8 Wykład VIII Ekspresja genów II

WYKLAD VIII

Ekspresja genów - część II



Alternatywny splicing

  1. Najczęściej w wyniku cięcia i składania zostają wycięte wszystkie introny, a wszystkie eksony zachowane zostają w wyjściowej kolejności, dając ciągłą sekwencję pojedynczego mRNA.



  1. Jednakże ekson w całości lub w części może być potraktowany jak intron i usunięty podczas tego procesu.

  2. W rezultacie z tej samej nici RNA może powstać kilka różnych mRNA.



Alternatywny splicing

składanie alternatywne

  1. zapewnia skuteczną produkcję różnych białek z jednego genu bez zmian struktury jego DNA.

  2. proces ten jest regulowany, dzięki czemu gen może ulegać ekspresji na danym etapie rozwoju i w danej tkance w jeden sposób, a na innym etapie i w innej tkance – w odmienny.



  1. Prawie wszystkie introny są usuwane przy udziale spliceosomów,

  2. jednak są inne mechanizmy ich usuwania, np. za pomocą odpowiednio sfałdowanych intronów.

  3. RNA może działać jak enzym, takie introny o wł. enzymów i zdolne do samowycinania nazwano rybozymami (Nobel 1990)

  4. Rybozymy będące intronami mogą katalizować własny splicing.

rybozymy

  1. występują u wszystkich organizmów,

  2. oprócz udziału w wycinaniu intronów –w mechanizmie syntezy białek.

  3. Transferaza peptydylowa - enzym wchodzący w skład

rybosomów, który

tworzy wiązania peptydowe,

jest rybozymem.

Dojrzewanie pre-RNA przez modyfikację chemiczną –


  1. zachodzi ona w przypadku pre –tRNA i rRNA, rzadziej w przypadku pre-mRNA.

  1. Znanych jest ponad 50 różnych modyfikacji-metylacja, deaminacja, zastepowanie tlenu przez siarkę, izomeryzacja, itp.

REDAGOWANIE TRANSKRYPTU

  1. Potranskrypcyjne zmiany sekwencji mRNA prowadzące do zmiany informacji nazywamy REDAGOWANIEM TRANSKRYPTU,

  2. które polega na insercjach, delecjach i substytucjach zasad



Przykładem redagowania RNA są zmiany w ludzkim mRNA apo-lipo-proteiny B

  1. W komórkach wątroby - apo-lipo-proteina B100 złożona z 4563 aminokwasów.



  1. Podobne białko jest wytwarzane w kom. nabłonka jelita ale o dł. 2153 amin.

  2. Jest ono syntetyzowane na tej samej matrycy tj. dla białka o pełnej długości ale poddanej procesowi redagowania (CAA w UAA stop).

Trwałość mRNA

  1. Czas półtrwania krótki (u bakterii kilka min., u Euc. od kilku do kilkunastu godz)

  2. mRNA długotrwały tworzy kompleks z białkami ochronnymi przed nukleazami-INFORMOSOM

Podsumowując:



  1. 1. Pre-mRNA zanim stanie się pełnowartościową matrycą do syntezy białka musi przejść przez proces dojrzewania.

  2. 2. Dojrzewanie obejmuje 3 zasadnicze modyfikacje:

  3. capping (dodawanie „czapeczki”)

  4. poliadenylację podnoszącą stabilność transkryptu;

  5. splicing, w którym eliminowane są wewnętrzne niekodujące rejony informacyjnego RNA.



  1. 3. Alternatywny splicing i poliadenylacja mogą generować różne produkty ( mRNA ) wykrywane w różnych tkankach, co znaczy, że jeden gen może kodować więcej niż jedno białko.



  1. 4. Dojrzewanie pre-mRNA jest warunkiem eksportu transkryptu z jądra.



  1. 5. Dojrzały mRNA wiąże się z białkami mającymi wpływ na jego stabilność, transport i translację.



Translacja -

  1. proces, w którym następuje odczyt informacji genetycznej z mRNA i synteza białka.

  2. Wiązania peptydowe między gr. karboksylową i aminową

  3. NAJWAŻNIEJSZE: właściwie odczytana sekwencja aminokwasów zawarta w kolejności kodonów



  1. W translacji biorą udział oprócz matrycy (mRNA) i aminokwasów

  2. cząsteczki tRNA ( dostarczające aminokwasów ),

  3. rybosomy

  4. oraz szereg czynników wspomagających.



Transferowy RNA (tRNA)

  1. zbudowany z 70-90 nukleotydów.

  2. tRNA cechuje wysoka specyficzność w stosunku do aminokwasów.



  1. Każdy z aminokwasów syntetyzowanego białka może być transportowany przez jeden, a niektóre przez kilka różnych tRNA.

.



tRNA

  1. Cząsteczki tRNA występują

w komórkach w stanie wolnym lub związane ze specyficznym aminokwasem

  1. Przyłączenie aminokwasu katalizuje syntetaza aminoacylo tRNA, po przyłączeniu reszty aminoacylowej na końcu 3' powstaje aminoacylo – tRNA.



tRNA :

*odczytuje kolejność kodonów

  1. *transportuje właściwe aminokwasy

  2. *posiada miejsce rozpoznawania przez specyficzne syntetazy-tRNA oraz miejsce rozpoznawane przez rybosom

  3. *zawiera sekwencję antykodonową



tRNA

  1. W cząsteczce tRNA wyróżniono 5 ramion.

  2. Każde pełni inną funkcję.

  3. Ramię akceptorowe (6-7pz) służy do przyłączania aminokwasu w postaci reszty aminoacylowej.

  4. Na końcu 3' tego ramienia znajduje się zawsze układ nukleotydów CCA.

Ramię boczne krótsze (3-4 pz) służy do łączenia się z rybosomem i umocowania tRNA na matrycy.

  1. Ramię boczne dłuższe

(4-5 pz) jest miejscem

rozpoznawania

właściwej cz. tRNA

przez właściwą syntetazę



  1. Ramię antykodonowe (4-5 pz) ma znaczenie podczas wybierania właściwego miejsca do przyłączenia transportowanego aminokwasu.

  2. Na końcu tego ramienia znajduje się antykodon, zawierający 3 nukleotydy, które łączą się komplementarnie z zasadami kodonu na mRNA.

  3. W ten sposób tRNA znajduje odpowiednie miejsce dla swego aminokwasu.





Ramię dodatkowe jest cechą charakterystyczną każdego tRNA

  1. i stanowi podstawę klasyfikacji cząsteczek tRNA.

  2. Klasa 1 tRNA - ok. 75%

wszystkich, 3-5 pz,

Klasa 2 - 13-21 pz.





Miejscem translacji są rybosomy



Rybosom: 1-duża podjednostka, 2-mała podjednostka

rybosomy

  1. rRNA i biaka

  2. Prokariota:

  3. Mała podjednostka – 16S rRNA,

  4. Duża podjednostka – 23S i 5S rRNA

  5. Eukariota:

  6. M. p. – 18S rRNA

  7. D. p. – 26S, 5,8S, 5S rRNA

Jednostka duża rybosomu posiada dwa miejsca związane z translacją - miejsce
P i A


  1. A - przyłączenia amiloacylo-t-RNA

  2. P - przłączania

peptydylo - t-RNA –

jest to t-RNA

z łańcuchem

peptydowym.

Przebieg translacji


  1. Translacja odbywa się w kierunku od 5' do 3' mRNA, a syntetyzowane białko powstaje od końca aminowego do karboksylowego.

  2. Proces składa się z trzech etapów: inicjacji, elongacji i terminacji.

Inicjacja


  1. I etap - utworzenie kompleksu inicjującego- przyłączenie mRNA do mniejszej podjednostki rybosomu w obecności inicjatorowego tRNA i szeregu czynników inicjujących.

  2. U eukariontów pierwszym kodonem ulegającym translacji jest kodon AUG (tzw. kodon start), kodujący metioninę (metionylo tRNA).





  1. II etap - gdy przesuwająca się po mRNA mn. podjednostka ze związanym Met-tRNA natrafi na kodon "start" następuje przyłączenie większej podjednostki rybosomu.



do kompleksu inicjującego przyłącza się duża podjednostka z miejscem P i A


  1. III etap inicjacji –metionylo- tRNA zajmuje miejsce P, miejsce A jest gotowe przyjąć odpowiedni aminoacyto tRNA którego gr aminowa oddziaływuje na karboksylową metioniny i powstanie -> wiązanie peptydowe.



E L O N G A C J A

Przyłączenie 1 aminokwasu=1cykl,

który składa się z IV etapów

  1. I dołączenie aminoacylo tRNA

do A rybosomu

  1. II synteza wiązania

peptydowego między gr. aminową

aminoacylo-tRNA a karboksylową

peptydylo-tRNA lub metionylo-tRNA

  1. III Przeniesienie peptydylu lub metioniny z miejsca P do miejsca A, uwolnienie tRNA z miejsca P

IV Translokacja rybosomu względem miejsca RNA o 1 kodon - zostaje uwolniony t-RNA a jego pozycję zajmuje cząsteczka peptydylo-tRNA,
dołączenie aminoacylo-tRNA do miejsca A rozpoczyna kolejny cykl elongacji


  1. Ogólny schemat translacji

Cykl elongacyjny




Terminacja

  1. Translacja kończona jest w miejscu, w którym wystąpi jeden spośród trzech kodonów terminacyjnych tzw. kodonów "stop" ( UAG, UGA, UAA ).

Modyfikacje potranslacyjne:


1. fałdowanie polipeptydu – przyjmowanie struktury III-cio rzędowej

2. rozszczepianie – obcinanie na końcach lub segmentacja polipeptydu

3. chemiczna modyfikacja aminokwasów – polega na przyłączaniu różnych gr. chemicznych

4. wycinanie intein (sekwencje „przerywające” pomiędzy eksteinami – sekwencjami właściwymi)



Podsumowując:


  1. 1. Translacja zachodzi w rybosomach

  2. 2. Sygnałem początku syntezy białka jest kodon AUG, natomiast końca syntezy jeden z kodonów stop - UAA, UAG, UGA;

  3. 3. Synteza białka wspomagana jest przez czynniki białkowe tzw. : inicjacyjne, elongacyjne i terminacyjne;

  4. 4. Translacja jest procesem energochłonnym, czerpiącym energię z hydrolizy GTP i ATP;



Różnice w biosyntezie białka u Pro i Eukaryota

  1. U E. proces transkrypcji i translacji są oddzielone w przestrzeni i czasie.

  2. U P. synteza RNA i biała zachodzą w tym samym miejscu i prawie równocześnie

  3. U P. mRNA pozostaje bez obróbki;

  4. nie zawiera intronów.

Cechy kodu genetycznego

  1. Trójkowy (3 zasady-1kodon

(triplet)-aminokwas)

  1. Uniwersalny, wyjątki:

  2. GUG – koduje walinę; alternatywny kodon Start niektórych Prokaryota

  3. UGA – nie koduje (stop), w mitochondriach ssaków, drożdży i u niektórych jednokomórkowych koduje tryptofan.





Kodony mitochondrialne o zmienionym znaczeniu

  1. AUA - koduje izoleucynę, a mitochondriach ssaków – metioninę

  2. CUN – koduje leucynę, a w mitochondriach drożdży treoninę

  3. AGA i AGG – izoleucynę, a w mitochondriach ssaków - stop

Kod genetyczny jest
zdegenerowany (nie w
pełni jednoznaczny).




  1. Każdy nukleotyd w obrębie sekwencji kodujących wchodzi w skład jakiegoś kodonu i tylko jednego kodonu - kod genetyczny jest bezprzecinkowy;

  2. Niezachodzący- kodony nie zachodzą na siebie

  3. Trzem kodonom nie odpowiadają żadne aminokwasy; kodony te (zwane nonsensownymi albo kodonami STOP) kodują polecenie przerwania biosyntezy peptydu



Zasada tolerancji Cricka

KOD GENETYCZNY JEST WIELOZNACZNY



  1. Dlaczego rodzajów tRNA jest tylko 31 (+1 dla stop) gdy kodonów sensownych 61?

  2. Jeden rodzaj tRNA może rozpoznawać 1, 2 lub maksymalnie 3 kodony synonimowe

  3. Pierwsza zasada w antykodonie (tRNA) nie zawsze jest komplementarna do zasady terminalnej w kodonie (mRNA)

  4. Jest to REGUŁA TOLERANCJI Cicka

zasada tolerancji Cricka - przykład

  1. Arginina u E. coli jest kodowana przez

  2. 4 synonimowe kodony, które są rozpoznawane przez 2 rodzaje tRNA

  3. Jeden rodzaj tRNA zawiera antykodon GCI (I-inozyna-pochodna adeniny) i paruje się z aż trzema kodonami (CGU, CGC, CGA), gdyż I może łączyć się z U, C i A.

  4. Dla czwartego kodonu z G (CGG) musi istnieć drugi rodzaj tRNA (z antykodonem GCC).



inozyna może łączyć się z U, C i A.


  1. GCI GCI GCI

  2. CGU, CGC, CGA



  1. CGG

  2. GCC









  1. Teoria adaptorowa dotycząca rozpoznawania kodonów


Wyszukiwarka

Podobne podstrony:
6 Wykład VIII Budowa genów
6 Wykład VIII Budowa genów
Wykład VIII Przykłady kodowania automatów asynchronicznycvh II
3. Przyklady regulacji ekspresji genow u Eukaryota-ok, Biologia II, Biologia molekularna
gis, GIS II KOLO, WYKŁAD VIII (14
07) Regulacja ekspresji genów (wyklad 7)
Wykład VIII Przykłady kodowania automatów asynchronicznycvh II
Prawo medyczne wykład VIII Obowiązek ratowania życia
Turystyka, wykład VIII, Agroturystyka
Wykład VIII Synteza układów sekwencyjnych
Ekspresja genów
Wykład VIII 03 04 2012
Wykład 5 An wsk cz II
Gradient ekspresji genów w regulacji morfogenezy u ssaków, Medycyna ŚUM, Rok 1, Biologia medyczna, T
Wykład VIII, Studia Biologia, Mikrobiologia, wykłady z ogólnej
prawo administracyjne-wyklad VIII, prawo administracyjne(1)
chirurgia wyklad 1, Fizjoterapia, FIZFOTERAPIA ROK II, chirurgia
zarzadzanie wyklad 2, studia, Maja, Studia, II rok, IV semestr, Organizacja i Zarzadzanie