\
\
. wC'
gondii. Dąży się w niej do amplifikacji materiału genetycznego. W tym celu wykorzystuje-' się parę syntetycznych oligonukleotydów o sekwencjach komplementarnych do fragmentu poszukiwanego DNA, tzw. primerów (starterów) reakcji oraz termooporną polimerazę Taq. Najważniejsze w metodzie jest uzyskanie zwiększonej ilości DNA przed dalszą analizą.
Fazy metody:
1. Denaturacja DNA - w 92 - 96°C prowadząca do pękania wiązań wodorowych.
2. Przyłączenie startera (krótki fragment o znanej sekwencji) do komplementarnej sekwencji końców matrycy DNA, który będzie ulegał amplifikacji (temperatura ok. 45-55°C).
3. Synteza fragmentu DNA z udziałem polimerazy Taq (z bakterii Thermus aąuaticus), trifosforanów (dNTP) i jonów magnezu w temperaturze 70-75°C.
Etapy trwają łącznie 3-4 minuty i nazywane są cyklem. Proces prowadzi się w tzw. teremocyklerach, które są w pełni zautomatyzowane. Wyniki uzyskuje się już po kilku godzinach. g^Sscykli powiększa zawartość kwasu około miliona razy. Otrzymany DNA ma wielkość określoną przez zastosowaną parę starterów. Do identyfikacji uzyskanego w takiej ilości kwasu wykorzystuje się sondę genetyczną lub metodę rozdziału elektroforetycznego produktu amplifikacji w żelu agarozowym.
V W diagnostyce molekularnej do rozróżniania gatunków i ich szczepów najczęściej wykorzystuje się sekwencje komplementarne do DNA kodującego rRNA. Regiony te zawierają wielokrotnie powtórzone sekwencje zgrupowane w zespoły, co ułatwia ich wykrycie nawet przy niewielkiej ilości badanego materiału. Wykazują one przy tym stabilność wewnątrzgatunkową i bardzo duże zróżnicowanie międzygatunkowc. Niekiedy wykorzystuje się również genom mitochondrialny wykazujący większą zmienność niż jądrowy. DNA pochodzi najczęściej z krwi lub kalii. Można pozyskiwać go również z płynu mózgowo-rdzeniowego i owodniowego, gałki oka, cienkoiglowych bioptatów tkankowych czy popłuczyn oskrzelowych.
Metody genetyczne szczególnie przydatne są:
1. Gdy pasożyty lokalizują się poza przewodem pokarmowym i układem krwionośnym.
2. W diagnostyce inwazji larw zatrzymanych w rozwoju.
3. W różnicowaniu gatunków, których jaja i larwy są nieodróżnialne metodami klasycznymi.
4. Przy niskiej intensywności inwazji.
5. W przypadku niemożliwości hodowli pasożytów.
6. Gdy badania immunologiczne są niewystarczające lub niemożliwe do wykonania.
W Polsce metody biologii molekularnej mają zastosowanie w przypadku Entamoeba histolytica,. Plasmodium spp., Toxoplasmci gondii, Cryptosporidium spp., mikrosporydiów (np. Encephalitozoon spp.), Echinococcus multilocularis, Trichinella spp. i patogenów przenoszonych przez kleszcze (Babesia spp., Anaplosma spp., Borrelia spp.).
22