Hodowle tkankowe Kultura organów roślinnych

background image

PODSTAWY BIOTECHNOLOGII

HODOWLE TKANKOWE (2h)

KULTURA ORGANÓW ROŚLINNYCH

I. KALAFIOR

1.

Wysterylizuj miejsce swojej pracy za pomocą wacika nasączonego 70% etanolem.


2.

Odetnij maleńki kawałek z kwiatu kalafiora, mniej więcej wielkości wiśni. Pracuj nad

czystą szalką Petriego, podziel wycięty fragment rośliny na trzy części.

3.

Umieść kawałeczki kalafiora (eksplanty = przeszczepy) w wybielaczu na 10 minut

delikatnie wstrząsając co jakiś czas zlewką.
Od tego momentu należy zwrócić uwagę na szybkie, sterylne wykonywanie
czynno
ści, ponieważ będzie to istotne dla zapobiegnięcia zakażenia hodowli.

4.

Wypłucz przeszczepy w trzech kolejnych zlewkach zawierających sterylną wodę

destylowaną. Za każdym razem wyjmując przeszczepy pamiętaj o wyjałowieniu
pęsety w płomieniu palnika i ochłodzeniu jej przed zanurzeniem w wodzie.


(Prawidłowy sposób sterylizacji pęsety lub innych narzędzi w pracy w warunkach
sterylnych – opalić pęsetę w płomieniu palnika, ostudzić, zanurzyć pęsetę w alkoholu, a
następnie przeciągnąć ją przez płomień. Pomimo tego, że etanol dezynfekuje to
dodatkowo wysoka temperatura spowoduje zabicie wszystkich zanieczyszczeń
znajdujących się na powierzchni używanych instrumentów. Nigdy jednak nie rozpalaj
pęsety czy skalpela do czerwoności i pamiętaj aby alkoholu używać daleko od
włączonego palnika).

5.

Eksplanty można pozostawić w ostatniej zlewce ze sterylną wodą (zakrytą wieczkiem

szalki Petriego) do czasu ponownego ich użycia.

6.

Weź probówkę z medium hodowlanym, wyciągnij korek i szybko opal wylot

probówki w płomieniu. Wysterylizuj pęsetę w płomieniu palnika, wystudź ją, pobierz
jedną cząstkę kalafiora z ostatniej zlewki, i szybko umieść ją w probówce z medium
hodowlanym. Odłóż pęsetę do naczynia z alkoholem etylowym. Ponownie opal wylot
probówki i zamknij ją korkiem.

7.

Powtórz całą procedurę zawartą w punkcie 6 dla pozostałych przeszczepów kalafiora,

umieszczając je w kolejnych probówkach z medium hodowlanym.

8.

Probówki powinny być przechowywane w ciepłym i wilgotnym miejscu. Wzrost

powinien być zauważalny już po 10 dniach.

9.

Niepowodzenie hodowli – brak wzrostu przeszczepów, wynika zwykle ze złego

wypłukania tkanki roślinnej w wybielaczu.


background image

II. LIŚĆ TOPOLI

1.

Wytnij z wewnętrznej długości ogonka liścia topoli fragment około 2-3 cm i rozdziel

podłużnie za pomocą ostrego noża lub skalpela.


2.

Połóż 2-3 krążki bibuły filtracyjnej, jako podstawę na szalkach Petriego i zwilż je

roztworem kinetyny.

3.

Umieść ogonki liści topoli, przeciętą stroną na bibule filtracyjnej.

4.

Zakryj szalkę Petriego wieczkiem i dobrze go zabezpiecz folią. Celem takiego zabiegu

jest ograniczenie parowania roztworu kinetyny

5.

Należy przetrzymywać dobrze zakrytą szalkę Petriego w ciepłym miejscu.

Obserwować hodowle w tygodniowych odstępach czasowych. Po kilku tygodniach
powinno się zaobserwować uformowaną tkankę kallusową. Mogą być również
widoczne maleńkie pączki.

6.

Jeżeli natomiast bibuła jest zbyt sucha należy ją nawodnić za pomocą niewielkiej

ilości, wkraplanej destylowanej wody.

Obserwacje, wyniki i wnioski należy przedstawić w zeszycie w formie sprawozdania z

ć

wiczeń.

Literatura

1.

Bajaj Y.P.S. Biotechnology in Agriculture and Forestry, vol. 1-10 - ed. Springer

Verlag, Berlin, Heidelberg, New York, London, Paris, Tokyo, 1988.

2.

Bednarski W., Reps A. (red.) Biotechnologia żywności. Wydawnictwo Naukowo

Techniczne, Warszawa, 2003.

3.

Bednarski W. (red) Biotechnologia żywności. Wydawnictwo Art., Olsztyn, 1993.

4.

Legocki A.B. (red.) Transformowanie i regeneracja roślin. Instytut Chemii

Bioorganicznej PAN, Poznań, 1990.

5.

Libudzisz Z., Kowal K. (red.) Mikrobiologia techniczna. Tom II, Wydawnictwo

Politechniki Łódzkiej, Łodź, 2000.

6.

Malepszy S., Niemirowicz-Szczytt K., Przybecki Z..Biotechnologia w genetyce i

hodowli roślin. PWN, Warszawa, 1989

7.

Malepszy S. (red.) Wprowadzenie do biotechnologii w genetyce i hodowli roślin.

Wyd. SGGW, Warszawa 1990

8.

Pijanowski E., Dłużewski M., Dłużewska A., Jarczyk A. Ogólna technologia

ż

ywności. Wydawnictwo Naukowo-Techniczne, Warszawa, 2004.

9.

Wareing P.F., Phillips I.D.J. Przekład zbiorowy pod redakcją Lidii D. Wasilewskiej-

Dąbrowskiej. Wzrost i różnicowanie się roślin. PWN, Warszawa, 1985.

10.

Zenkteler M. Hodowla komórek i tkanek roślinnych. PWN, Warszawa, 1984.


Wyszukiwarka

Podobne podstrony:
Hodowle tkankowe, Kultura organów roślinnych
Opracowanie zagadnie 324 na kolokwium1[1], Biotechnologia, Hodowle tkankowe, Zwierzęce i ludzkie
inicjacja kultur kalusowych roslin
Hodowle tkankowe gotowiec
29. Budowa i funkcje organów roślinnych, biologia, licencjat eksperyment
hodowla tkankowa wojcik
Hodowle tkankowe 08 06 16 2
inicjacja kultur kalusowych roslin
30 Modyfikacje organów roslinnych
Porównanie organów roślinnych
Hodowle tkankowe i koórkowe
Zadanie na hodowlach tkankowych rozwiązanie 2
1 5 Rodowód hodowli roślinnych komórek, tkanek i organów
biologia, plechowce i organowce, Plechowce- to rosliny którychnie wyrózniamy korzenia ,łodygi, liści
Kultury tkankowe roślin
hodowla kolos - wyklady, sem. 4, Hodowla roślin
hodowla roslin 3

więcej podobnych podstron