Olak Ewelina
Pluta Anna
Rembowska Aleksandra
Biotechnologia, B-1
Laboratorium z biotechnologii
Ćwiczenie 2
Temat:
Biosynteza α - amylazy bakteryjnej hodowli wstrząsanej.
Data wykonania ćwiczenia: 10.03.2009 r.
Wstęp teoretyczny
Skrobia ma budowę łańcucha α - glikozydowego. W czasie hydrolizy rozpada się na cząsteczki glukozy, które są homopolimerami zwanymi glukozanami lub glukanami.
Dwoma głównymi składnikami skrobi są:
amyloza
amylopektyna
Amyloza nie ma rozgałęzień i jest zbudowana jest z reszt glukozy połączonych wiązaniami α - 1,4 - glikozydowymi.
Amylopektyna jest rozgałęzioną formą skrobi, w której na jedno wiązanie α -1,6-glikozydowe przypada około trzydzieści wiązań α-1,4-glikozydowych. Amylopektyna charakteryzuje się mniejszym stopniem rozgałęzienie niż glikogen.
Zarówno amylopektyna, jak i amyloza są szybko hydrolizowane przez α - amylazę.
Skrobia jest najważniejszym źródłem węglowodanów w pożywieniu i znajduje się kaszach, ziemniakach, roślinach strączkowych i innych warzywach.
Cel ćwiczenia
Celem ćwiczenia jest poznanie zasad prowadzenia hodowli wstrząsanej oraz zbadanie wpływu wybranego parametru (składu pożywki) dla rozwoju drobnoustrojów.
Materiał i metodyka
Materiał biologiczny
Stosujemy szczep Bacillus licheniformis wyhodowany w Instytucie Biochemii Technicznej Politechniki Łódzkiej. Szczep, uprzednio przechowywany na skosach agarowych w temperaturze 4oC, został uaktywniony poprzez przeniesienie na świeże skosy i inkubację w temperaturze 39oC w ciągu 1 godziny.
Uaktywnione szczepy zostały przeniesione do kolb o różnym składzie pożywki (różne stężenie laktozy). Następnie prowadzono hodowlę wstrząsaną przy parametrach:
obroty wstrząsarki - 240 rpm
amplituda - 4,5 cm
temperatura - 39oC
czas procesu - 40 godzin
Metody analityczne
Oznaczenie aktywności α - amylazy w cieczach po hodowli Bacillus licheniformis
Wykonanie
Do oznaczenia aktywności stosujemy metodę Fischera-Steina. Za jednostkę aktywności przyjmuje się taką ilość enzymu, która w ciągu 3 minut w temperaturze 25oC hydrolizuje 1% roztwór skrobi, uwalniając taką ilość cukrów redukujących, która odpowiada 1 mg maltozy.
Z kolb po hodowli wstrząsanej o różnym stężeniu laktozy w pożywce pobieramy po 0,5 ml cieczy pohodowlanej i rozcieńczamy odpowiednio wodą destylowaną:
0,5% - 200-krotne rozcieńczenie
1% - 400-krotne rozcieńczenie
2% - 600-krotne rozcieńczenie
3% - 600-krotne rozcieńczenie
Z odpowiednio rozcieńczonych roztworów pobieramy po 0,5 ml. Przenosimy do probówek zawierających po 0,5 ml 1% roztworu skrobi. Następnie inkubujemy przez 3 minuty w temperaturze pokojowej. Po upływie tego czasu dodajemy po 1 ml kwasu 3,5-dinitrosalicylowego.
Równolegle wykonujemy próbę kontrolną o składzie: 0,5 ml wody destylowanej, 0,5 ml 1% roztworu skrobi, 1 ml kwasu 3,5-dinitrosalicylowego.
Następnie mieszaniny wstawiamy do wrzącej łaźni wodnej na 5 minut, po czym schładzamy.
Dodajemy po 8 ml wody destylowanej i dokonujemy pomiaru absorabancji na „SPECOL-u” przy długości fali 540 nm wobec próby kontrolnej.
Wyniki
Tabela 1.: Wyniki pomiarów absorbancji i aktywności
Stężenie laktozy [%] |
Absorbancja |
Aktywność α - amylazy [F-S/cm3] |
0,5 |
0,415 |
332 |
1 |
0,290 |
464 |
2 |
0,325 |
780 |
3 |
0,361 |
866 |
Przykładowe obliczenia:
Akt = A540 * R * 4 (z krzywej wzorcowej)
Dla 0,5%:
Akt = 0,415 * 200 * 4 = 332
Tabela 2.: Wyniki zbiorcze
|
Aktywność α - amylazy [F-S/cm3] |
|||
Stężenie laktozy[%] |
0,5 |
1 |
2 |
3 |
Grupa 1. |
208 |
360 |
804 |
768 |
Grupa 2. |
260 |
485 |
811 |
993 |
Grupa 3. |
240 |
608 |
1080 |
1032 |
Grupa 4. |
332 |
464 |
780 |
866 |
Grupa 5. |
124 |
222 |
568 |
600 |
Grupa 6. |
216 |
328 |
756 |
804 |
Grupa 7. |
188 |
400 |
936 |
1032 |
Wnioski
W zakresie 0,5% - 2% laktozy rośnie aktywność α - amylazy. Powyżej 2% następuje zahamowanie wzrostu.
Największa aktywność α - amylazy wystąpiła przy 3%, co sugeruje, że optymalne stężenie laktozy znajduje się pomiędzy 2% a 3%.
Oznaczenie wzrostu biomasy
Wykonanie
Oznaczenie wykonujemy metodą pośrednią poprzez pomiar zmętnienia w zawiesinie pohodowlanej, po 20-krotnym rozcieńczeniu wodą destylowaną.
Pomiar wykonujemy na „SPECOL - u” przy długości fali 535 nm, stosując jako próbę kontrolną wodę.
Wyniki
Tabela 3.: Wyniki pomiarów stężenia biomasy
Stężenie laktozy [%] |
Stężenie biomasy |
0,5 |
0,09 |
1 |
0,125 |
2 |
0,400 |
3 |
0,370 |
Tabela 4.: Wyniki zbiorcze pomiaru stężenia biomasy
|
Stężenie biomasy |
|||
Stężenie laktozy [%] |
0,5 |
1 |
2 |
3 |
1. |
0,31 |
0,47 |
0,86 |
0,80 |
2. |
0,35 |
0,48 |
0,83 |
0,75 |
3. |
0,3 |
0,37 |
0,820 |
0,80 |
4. |
0,09 |
0,125 |
0,400 |
0,370 |
5. |
0,257 |
0,331 |
0,79 |
0,7 |
6. |
0,23 |
0,31 |
0,85 |
0,72 |
7. |
0,28 |
0,51 |
0,88 |
0,83 |
Wnioski
W zakresie od 0,5% do 2% nastąpił gwałtowny wzrost stężenia biomasy wraz ze wzrostem stężenia laktozy. Powyżej 2% obserwujemy spadek stężenia biomasy.
3