1. Przygotowanie materiału roślinnego do klasycznej analizy kariotypu.
Przed utrwalaniem preparatu komórkowego potrzebnego do wykonania analiz kariotypowych należy najpierw nagromadzić dużą ilość komórek roślinnych w stadium metafazy na materiale żywym co umożliwi uzyskanie maksymalnie skróconych chromosomów. Można wykorzystać do tego kilka odczynników:
• woda z lodem;
• 8-hydroksychinolina;
• kolchicyna;
• a-bromonaftalen.
Po otrzymaniu odpowiedniej próby badawczej, należy ją utrwalić mieszaniną lodowatego kwasu octowego i alkoholu etylowego lub metylowego w stosunku 3:1. Wykonanie preparatów można wykonać przy użyciu kilku metod:
• metoda zgniatania (maceracja w HC1 + barwienie + rozgniot);
• metoda maceracji enzymatycznej (maceracja w mieszaninie enzymów + rozgniot);
• metoda nakraplania (otrzymywanie mieszaniny protoplastów po trawieniu enzymami). Takie preparaty następnie należy wybarwić w celu uwidocznienia interesujących nas struktur. W zależności od przeznaczenia preparatu wykonuje się:
• barwienie proste, które umożliwia:
o niespecyficzne, równomierne wybarwienie chromatyny interfazowej i chromosomów mitotycznych;
o określenie liczby chromosomów, poziomu ploidalności, przemian chromosomowych;
o identyfikację chromosomów mitotycznych na podstawie morfologii (długość całkowita, położenie centromeru, długość ramion, obecność przewężenia wtórnego):
■ acetoorceina, acetokarmin;
■ metoda Feulgena - uwidacznia grupy aldehydowe w DNA (można używać także w mikroskopie fluorescencyjnym):
• maceracja w HC1 - pękanie pierścienia pentozowego dezoksyrybozy i wytworzenie grupy aldehydowej;
• odczynnik Schiffa (parafuksyna) - barwienie grupy aldehydowej.
Rysunek 1. i 2. Chromosomy barwione metodą Feulgena oraz acetokarminem
• barwienie różnicowe:
11