h) Podłoże dla bakterii wiążących azot
Skład: woda, mannitol, K2HPO4, KH2PO4, MgSOł, NaCl, CaCO.3, ślady MnSC>4, FeCh, Na2Mo04.
i) Podłoże Davisa z różnymi źródłami azotu
Zmieszać ze sobą: 40 ml bezazotowych soli Davisa
4 ml 20% glukozy
2 ml roztworu zawierającego źródło azotu 150 ml agaroidu
Źródła azotu to: 10 % roztwór NH4CI 10 % roztwór KN03 20 % roztwór hydrolizatu kazeiny
2, Źródła węgla i eneręii
a) Określenie typu pokarmowego badanych szczepów
Szczepy Podłoża
Bacillus subtilis podłoże mineralne AB
Halothiobacillus neapolitanus agar odżywczy
Paracoccus versutus Micrococcus luteus
-Płytkę z podłożem AB i z agarem odżywczym podzielić na 4 sektory i odpowiednio podpisać.
- Każdy ze szczepów wysiać rysą na oddzielnych sektorach obu podłoży.
- Po inkubacji w temperaturze pokojowej określić typ pokarmowy badanych bakterii.
Zmiana barwy podłoża AB z czerwonej na żółtą świadczy o jego zakwaszeniu.
b) Badanie zdolności bakterii heterotroficznych do wykorzystywania różnych organicznych źródeł węgla
Szczepy Podłoża
Escherichia coli agar odżywczy ze skrobią
Bacillus subtilis agar odżywczy z mlekiem
Pseudomonas fluorescens agar odżywczy z tłuszczem
- Płytki z pożywkami podzielić na pół, odpowiednio podpisać i zrobić posiewy:
- na agar odżywczy z mlekiem i ze skrobią posiać rysą B. subtilis i E. colt,
- na agar odżywczy z tłuszczem posiać rysą E. coli i P. fluorescens;
- Na jeden słupek z żelatyną odżywczą wsiać igłą B. subtilis, a na drugi E. coli.
- Pozostałe posiewy inkubować w temperaturze pokojowej przez kilka dni.
Odczyt posiewów po inkubacji:
- Płytki z agarem odżywczym i skrobią należy zalać płynem Lugola. Brak fioletowego zabarwienia wokół strefy wzrostu bakterii świadczy o rozkładzie skrobi.
- Na agarze odżywczym z mlekiem obserwuje się przejrzyste strefy wokół linii wzrostu
szczepów hydrol i żujących kazeinę.
- Płytki z agarem odżywczym i tłuszczem należy zalać 20% roztworem CUSO4. Pojawienie się szmaragdowego zabarwienia wokół linii wzrostu świadczy o rozkładzie tłuszczu.
12