ILOŚCIOWE OZNACZANIE DROBNOUSTROJÓW
I. Określanie ilości żywych drobnoustrojów:
Stosuje się głównie dwie metody:
1. metodę płytkową na pożywkach stałych (posiew powierzchniowy, posiew wgłębny)
2. metodę oznaczania najbardziej prawdopodobnej liczby drobnoustrojów w pożywkach płynnych
(NPL)
W metodzie płytkowej znając użyte rozcieńczenie, objętość płynu użytego do wysiewu i obliczając
liczbę wyrosłych kolonii można łatwo wyliczyć liczbę drobnoustrojów na jednostkę objętość lub wagi
badanego materiału.
Metoda liczenia bakterii przez posiew na podłoże stałe zakłada, że liczba powstających kolonii
odpowiada liczbie żywych komórek lub jednostek wzrostowych (j.t.k -jednostek tworzących kolonie =
cfu - ang. colony forming units) w badanym materiale. Na płytce można łatwo odróżnić jako pojedyncze
(a zatem policzyć) około 300 kolonii. Dlatego próby zawierające dużą liczbę bakterii należy rozcieńczyć
przed posiewem ( zwykle stosuje się szeregi 10-krotnych rozcieńczeń w postępie geometrycznym).
Należy pamiętać, że hodowle bakterii zażerają w jednym mililitrze miliony (106) lub nawet miliardy (109)
komórek.
Dla prób o niewielkiej liczbie bakterii (np. woda wodociągowa) można zastosować metodę sączenia
przez filtr membranowy, polegającą na przesączeniu badanej próbki (np. o objętości 100 ml) przez
sączek membranowy, a następnie położeniu sączka na podłożu wzrostowym (np. podłożu Endo - w
przypadku określania wskaz
nika coli w wodzie) i po okresie inkubacji policzeniu kolonii wyrosłych na
powierzchni sączka.
Próbkę rozcieńcza się według podanego schematu (Ryc.1). Liczba rozcieńczeń zależy od
przewidywanego stopnia zanieczyszczenia badanego płynu. Z największych rozcieńczeń wysiewa się
po 0,1 ml na powierzchnię podłoży stałych (posiew powierzchniowy - A), lub przenosi po 1 ml do płytek
Petriego i zalewa upłynnionym podłożem agarowym o temperaturze (47�Cą 2�C) (posiew wgłębny - B).
Schemat ilościowego oznaczania drobnoustrojów metodą płytkową na pożywkach stałych:
Posiew powierzchniowy (A), posiew wgłębny (B)
Obliczanie liczby komórek według normy ISO 721:1998.
Do obliczeń powinny być brane pod uwagę tylko płytki z mniejszą niż 300 liczbą kolonii. Aby wynik
badania uznać jako ważny należy liczyć kolonie przynajmniej na jednej płytce, zawierającej co najmniej
15 kolonii.
Liczbę N drobnoustrojów występujących w badanej próbce należy obliczyć uwzględniając dwa kolejne
rozcieńczenia, według równania :
C
N
V n1 0,1 n2 d
gdzie:
ŁC jest sumą kolonii na wszystkich płytkach z dwóch kolejnych rozcieńczeń, z których conajmniej
jedna zawiera 15 kolonii
n jest liczbą płytek z pierwszego liczonego rozcieńczenia n jest liczbą płytek z drugiego liczonego
1 2
rozcieńczenia d jest współczynnikiem rozcieńczenia odpowiadającym pierwszemu liczonemu
rozcieńczeniu
V jest objętością posiewu nanoszonego na każdą płytkę, w mililitrach
Obliczony wynik należy zaokrąglić do dwóch znaczących cyfr. Jeżeli ostatnia cyfra jest mniejsza niż 5,
to nie zmieniać cyfry ją poprzedzającą. Jeżeli ostatnia cyfra jest równa lub większa od 5 , to cyfrę
poprzedzającą zwiększyć o 1.
Wynik jest liczbą drobnoustrojów w lml lub w lg zawartą między 1,0 a 9,9 pomnożoną przez 10
w odpowiedniej potędze.
Oszacowanie wyników obliczania:
A. Jeżeli dwie płytki zawierają mniej niż 15 kolonii, należy obliczyć średnią arytmetyczną (y) z
kolonii policzonych na obu płytkach, a wynik podać w sposób następujący:
N = y/d gdzie d jest współczynnikiem rozcieńczenia próbki
E
B. Jeżeli dwie płytki nie zawierają żadnych kolonii, to wynik podać w sposób następujący:
o mniej niż l/d drobnoustrojów w gramie (ml) gdzie d jest współczynnikiem rozcieńczenia próbki
Granice ufności
Przedział ufności określa statystyczny rozkład drobnoustrojów w próbce i jego wyznaczenie jest
konieczne w celu oszacowania ważności wyniku oraz uniknięcia zbyt rygorystycznej interpretacji.
(Należy pamiętać, że przyczyną innych zmnienności, w szczególności tych związanych z błędami
rozcieńczenia, jest stosowana metoda badania sama w sobie ingerencyjna, a ich zasięg zmienia się w
zależności od analityka i laboratorium).
Przedział ufności �, charakteryzujący rozrzut wyników mikrobiologicznych w próbce dla
prawdopodobieństwa 95% oblicza się według równania:
C C
1,92 1
� 1,96
B B B d
w którym:
B = V(n + 0,1n ), i gdzie
1 2
ŁC - suma kolonii na wszystkich liczonych płytkach
n - liczba płytek w pierwszym liczonym rozcieńczeniu
1
n - liczba płytek w drugim liczonym rozcieńczeniu
2
V - objętość posiewu nanoszonego na każdą płytkę w ml
d - współczynnik rozcieńczenia odpowiadający pierwszemu liczonemu rozcieńczeniu
Metoda oznaczania NPL polega na sporządzeniu szeregu kolejnych rozcieńczeń badanej próbki i
wykonaniu posiewu z tego samego rozcieńczenia do kilku (np. trzech - najczęściej, pięciu lub
dziesięciu) probówek zawierających płynne podłoże wzrostowe. Wstawiając probówki do cieplarki
otrzymamy wzrost tam, gdzie znalazła się przynajmniej jedna bakteria. Najczęściej stosowane systemy
posiewu, nazywane systemami  symetrycznymi" charakteryzują się taką samą liczbą probówek w
każdym rozcieńczeniu, oraz stosowaniem rozcieńczeń dziesięciokrotnych. W systemach
 asymetrycznych" stosuje się różną liczbę probówek dla różnych rozcieńczeń. Tablice NPL dla
symetrycznych systemów 3 - probówkowych według normy PN-ISO 7218:1998 przedstawia Załącznik
B. Wskaz
nik NPL odczytuje się z tablicy B.l na podstawie sekwencji liczb wyników dodatnich. W tablicy
B.l należy sprawdzić, czy wybrane sekwencje wyników dodatnich są do przyjęcia ze statystycznego
punktu widzenia, co zależy zarówno od liczby badanych próbek, jak i od decyzji przyjęcia lub
odrzucenia wyników z kategorii 2 lub 3 (patrz tablica B.2).
II. Określanie całkowitej liczby drobnoustrojów (łącznie żywych i martwych):
�� Metodą mikroskopowa w komorach hemocytometru lub ich odmianach specjalnie
przystosowanych do potrzeb bakteriologii, przez liczenie komórek w rozmazach o znanej
powierzchni i wykonanych znaną ilością płynu specjalnymi mikropipetami lub ezami
miarowymi. Pod mikroskopem można też zliczać znajdujące się.po filtracji na powierzchni filtru
bakterie zabarwione barwnikiem (np.fuksyną zasadową).
�� Metodą turbidymetryczna lub nefelomertyczna. w których określa się stopień rozproszenia lub
pochłaniania przez bakterie promieni świetlnych przepuszczanych przez badany płyn, a przez
porównanie z odpowiednimi standardami oznacza ich liczbę.
�� Metoda pomiaru impedancji (oporu przepływu prądu zmiennego). W trakcie wzrostu bakterii,
na skutek ich przemian metabolicznych następują zmiany impedancji, które wykrywa się
elektronicznie. Pozwala to wykalibrować krzywą wzrostu, z której można odczytać jakiej liczbie
żywych komórek drobnoustrojów odpowiada mierzona zmiana impedancji (np. zmiana
impedancji wynosząca 0,8 występuje przy liczbie 105cfu bakterii w 1 ml moczu).
Inne metody np. wykorzystujące fakt, że w danym gatunku bakterii mniej więcej stała jest zawartość
azotu i fosforu. Oznaczenie ilości azotu organicznego lub fosforu w zawiesinie bakterii, a także białek i
kwasów nukleinowych pozwala oszacować ich ilość.
ZAKAŻENIA UKA
ADU MOCZOWEGO - ZUM Przykład analizy ilościowej w mikrobiologii
lekarskiej
Kliniczne postacie ZUM:
1 .bakteriuria bezobjawowa
2. zapalenie cewki moczowej
3. zapalenie pęcherza moczowego
4. zapalenie gruczołu krokowego
5. ostre odmiedniczkowe zapalenie nerek
6. przewlekłe odmiedniczkowe zapalenie nerek
Drobnoustroje etiologiczne:
Pałeczki Gram-ujemne (głównie z rodziny Enterobacteriaceae ):
�� Escherichia coli (50% - 90%) - serotypy uropatogenne
�� Proteus mirabilis
�� Klebsiella pneumoniae
�� Enterobacter sp.
�� Proteus vulgaris " Pseudomonas aeruginosa Ziarenkowce Gram (+):
�� Enterococcus faecalis - enterokoki
�� Streptococcus betahemolizujący z grupy B - paciorkowce:
Gronkowce:
�� Staphylococcus epidermidis
�� Staphylococcus saprophyticus
Grzyby:
�� Candida albicans
Pierwotniaki
Diagnostyka mikrobiologiczna zum opiera się na:
�� analizie ilościowej i jakościowej odpowiednio pobranej próbki moczu
�� określeniu obecności lub braku czynnika hamującego wzrost bakterii Gram(+) i Gram(-)
�� identyfikacji patogenu
�� określeniu wrażliwości na leki stosowane w terapii zum
Pobieranie próbek moczu do badanie bakteriologicznego:
�� ze środkowego strumienia
�� za pomocą cewnika
�� przez nakłucie nadłonowe
�� Mocz należy pobierać rano.
�� od kobiety:
o umyć ręce wodą z mydłem, osuszyć jednorazowym ręcznikiem
o umyć dokładnie krocze bieżącą wodą z mydłem, a jeśli to konieczne okolice ujścia cewki
moczowej przetrzeć tamponem nasączonym 3% wodą utlenioną
o oddać około połowy zawartości moczu do ustępu, a następnie nie przerywając strumienia
pobrać około 5 ml moczu bezpośrednio do jałowego naczynia.
o nie wolno dotykać brzegów oraz wewnętrznej powierzchni naczynia i nakrętki.
o próbę należy możliwie najszybciej przesłać do laboratorium, a jeśli nie jest to możliwe
wstawić do lodówki na dolną półkę (temp.+ 4�C) maksymalnie na 3 h.
�� od mężczyzny:
o umyć ręce wodą z mydłem, osuszyć jednorazowym ręcznikiem
o całkowicie ściągnąć napletek i umyć żołądz
prącia bieżącą wodą z mydłem
o oddać około połowy zawartości moczu do ustępu, a następnie nie przerywając strumienia,
pobrać około 5ml moczu bezpośrednio do jałowego naczynia
o nie wolno dotykać brzegów oraz wewnętrznej powierzchni naczynia i nakrętki.
o próbę należy możliwie najszybciej przesłać do laboratorium, a jeśli nie jest to możliwe
wstawić do lodówki na dolną półkę (tem.+ 4�C) maksymalnie na 3 h.
�� od niemowląt i małych dzieci:
o osoba pobierająca myje dokładnie ręce wodą z mydłem i osusza je jednorazowym
ręcznikiem
o należy rozchylić nóżki dziecka, dokładni umyć okolice ujścia cewki moczowej wodą z
mydłem, osuszyć wyprasowaną pieluchą tetrową lub ręcznikiem.
o okolice ujścia cewki moczowej przetrzeć tamponem nasączonym 3% wodą utlenioną.
o należy koniecznie pobrać mocz bezpośrednio do jałowego pojemnika.
o nie wolno przy pobieraniu moczu do badań mikrobiologicznych
o stosować woreczków.
o nie wolno przelewać moczu oddanego do nocnika. Próbę należy możliwie najszybciej
przesłać do laboratorium, a jeśli nie jest to możliwe wstawić do lodówki na dolną półkę
(tem.+ 4�C) maksymalnie na 3 h.
UWAGA: Mocz na badanie w kierunku Chlamydia trachomatis należy pobrać z pierwszego
strumienia do jałowego pojemnika.
�� mocz pobierany od pacjenta cewnikowanego.
o do badań należy pobrać mocz po wymianie cewnika.
o należy wyjąć stary cewnik, umyć dokładnie okolice krocza wodą z mydłem, przetrzeć
tamponem nasączonym 3% wodą utlenioną.
o po założeniu nowego cewnika, pierwszą porcję moczu odrzucić, a następną pobrać do
jałowego pojemnika. mocz należy jak najszybciej dostarczyć do laboratorium, a jeśli to nie
jest możliwe, wstawić do lodówki w temp + 4�C (dolna półka) maksymalnie na 3h.
�� mocz pobierany przez nakłucie nadłonowe.
o wykonuje lekarz w warunkach aseptycznych przy całkowicie wypełnionym pęcherzu.
o badanie wykonuje się przy podejrzeniu jako czynnika etiologicznego bakterii beztlenowych,
lub jeśli w inny sposób nie można pobrać moczu do badania.
UWAGA: Taki sposób stosuje się tylko gdy jest to naprawdę konieczne.
Oznaczanie w moczu czynnika hamującego wzrost bakterii (próba Goulda):
Szczepy wzorcowe:
Staphylococcus aureus ATCC 25923,
Escherichia coli ATCC 25922
Wykonanie: próbkę moczu należy ogrzać w łaz
ni wodnej w temp. 60�C przez 1 godz. Następnie 2
krążki bibułowe nasycić próbką moczu i nałożyć oddzielnie na 2 płytki z podłożem wzrostowym
(Mueller Hinton z posianymi szczepami wzorcowymi wg standardu NCCLS). Płytki inkubować 18-20
godz. w temp.35-37�C .
Interpretacja: obecność każdej strefy zahamowania wzrostu szczepów wzorcowych przyjmuje się za
wynik dodatni (obecność czynnika)
Badanie ilościowe moczu:
�� metoda Hoepricha - posiew nierozcieńczonej próbki moczu ezą kalibrowaną lub mikropipetą
( metoda ez kalibrowanych) (a)
�� technika posiewu powierzchniowego z kolejnych rozcieńczeń próbki moczu
�� metoda zanurzeniowa - posiew na podłoża transportowo-hodowlane typu Uromedium (b)
Podłoża podstawowe:
�� tryptozowo-sojowe (TSA - tryptic soy agar) + 5% krwi baraniej (umożliwia wzrost wszystkich
potencjalnych patogenów)
�� Mac Conkey Agar - umożliwia wzrost i wstępne różnicowanie pałeczek Gram(-)
�� Sabouraud - ułatwia wzrost grzybów
�� Cled ( może zastąpić dwa pierwsze w/w podłoża)
Interpretacja wyników ilościowego badania moczu:
�� posiew dodatni (znamienna bakteriuria)
�� u dorosłych - 105 cfu/ml i więcej
�� u dzieci 104(103)cfu/ml
Posiew wątpliwy (podejrzenie zakażenia, wskazanie do pobrania następnej próbki):
�� u dorosłych - 104cfu/ml
�� u dzieci 103 (102)cfu/ml
Posiew ujemny: poniżej 103cfu/ml
Uwagi:
�� izolacja 2 i więcej drobnoustrojów świadczy o zanieczyszczeniu próbki moczu, badanie należy
powtórzyć
�� każda liczba komórek drobnoustrojów wyhodowana z moczu pobranego drogą nakłucia
nadłonowego świadczy o zum
a) metoda płytkowa - metoda tzw. kalibrowanych
próbka badana = objętość ezy mikropipety
Badany materiał nanosi się ezą lub mikropipetą na środek płytki, następnie wykonuje się ruch 1-
pionowo w górę, ruch 2-pionowo od góry ku dołowi, ruch 3-zygzakowaty po całej powierzchni płytki. Po
zakończeniu inkubacji podłoży z próbą badaną zlicza się kolonie wyrosłych drobnoustrojów i
uwzględniając objętość oblicza się liczbę drobnoustrojów w 1 ml.
Obliczenie:
liczba kolonii na płytce x objętość ezy lub mikropipety = liczba drobnoustrojów w 1 ml
np.: 123 x 103 = 1,2 x 105 cfu/ml
eza kalibrowana lub mikropipetą na 1 ml = 0.001 ml = 10-3
Pojemnik do oznaczania liczby bakterii techniką
zanurzeniową: a  zakrętka, b  łącznik, c  płytka
dwustronna z podłożami, d - bibuła