'i?
w różnych fazach rozwojowych roślin, względnie w różnych warunkach zewnętrzny^®-np. pod wpływem stresu. Cele te można osiągnąć przy użyciu zaproponowanej przez® Lianga i Pardee (1992) metody określającej zróżnicowanie składu produktóylp RT-PCR (DDRT-PCR). W pierwszym etapie część cząsteczek mRNA jest poddawr odwrotnej transkrypcji przy użyciu startera komplementarnego do ogona poli(Ą’ który zawiera dwa losowe nukleotydy selekcyjne od końca 3', np. 5'-TmcJ Otrzymane nici cDNA są następnie amplifikowane w reakcji PCR z użyciem Startej TnCA i startera dziesięcionukleotydowego o losowej sekwencji. Produkty amp| fikacji, znakowane radioaktywnie, są rozdzielane na długim żelu sekwencyjn ze względu na dużą liczbę prążków' otrzymywanych na autoradiogramach. Met tą można porównywać skład mRNA nie tylko w różnych tkankach roślini lecz również w liniach izogenicznych różniących się pod względem alleli dujących ważną cechę użytkową, np. odporność na patogenu. Przy tak zapl nowanym doświadczeniu metoda DDRT-PCR może doprowadzić do wyk: markera molekularnego sprzężonego z loeus cechy użytkowej lub do identyfi właściwego genu. m
Markery AFLP
Polimorfizm długości amplifikowanych fragmentów (AFLP) jest metodą unio liwiającą fingerprinting DNA, która łączy zalety PCR i k* LP [331. Picrwsg etap AFLP polega na trawieniu oczyszczonego DNA dwoma enzymami restrykS nymi (rys. 8.2.5). Jeden z enzymów, rozpoznający sekwencje sześcionukleotydŚ (np. EcoRT) przecina dwuniciowy DNA znacznie rzadziej niż drugi enzym (np Msel) właściwy dla sekwencji czteronukleotydowych. Do tak otrzymanych fragnij tów restrykcyjnych przyłączane są z obu stron krótkie adaptory. Dwa startery służ|S do preamplifikacji mają sekwencję komplementarną tło części adaptorowej i miejs restrykcyjnego oraz jeden selekcyjny nukleotyd na końcu 3'. Zadaniem nukleotydo selekcyjnych jest ograniczenie liczby amplifikowanych fragmentów. Po wstępn amplifikacji, w mieszaninie reakcyjnej znajdują się liczne fragmenty DNA, której rozcieńczeniu będą stanowić materiał matrycowy dla właściwej, selektyw| amplifikacji. Jest ona prowadzona z użyciem starterów, różniących się od tyj} z pierwszej fazy oeecnością dwóch dodatkowych nukleotydów selekcyjnych.^ końcach 3'. Starter wiążący się z miejscem EcoRl jest wyznakowany izotopem 3|| Powielone fragmenty zostają rozdzielone w sekwencyjnym, denaturującym że poliakryloamidowym. Autoradiogram otrzymany po ok. 1 dniu ekspozycji składa na ogół z ok. 50-100 prążków tworzony: h przez wyznakowane, jednonició| fragmenty EcoRl/Mse 1. Ze względu na duże zagęszczenie prążków odczytywą autoradiogramu znacznie ułatwia komputerowa analiza obrazu.
Markery AFLP są przeważnie dominujące, lecz mimo to znajdują prze wszystkim zastosowanie w konstrukcji silnie zagęszczonych map genetycznych! Ich główną zaletą jest możliwość analizy wielu segregujących loci na jedny autoradiogramie. Ze względu na dużą rozdzielczość i wiarygodność, AFLP je wykorzystywany do identyfikacji odmian hodowlanych.
Genomowy DNA po oczyszczeniu
3GAATTCE3 ■ CTTAAG*
STTAAfS
MAATTm
trawienie DNA EcoRl oraz Msel
f Fragmenty EcoRI/MseP)
5'
aattces^^eest
G —AATy
llgacja ż adaptorami |
Fragmenty EcoRI/Msel po Hgacji z adaplorami
5Wst AATTCCSESaSSrTTA' ™ TTAAG MMMM AA'
PCR
, ,| wstępna selekcja fragmentów bGna aattci
Przyłączenie starterów preselektywnych
BS1AATTCA-
■ITTAAGM
rrABS
CAATra
Przyłączenie starterów selektywny St (starter EcoRl znakowany radioaktywnie)_
OH3AATTCACG ■TTAAGTi--
PCR
właściwa selekcja fragmentów
5’gsiaattc,
Namnożone fragmenty zawierające sekwencje ACG/ATG
1
arnpliłikacja selektywna
5'
Rozdzielone fragmenty o różnej dtugości uwidocznione na kliszy rentgenowskiej
EH AATTCACGE3SS2US3ATGTTAC3
elektroforeza denaturującym żelu poliakrylamidowym
Rys. 8.2.5. Strategia otrzymywania markerów AFLP
Bioteehnolrw>;-