Tabela 10.7. Skład najczęściej stosowanych buforów do elektroforezy
Bufor |
Roztwór roboczy |
Roztwór stężony (na litr) | |
Tris-boran |
0,5 x: 0,045 M Tris-boran |
5 x:Tris |
54 g |
(TBE) |
0,001 M FDTA |
kwas borowy |
27.5 g |
0,5 M EDTA (pH 8,0) |
20 ml | ||
Tris-octan |
1 x : 0,04 M Tris-octan |
50 x: Tris |
242 g |
fTAE) |
0,001 M EDTA |
kwas octowy lodowaty |
57,1 ml |
0,5 M EDTA (pH 8.0) |
100 ml | ||
Tris-fosforan |
1 x: 0,09 M Tris-fosforan |
10 x: Tris |
108 g |
(TPE) |
0.002 M EDTA |
85% kwas fosforowy (1,679 g/ml) 15,5 ml | |
0,5 M EDTA (pH 8,0) |
40 ml | ||
Zasadowy |
1 x: 50 mM NaOH |
1 x: 10 M NaOH |
5 ml |
1 mM EDTA |
0.5 M EDTA (pH 8,0) |
2 ml |
jednak zwrócić uwagę, że ruchliwość elektroforetyczna barwnika buforu obciążającego jest na ogół różna od ruchliwości elektroforetycznej DNA. Przykłady najczęściej stosowanych elektroforetycznych buforów obciążających podano są w tab. 10.8.
Do uwidocznienia DNA po lub w trakcie elektroforezy stosuje się standardowo bromek etydyny, który interkalujc pomiędzy sąsiednie pary zasad dwuniciowego DNAUbecnośclnterkalatora zmniejsza ruchliwość elektroforetyczną DNA o ok. 15%. Powinowactwo bromku etydyny do jednoniciowych kwasów nukleinowych jest znacznie mniejsze.
Standardową elektroforezę w żelu agarozowym można przeprowadzać w warunkach denaturujących, aby uzyskać bądź utrzymać jednoniciową konformację kwasu nukleinowego (Sambrook i wsp. 1989).
Tabela 10.8. Skład najczęściej stosowanych tzw. buforów obciążających
Bufor |
Skład (bufor 6 x stężony) |
Temperatura przechowywania | |
1 |
błękit bromofcnolowy cyjanian ksylenu sacharoza |
0,25% 0,025% 40% |
4*C |
1! |
błękit bromofcnolowy cyjanian ksylenu Ficoll. typ 400 |
0,25% 0,025% 15% |
pokojowa |
II! |
błękit bromofenolQ\vy cyjanian ksylenu glicerol |
0,25% 0,025% 30% |
4°C |
IV |
błękit bromofcnolowy sacharoza |
0,25% 40% |
4°C |
Zasadowy |
NaOH EDTA Ficoll, typ 400 zieleń bromokrczolowa cyjanian ksylenu |
300 mM 6 mM 18% 0,15% 0,25% |
4°C |
439