DSC00198 (10)

. aktwynoid ******

PttygorowIM iv siaiyw.c M<M ***** ''^/y'. ’ _k,_mlr(>i_n« i W* “* ^nowego pH 5,6

„    ⁵ «o rriM buforu

^Ł,c“    ^aariantu (rozcieńczonego

*Ł

wariant; korzenie kontrolni:, korzenie traktowane.    ^

Wykonanie:Do dwu osobnych probówek dod.n ki I I    Z jednego

0,5 cm³ 20 mM guajakolu + 0.5 cm¹ ekstraktu en/yro.u /c/    przy

n..x ra_ a , ,v , .„} « -na ^umm UłOł zmicray^ a*'-

długości fali 470 rtm

50x).Po dodaniu 0.5 cm’ 60 mM roztworu H₂Oj zmierzyć    natychmiast oznaczyć

a nastepmie za pomocą stopera mierzyć czas 4 minut I <> ^UP ^y absorbancję przy długości fali 470 nm Wynik zanotować w mbc    ₍j₍._/ynniko^w^ doda04P kolejno

Do każdego oznaczenia próby badanej (korzeń i/liści) wykonać [    ''    guajakolu * 0,5 Cffi

do jednej probówki: I cm¹ 50 mM buforu octanowego pil 5,6    4,5    «> nrzv długości fali

ekstraktu enzymatycznego (rozcieńczonego 50x). Brak HjOj. Oznaczyć ab,.

470 nm nie inkubując próby.    ^ oznaczenia (bufor

Odczyty absorbancji wykonać kalibrując Spektrofotometr względem buforu

octanowy pH 5,6).

Uzupełnić tabelę.

Wartości absorbancji (A) odczytać po 4 minutach inkubacji. Uzyskane wartości absorbancji z d P uśrednić. Końcowe wartości w tabeli przeliczyć na gram świeżej masy. Obliczenia wykonać uwzględniając: rozcieńczenie ekstraktu enzymatycznego oraz rozcieńczenie wynikające z homogenizacji (przykład pod tabelą).

Tabela aktywności peroksydazy.

	Rodzaj próby	Ilość prób badanych	) Wartości A	Średnia wartość A	Wartość A/gram świeżej masy
	Kontrolna z liści	2 i
1 Traktowana | z liści		2
Kontrolna z korzeni		2
^1 Traktowana z korzeni j		2			r~ 1

4