolumn nale|y |el spczni (czas pcznienia 24 h w przypadku Sephadexu G-75). Po naBo|eniu |elu na kolumn nale|y sprawdzi upakowanie |elu. Gdy |el jest prawidBowo uBo|ony, substancja barwna, na przykBad bBkit dekstranowy wypBywa w postaci regularnego nie rozmytego pasma. Objto[ próbki nanoszonej w przypadku frakcjonowania powinna wynosi okoBo 2% objto[ci caBkowitej kolumny. Tabela 2. Charakterystyka wypeBnieD do filtracji |elowej. Przybli|ona objto[ Nazwa Zakres MCZ (Da) utworzonego wypeBnienia (ml/g) Sephadex G-15 <1 500 2-3 Sephadex G-25 1 000-5 000 4-6 Sephadex G-50 1 500-30 000 9-15 Sephadex G-75 3 000-80 000 12-15 Sephadex G-100 4 000-150 000 15-20 Sephadex G-150 5 000-300 000 20-30 Sephadex G-200 5 000-600 000 30-40 Sephadex  Dekstran poprzecznie sieciowany z epichlorohydryn w warunkach alkalicznych Test na obecno[ amylazy ±-Amylaza jest enzymem trawiennym, katalizujcym rozkBad skrobi. Skrobia jest polimerem cukrowym zBo|onym z jednostek D-glukozy poBczonych wizaniami glikozydowymi. W wyniku reakcji katalitycznej wizania glikozydowe skrobi ulegaj hydrolizie i zwiksza si zawarto[ jednostek skBadajcych si z krótkich BaDcuchów oligosacharydowych, dwucukrów (maltozy) i cukrów prostych (glukozy). Przebieg tej reakcji mo|na [ledzi u|ywajc roztworu jodu w jodku potasu. Jod tworzy z jednym ze skBadników skrobi, amyloz, kompleksy inkluzyjne o intensywnym, ciemnoniebieskim zabarwieniu (amyloza- substrat ±-amylazy). Kolor roztworu zale|y od stopnia hydrolizy wizania glikozydowego w amylozie. Im wicej ±-amylazy, tym mniej skrobii w roztworze, a w zwizku z tym ja[niejszy kolor roztworu. W momencie, gdy skrobia zostanie zhydrolizowana do jednostek zawierajcych mniej ni| 6 jednostek D-glukozy nastpuje caBkowite odbarwienie roztworu. wiczenie 4. Oznaczanie masy czsteczkowej biaBek metod filtracji |elowej 7/11 PrzykBadowe pytania kontrolne: Na czym oparta jest zasada separacji substancji w filtracji |elowej? Do jakich celów ma zastosowanie filtracja |elowa? W do[wiadczeniu przyjto zaBo|enie dotyczce ksztaBtu czsteczki, jakie? Objto[ elucji wraz ze wzrostem masy czsteczkowej substancji bdzie si zwikszaBa czy zmniejszaBa? Gdyby czsteczki podczas separacji oddziaBywaBy z wypeBnieniem to odczytana z wykresu masa czsteczkowa bdzie zawy|ona czy zani|ona? Niesferyczne, podBu|ne czsteczki bd ulegaBy wymywaniu szybciej czy wolniej od sferycznych? Dlaczego objto[ elucji przedstawiona jest na wykresie jako warto[ wzgldna VE/VO? Na czym polega test na obecno[ ±-amylazy? Opisz budow biaBek. wiczenie 4. Oznaczanie masy czsteczkowej biaBek metod filtracji |elowej 8/11 3. Wykonanie wiczenia MateriaBy i sprzt Kolumna Sephadex G-75 o wymiarach 1 cm x 30 cm Statywy na probówki wirówkowe Statywy na probówki szklane Probówki wirówkowe pojemno[ci 2 ml Probówki szklane Pipeta P1000 (niebieskie koDcówki) Pipeta P200 (|óBte koDcówki) KoDcówki do pipet Cylinder miarowy pojemno[ci 50 ml Aaznia wodna 45OC Spektrofotometr UV Odczynniki Bufor fosforanowy pH 6.6 Mieszanina wzorcowa do separacji: 0.6 mg bBkitu dekstranowego, 1.0 mg hemoglobiny, 0.15 mg bBkitu tymolowego w 0.5 ml buforu fosforanowego u|ywanego do elucji Roztwór nieznanej ±-amylazy w 0. 5 ml buforu elucyjnego Test na obecno[ ±-amylazy: 0.2% roztwór skrobii 1 M roztwór HCl odczynnik Lugola 1. Do dwóch maBych statywów przygotuj po 15 ponumerowanych mikroprobówek wirówkowych o pojemno[ci 2 ml do zbierania wycieku z kolumny (seria czarna lub czerwona). 2. Otwórz kranik wylotowy z kolumny i usuD bufor fosforanowy do zlewki tak, aby poziom cieczy znajdowaB si 0.5 cm powy|ej górnej granicy zBo|a. 3. Nanoszenie próbki. Bardzo delikatnie wprowadz koDcówk pipety automatycznej P1000 (niebieskie koDcówki) nieco poni|ej poziomu cieczy i zadozuj 0.5 ml mieszaniny wzorcowej dostarczonej przez prowadzcego. 4. Elucja. Umie[ pierwszy odbieralnik u wylotu kolumny, otwórz kranik wylotowy i zbieraj frakcje o pojemno[ci 2 ml (górna kreska na probówce). Gdy strefa próbki wniknie caBkowicie w zBo|e dodaj ostro|nie za pomoc pipety dodatkow porcj buforu fosforanowego pH 6.6. Kolejn porcj dodaj z cylindra (razem okoBo 30 ml buforu). Uwaga: podczas dolewania buforu i nanoszenia próbki uwa|aj, aby nie naruszy powierzchni |elu. Nigdy nie pozwól, aby poziom cieczy spadB poni|ej górnej granicy zBo|a. 5. Gdy wszystkie barwne skBadniki zostan wymyte z kolumny przemyj kolumn dodatkow porcj buforu (5-10 ml). Zakr kurek wylotowy, gdy poziom cieczy bdzie znajdowaB si 1 cm powy|ej górnej granicy zBo|a. 6. Analiza spektrofotometryczna frakcji. Zawarto[ barwnych wycieków przenie[ bezpo[rednio do kuwety pomiarowej Przed pomiarem absorbancji do kuwety dodaj dokBadnie 1 ml buforu fosforanowego pH 6.6. Pamitaj, aby przed ka|d seri wyzerowa aparat umieszczajc w komorze roztwór odno[nikowy: bufor fosforanowy pH 6.6. Dokonaj pomiaru absorbancji przy nastpujcych dBugo[ciach fal: wiczenie 4. Oznaczanie masy czsteczkowej biaBek metod filtracji |elowej 9/11 bBkit dekstranowy: » =650 nm (Uwaga: je[li frakcja bBkitu dekstranowego bdzie zawarta w jednym odbieralniku to nie wykonuje si oznaczenia spektrofotometrycznego). hemoglobina: » =462 nm witamina B-12: » =380 nm bBkit tymolowy: » =520 nm 7. Nanoszenie próbki nieznanej ±-amylazy. Nanie[ 0.5 ml roztworu zawierajcego ± ±± nieznane biaBko, dostarczonego przez prowadzcego. Przeprowadz elucj buforem fosforanowym pH 6.6, zbierajc 2 ml frakcje do mikroprobówek wirówkowych. Po zebraniu frakcji odpowiadajcej objto[ci elucji skBadnika o najmniejszej masie czsteczkowej z poprzedniego do[wiadczenia zakoDcz elucj. Wykonaj test na obecno[ ±-amylazy. Wyznacz objto[ elucji odpowiadajc frakcji o maksymalnym st|eniu biaBka. Test na obecno[ ± ±-amylazy: ±± Przygotuj w statywie ponumerowane probówki szklane (odpowiednio seria czarna i czerwona). Numer probówki szklanej odpowiada numerowi frakcji wycieku z kolumny. Do ka|dej probówki dodaj 1 ml 0.2% roztworu skrobii oraz 1 ml buforu fosforanowego pH 6.6. za pomoc pipety P1000 (niebieskie koDcówki). Nastpnie wprowadz 50 µl ka|dej frakcji zebranej z kolumny. Do odmierzania 50 µl (0.05 ml) u|yj pipety P200 (|óBte koDcówki). Statyw z probówkami szklanymi umie[ w Bazni wodnej o temperaturze 45OC i termostatuj 5 minut. W zlewce przygotuj 20 ml odczynnika Lugola z 1 M kwasem solnym (1:1, v:v). Wyjmij statyw z probówkami na bibuB i szybko dodaj do wszystkich probówek po 1ml zakwaszonego odczynnika Lugola. Wizualnie oznacz frakcje zawierajce ±-amylaz. Test pozytywny: odbarwienie ciemnoniebieskiego roztworu. Test negatywny: ciemnoniebieskie zabarwienie roztworu. Na spektrofotometrze Cecil dokonaj pomiaru absorbancji przy dBugo[ci fali »=610 nm. Oznaczenie wykonaj tylko dla frakcji zawierajcych ±-amylaz (roztwory o ró|nym stopniu odbarwienia roztworu). Zawarto[ probówek przenie[ bezpo[rednio do kuwety. Pamitaj, aby najpierw wyzerowa aparat umieszczajc w komorze roztwór odno[nikowy: bufor fosforanowy pH 6.6. Uwaga: do pBukania cylindrów miarowych, probówek zawsze u|ywaj wody destylowanej. 8. Po zakoDczeniu do[wiadczenia kolumn przemyj buforem fosforanowym pH 6.6 (u|yj okoBo 25 ml buforu). Wszystkie probówki umyj dokBadnie przy u|yciu szczoteczek i przemyj wod destylowan. Opis oznaczajcy numer probówki szklanej zmyj acetonem (nie usuwaj numerów z mikroprobówek wirówkowych). Roztwory po analizach oraz wyciek z kolumny wylej do zlewu. 9. Wyniki zanotuj w karcie pracy. Na papierze milimetrowym sporzdz wykres absorbancji ka|dej analizowanej frakcji w funkcji numeru porzdkowego frakcji. Wykres wykonaj dla trzech cykli jednocze[nie. Zaznacz dBugo[ fal, przy których dokonywano pomiaru. Wyznacz maksimum ka|dego piku i odczytaj odpowiadajc mu objto[ elucji (pamitaj: ka|da frakcja zawiera 2 ml). 10. Sporzdz wykres logMcz w funkcji VE/VO dla mieszaniny wzorcowej. Odczytaj logMcz dla nieznanego biaBka i oblicz jego mas czsteczkow. 11. Wyznaczenie objto[ci wypeBnienia. Do pustej kolumny o takich samych wymiarach jak u|yta w do[wiadczeniu wlej ilo[ wody odpowiadajcej poziomowi wypeBnienia. Nastpnie zmierz objto[ wody w cylindrze miarowym. wiczenie 4. Oznaczanie masy czsteczkowej biaBek metod filtracji |elowej 10/11 12. Wyznaczenie objto[ci caBkowitej VT. Przyjmujc za VI objto[ elucji skBadnika wymywanego jako ostatniego oblicz objto[ caBkowit utworzonego wypeBnienia VT ze wzoru: VT = VO + VI + VM Uwaga: przyjmij, |e objto[ samego |elu VMH"0.25 ml. Warunki zaliczenia wiczenia: " Pozytywny wynik kartkówki dopuszczajcej do wykonania wiczenia " Wykonanie sprawozdania w terminie do dwóch tygodni. Sprawozdanie powinno zawiera dwa wykresy na papierze milimetrowym: zale|no[ absorbancji w funkcji numeru porzdkowego frakcji oraz krzyw wzorcow (wykres logMCZ w funkcji VE/VO). Z krzywej wzorcowej odczytaj mas czsteczkow nieznanej ±-amylazy. Ponadto nale|y obliczy objto[ caBkowit wypeBnienia. Do sprawozdania nale|y doBczy kart pracy. Zalecana literatura: J. M. Berg, J. L. Tymoczko, L. Stryer, Biochemia, PWN, Warszawa, 78-82 (2005). S. Milewski, Biochemia, skrypt Politechniki GdaDskiej, 137-140. L. KByszejko-Stefanowicz wiczenia z biochemii, PWN Warszawa, 137-147; 246-251 (1999). wiczenie 4. Oznaczanie masy czsteczkowej biaBek metod filtracji |elowej 11/11 Osoby wykonujce do[wiadczenie: Karta pracy ....................................................... I. Kalibracja kolumny (seria.............................) ....................................................... Mieszanina do przygotowania krzywej wzorcowej: ....................................................... Objto[: 0.750 ml ....................................................... SkBadnik 1: BBkit dekstranowy: 0.6 mg ....................................................... SkBadnik 2: Hemoglobina: 1.0 mg ....................................................... SkBadnik 3:........................................................ ..............mg Ilo[ zebranych frakcji o pojemno[ci 2 ml:............. Analiza wycieku z kolumny: Frakcja 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 SkBadnik + / - 1 absorbancja »= 650 nm + / - 2 absorbancja »= 462 nm + / - 3 absorbancja »= .....nm Objto[ elucji: VO = V1 = .........ml V2 = .........ml V3 = .........ml II. Oznaczanie masy czsteczkowej nieznanej ±-amylazy ± ±± Ilo[ zebranych frakcji o pojemno[ci 2 ml:............. Analiza wycieku z kolumny: Frakcja 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 SkBadnik + / - A absorbancja »= 610 nm Objto[ elucji nieznanego biaBka: VA = ...........ml.

Wyszukiwarka

Podobne podstrony:
22 OZNACZANIE ÅšREDNIEJ MASY CZÄ„STECZKOWEJ POLIMERU
masy czasteczkowe
Badanie ciężaru cząsteczkowego polimerów metodą wiskozymetry
61 Dyfuzja czasteczek bialek w plaszczyznie blony komorkowej
usuwanie mikroorganizmow metoda filtracji
oznaczanie ilosciowe bialek porownanie metod
Oznaczanie powierzchni właściwej i przybliżonego składu mineralnego metodą sorpcji pary wodnej
notatek pl oznaczenie laktozy w mleku metoda bertranda
Walidacja metod analitycznych Cz II Oznaczanie jonów w wodach metodą chromatografii jonowej
Oznaczanie węgla organicznego metodą Tiurin
nasiona oznaczanie żywotności metodą krojenia

więcej podobnych podstron