img235

wanych odważek dodać 9-krotną ilość jałowego płynu fizjologicznego i dokładnie utrzeć na jednolitą masę. Rozcierać pod przykryciem z jałowej gazy, dodając płynu do rozcieńczeń porcjami po ok. 5 cm³;

-    wykonać rozcieńczenia. Po homogenizacji próbkę pozostawić na 1 h w temp. ok. 4°C do oddzielenia się warstwy płynnej. Tak przygotowany roztwór jest rozcieńczeniem 10^-1, służącym do przygotowania kolejnych rozcieńczeń (10^-2, 10^-3 itd.), wykonanych według schematu (rys. 11.3);

-    wykonać metodą płytek lanych (rozdz. 9) posiew zawiesiny z kolejnych przygotowanych rozcieńczeń. Z każdego rozcieńczenia wykonać posiewy na dwóch równoległych płytkach;

-rozpuścić podłoże agarowe - agar wzbogacony, schłodzić do temp. ok. 45°C, zalać płytki z badanym materiałem, pozostawić do zastygnięcia;

-    odwrócić płytki dnem do góry i inkubować w temp. 30°C przez 72 h;

-    odczyt wyników - policzyć wyrosłe kolonie, uwzględniając rozcieńczenie, podać wynik w 1 g mięsa ryby;

-    interpretacja wyników:

	Klasy jakości mikrobiologicznej ryb
	A	B	C
Ogólna liczba drobnoustrojów tlenowych w 1 g mięśni	< 500	500-10*000	10 000-1 000 000

Ryby klas A i B są dobrej jakości mikrobiologicznej, mogą być przeznaczone do konsumpcji lub przetwórstwa. Ryby zaliczane do klasy C należy przeznaczyć do natychmiastowego spożycia.

19. MIKROBIOLOGICZNA OCENA PRZETWORÓW RYBNYCH

19.1. Wprowadzenie

Zakres badań mikrobiologicznych ryb i przetworów rybnych określają Polskie Normy: PN-89/A-86730 i PN-80/A-86735. Przedmiotem pierwszej z nich są metody badań mikrobiologicznych ryb świeżych, ryb mrożonych, solonych, wędzonych i marynowanych, prezerw, konserw oraz rybnych wyrobów garmażeryjnych. Norma druga określa pobieranie próbek konserw i prezerw rybnych do badań mikrobiologicznych.

Próbki do badań mikrobiologicznych należy pobierać z zachowaniem warunków jałowości, w taki sposób, aby skład i jakość pobranego materiału nie uległa zmianie i próbka miała charakter reprezentatywny.

160