Wykład 22
WARROZA PSZCZÓŁ
Varrosis
wywoływana przez VARROA DESTRUCTOR
zarażliwa choroba roztoczowa czeria i pszczół dorosłych
podlega rejestracji
Gatunki:
VARROA JACOBSONI 1904r,.
VARROA UNDERWOODI 1987r.
VARROA RINDERERI 1996r.
VARROA DESTRUCTOR 2000r.
Budowa Varroa destructor
Samica:
rozmiary 1,0-1,77 x 1,5-1,99mm
o ciele kształtu elipsowatego spłaszczonym grzbietowo-brzusznie
zabarwiona na ciemnobrązowo lub czerwonobrunatny
młode samice o nieschitynizowanym ciele zabarwiona na biało
Samiec:
mniejszy od samicy (0,93x0,97mm)
kulisty kształt ciała
ma kolor biały/szarobiały/jasnożółty
występuje tylko na czerwiu zasklepionym lub krótko po wygryzieniu pszczoły
na dorosłych pszczołach występują tylko samice roztocza
Rozwój:
protonimfa- deutonimfa – nimfa
długość cyklu rozwojowego 9-10 dni
w tym czasie samica składa 3-6 jaj
samica wypija/wysysa dziennie 2x tyle krwi (hemolimfy) ile sama waży
cykl rozwojowy wymaga obecności żywiciela – pszczoły – jej cyklu rozwojowego (czerwiu)
rozwój odbywa się na czerwiu zasklepionym
zimą brak czerwiu – matka pszczela nie składa jaj – dorosłe Varroa żyją na dosłych robotnicach
15x większe powinowactwo do czerwiu trutowego
ryjek (gnathosoma, rostrum) zawiera narządy gębowe – szczękoczułki i nogłaszczki
narządy gębowe typu ssąco-kłującego – przystosowane do pobierania hemolimfy
cztery pary krótkich członowanych odnóży
druga para odnóży wyposażona w przyssawki – służą do utrzymania się na ciele czerwia i pszczół
dobrze rozwinięty układ oddechowy – przebywa w atmosferze bogatej w CO2 (komórki z zasklepionym czerwiem) oraz w atmosferze ula
Geneza pasożyta
1904 rok – odkrycie na wyspie Jawie na pszczole Apis cerana indica – Varroa jacobsoni
nie niszczy rodzin, rozwija się głównie na czerwiu trutowym
stwierdzany wyłącznie na terenach Azji południowo – wschodniej
w latach 60 przystosował się do pszczoły miodnej Apis mellifera
Światowa ekspansja
1960 – japonia, rosja
1960 – 70 – wschodnia Europa
1971 – brazylia
późne lata 70 – Południowa Ameryka
1980 – Polska
1982 – Francja
1984 – Szwajcaria, Hiszpania, włochy
1987 – USA
1989 – Kanada
1992- Wielka Brytania
2000 – Nowa Zelandia
1904 rok wykryty przez Jacobsona na wyspie Jawa
1918 rok opisany przez holendra Oudemanasa – Varroa jacobsoni Oudemans
po raz pierwszy w Europie 1970 Bułgaria
liczne ogniska choroby na terenie Rumunii, Węgier, Związku Radzieckiego
kolejne – w Jugosławi, Austrii, Grecji, na terenie Słowacji, Czech, Niemiec
obecnie notowany jest na całym świecie za wyjątkiem Australii
w Polsce pierwszy przypadek w 1980 roku na Lubelszczyźnie w pobliżu Kraśnika Lunelskiego
Rewizja gatunku Varroa jacobsoni – Anderson i Trueman w 2000 roku
badania DNA i pomiary morfologiczne
opisano rózne haplotypy:
japoński – Varroa jacobsoni – nie występuje na pszczole miodnej
koreański – w Polsce – Varroa destructor
w badaniach DNA u V.j. I V.d. Wykryto 18 typó DNA;
nadano im nazwy w zależności od nazwy kraju lub wyspy np. jawajski, koreański, rosyjski
z 18 typów tylko 2 u pszczoły miodnej i oba należą do V.d.
Koreański najbardziej rozpowszechniony w EU, Azji , Amerykach i Bliskim Wschodzie
Czerw |
Otwarty – niezasklepiony |
|
|
1 |
Jajo |
|
2 |
||||||
3 |
||||||
1 wylinka |
4 |
Larwa zwinięta |
||||
2 wylinka |
5 |
|||||
3 wylinka |
6 |
|||||
4 wylinka |
7 |
|||||
5 wylinka |
8 |
|||||
Zamknięty zasklepiony |
9 |
Larwa wyprostowana przędząca |
||||
10 |
||||||
11 |
Przedpoczwarka |
|||||
12 |
||||||
Oczy białe |
|
13 |
Poczwarki |
Bezskrzydłe |
||
14 |
||||||
15 |
||||||
Oczy fioletowe |
16 |
|||||
17 |
Uskrzydlone |
|||||
18 |
||||||
Oczy czarne |
|
19 |
||||
6 wylinka |
20 |
|||||
|
21 |
|
9 |
z |
|||||
Larwa przedżaca |
10 |
Z |
|
|
|
|
|
11 |
Z |
|
|
|
|
|
|
przedpoczwarka |
12 |
z |
|
|
|
|
|
13 |
z |
J |
|
|
|
|
|
poczwarki |
14 |
z |
p |
j |
|
|
|
15 |
z |
p |
p |
j |
|
|
|
16 |
z |
d |
d |
p |
j |
|
|
17 |
z |
d |
d |
p |
p |
j |
|
18 |
z |
d |
d |
d |
p |
p |
|
19 |
z |
men |
o |
d |
d |
p |
|
20 |
z |
men |
o |
d |
d |
d |
|
21 |
z |
men |
o |
o |
d |
d |
|
robotnice |
1 |
z |
|
s |
s |
|
|
Etiologia Varroa destructor
samice i samce oraz postacie rozwojowe pasożytują na czerwiu z reguły na czerwiu zasklepionym
dojrzałe samice pasożytują również na robotnicach, trutniach'
długość życia samicy zależy od pory roku, wiąże się z cyklem rozwojom rodziny pszczelej
samice które pasożytują na imago w okresie wiosenno-letnim żyją 2-3 miesiące
samice na pszczołach zimujących zyja 6-8 miesięcy
poza pszczołą roztocze ginie po około 5 dniach
na pszczołach martwych roztocze ginie po 16-17 dniach
na plastrach z czerwiem roztocze ginie po 40 dniach
Lokalizacja
u pszczół dorosłych samice lokalizują się na grzbietowej i bocznej powierzchni ciała w miejscu połączenia głowy z tułowiem, tułowie a z odwłokiem, na tułowiu, między 2 pierwszymi segmentami odwłoka
rzadziej na kończynach i u nasady skrzydełek
zimujące samice wciskają się głęboko między sternity odwłoka
wpływ pasożyta na rodzinę pszczelą Apis mellifera jest złożony
pszczoły i czerw ulegają osłabieniu na skutek utraty hemolimfy, którą się odżywia
w trakcie żerowania powstaja ranki które są wrotami zakażenia bakteriami i wirusami
Stwierdzone wirusy przenoszone przez V.d.
Wirus ostrego paraliżu pszczół ABPV
wirus powolnego paraliżu pszczół SPV
wirus zdeformowanych skrzydeł DWV
kaszmirski wirus pszczół KBV
wirus choroby woreczkowej SBV
wirus choroby czarnych mateczników BQCV
W przypadku silnego zarażenia czerwiu pszczelego wirusem zdeformowanych skrzydeł w rodzinach pszczelich pojawiają się robotnice ze zdeformowanymi skrzydłami i skróconym odwłokiem
rozprzestrzenianiu się pasożyta sprzyjają wędrówki rojów 6-10km rocznie
rabunki pokarmu błądzenie pszczół w pasiece
obrót matkami pszczelimi i pszczołami
przenoszenie plastrów z czerwiem pomiędzy rodzinami
pszczoły silnie opadnięte przez pasożyta stają się niespokojne, szynko się męczą w czasie lotów, a w okres życia ulega skróceniu
Objawy kliniczne:
objawy kliniczne występują przy porażeniu ok. 30% czerwia w rodzinie
zamieranie czerwia trutowego i pszczelego głównie w stadium przedpoczwarki
obecność robotnic i trutni z zaburzeniami rozwojowymi
występują częstsze rójki
masowe upadki rodzin pszczelich przy silnej inwazji w listopadzie
nie zawiązywanie kłębu zimowego
Rozpoznawanie warrozy
metody diagnostyczne rozpoznawania warrozy
rozpoznawanie inwazji w rodzinie pszczelej opiera się na wykryciu obecności samiec V.D. Na pszczołach i czerwiu oraz w osypie zimowym
rozpoznanie laboratoryjne:
badanie osypów (zimowego lub pobieranego okresowo w sezonie pasiecznym)
badanie czeriwu
badanie pszczół robotnic
w PL – metody diagnostyczne
badanie osypu zimowego
diagnostyczne stosowanie preparatów warrobójczych
odsklepianie czerwiu
Rozpoznawanie:
Badanie w pasiece:
stwierdzenie obecności pasożyta w rodzinach pszczelich lub jego stadiów rozwojowych na czerwiu
wczesne stwierdzenie inwazji i określenie stopnia porażenia ma duże znaczenie w prognozowaniu dalszego postępowania
Badanie czerwia:
największe prawdopodobieństwo wykrycia roztocza i jego stadiw rozowojowych daje badanie czerwia trutowego w okresie wiosenno- letnim
gdy bark czerwia trutowego badamy czerw pszczeli
badamy co najmniej 100-200 larw
Diagnostyczne stosowanie leków:
wkładamy wkładkę papierową na dno ula i stosujemy jeden z leków: Apiwarol, Folbex lub inny w postaci dymu, papier jest posmarowany tłuszczem do którego przykleja się opadłe samice pasożyta
Leczenie warrozy:
oprysk wodnym roztworem substancji chemicznej – amitraz
odparowanie substancji czynnej – amitraz
odymianie – paski papierowe nasączone substancją czynną
odymianie – tabletki z substancją czynna do podpalania
podkarmianie – rozpuszczanie substancji czynnej w syropie leczniczym (woda+cukier) Apitol
paski plastikowe o przedłużonym działaniu – substancja czynna inkorporowana w pasek i naniesiona w postaci mikro warstwy
Apistan.
Fluwarol,
Baywarol,
Apifos,
Biowar, A
piwar
polewanie substancją rozpuszczona w płynie
odparowywanie substancji w ulu
uwalnianie substancji lotnych – tymowarol
Biotechnologiczne metody zwalczania:
wycinanie czerwiu trutowego zasklepionego – likwidacja populacji w kom plastra
izolacja matki pszczelej – ograniczanie w czerwieniu – składaniu jaj
termoterapia 46- 47* przez 15 – 20 minut ?
Biologiczni przeciwnicy Varroa:
Metarhizium anispoliae – grzyb zabójczy
wymaga dużej wilgotności w ulu 80%
propolis w ulu hamuje jego rozwój
USA - Hirsutella tompsoni – grzyb
Enterobacter cloacae – baketria