Rodzina Enterobacteriacea

Kryterium/Rodzaj	Salmonella	Escherichia coli	Proteus
Wzrost na agarze zwykłym	Wzrost obfity, kolonie zaokrąglone wypukłe	Okrągłe,wypukłe poszarpane brzegi, szare	Rozlane
Podłoże selektywne Sołtysa/ McCkonkeya	Tylko Salmonella rośnie/szare nie rozklada laktozy	(czerwone czubki kolonii)Wyhamowane przez zieleń malach.i sole żółci/różowe rozkłada laktoze	(drobne kolonie)wyhamowany jak E.coli/szare nie rozkłada laktozy
Podłoże Kligara	Wytwarza siarkowodór, rozkłada glukozę wytwarza gaz	Rozkłada laktoze i glukoze,słupek może być rozerwany gazem	Słupek żółty skos czerwony-nie rozkłada laktozy,czarny pierścień-tworzy siarkowodór,wytwarza gaz
Podłożę Christiansena	Nie wytwarza ureazy	Nie wytwarza ureazy	Wytwarza ureaze
Glukoza	Rozkład z wytworzeniem gazu	Rozkład z wytworzeniem gazu	Rozkład z wytworzeniem gazu
Laktoza, błękit brometylenowy, próbówka Durnchama	Nie rozkłada(błękitne zabarwienie,brak gazu)	Rozkłada(żółte zabarwienie,gaz w próbówce)	Nie rozkłada(błękitne zabarwienie, gaz +/-)

Wszystkie gram -

Salmonella- pałeczkowate, rzadko ułożone

Proteus- rzadko ułożone pałeczki, może tworzyć formy nitkowate

E.coli- jak Proteus

Sprawdzanie paszy na zakażenie:

Namnożyć i posiać na pepton 24h 37 stopni(przednamnażanie)

Wybiórczo namnażające- Rapaporta-Vasilidisa (płynne które zawiera MgCl₂ i zieleń brylantową)41 stopni przez 24-48h,oraz na Muler-Kauffmana(żółć wołowa,zieleń brylantowa,jodek potasu)41 stopni,24-48h

Podłoza selektywno-różnicujące:

BGA-laktoza i sacharoza,zielen brylantowai czerwień fenolowa-kolonie rosną lekko różowe albo przeźroczyste

XLD-laktoza i sacharoza,zieleń brylantowa,dezoksyhalon sodu,lizyna,ksyloza,cytrynian żelazowo amonowy i tiosiarczan sodu,wskaźnikiem jest czerwień fenolowa

Apitesty-test wykorzystuje 10 cukrów,doodczytania wyników potrzebny jest klucz

Serologiczne-surowice HM-rzęskowe, aglutynacja szkiełkowa

Staphylococcus

P.Chapmana- różnicująco-wybiórcze- NaCl 10%(wybiórcze)agar,mannitol(selektywne) fuksyna fenolowa.Posiew prowadzimy w warunkach beztlenowych.Chorobotwórcze szczepy daja żółte podłoże

Streptococcus

P.Edwardsa-Chodorkowskiego-agar, krew, octan lub siarczan talu-hamuje wzrost innych bakterii;eskulina-czynnik różnicujący,filetr krystaliczny-wskaźnik

TKT-p.Edwardsa-Chodorkowskiego + toksyna gronkowca

Mycoplasma- poniżej 1nano metra,nie wytwarzają peptydoglikanu(nie maja ściany komórkowej)charakteryzuja się dlatego polimorfizmem(genetycznie) pleomorfizmem(pod wpływem środowiska) wzrost 3-6dni 95% N i 5% CO₂ .Mają bardzo zawężony metabolizm, podłoże wzbogaca się sterydami,kw.tłuszczowymi, purynami, pirymidynami

Cecha	Mykoplazma	Ureoplazma
Wielkość kolonii	0,1-0,6 mm	0,01-0,05 mm
Tempo wzrostu	48h	2-6 dni
Ureaza	-	+
pH	7-8	Ok. 6
Glukoza	+	-
Arginina	+	-
Wrażliwość na octan talu i erytromycynę	- i -	+ i +
Wzrost w obecności siarczanu manganu	-	brązowienie
Dwutlenek węgla	+/-	+

Erysipelothrix

Cecha	Erysipelothrix	Listeria
Hemoliza	Alfa	Beta
Eskulina	-	+
Siarkowodór	+	-
Trehaloza	-	+
Ramnoza	-	+
Katalaza	-	+

Metody homogenizacji materiału przy Mycobacteriaceae

1. Fosforanowa-do materiału dodajemy w stosunku 1:1 10% fosforanu trójsodowego, wytrząsamy i zostawiamy na 24h, odwirowujemy (3tys obrotów,10 min) Zlewamy supernatant,do osadu dodajemy wskaźnik i 9%HCl.Materiał można zbierać przez 3-4 dni

2. Ługowa- Petroffa- materiał mieszamy w stosunku 1:1 z 4% ługiem sodowym, wytrząsamy. Inkubujemy w 37stop przez 30min i znowu wytrząsamy. Materiał powinien się upłynnić. Dodajemy wskaźnik i 9%HCl odwirowujemy (3tys obrotów,10 min

3. Chlorcheksydynowa- mieszamy materiał w stosunku 1:2 z 0,2% chlorcheksydyną,wytrząsamy przez 20-30min,wirujemy przez 30min przy 3tys obrotów

4. Z N-acetylo-L-cysteiną i NaOH-mieszamy materiał w stosunku 1:2, inkubujemy w temp pokojowej przez 20min,dodajemy wody destylowanej i wirujemy 20 min, 3tys obrotów- to najbardziej rozpowszechniona metoda

---