2150626326

2150626326



Zakład Biologii Molekularnej UMCS, wrzesień 2014

2.    Delikatnie mieszać przez 10 min., a następnie dodać 5 ml buforu C, zamieszać, odwirować (jeśli nie zaznaczono inaczej wszystkie wirowania wykonywać przy 3000 rpm przez 5 min. w 4°C) i zebrać supematant (frakcja 1 - zawierająca białka niewiążące się do DE-52),

3.    Do DE-52 dodać 50 ml 0,2 M NaCl w buforze C, zamieszać, odwirować i odrzucić supematant.

4.    Powtórzyć pkt 3.

5.    Do DE-52 dodać 5 ml 0,4 M NaCl (w celu elucji białek związanych z DE-52), mieszać przez 10 min. i po odwirowaniu zebrać supematant (frakcja 2).

Oczyszczanie PKA na P-11 celulozie

1.    Supematant zawierający białka niewiążące się do DE-52 (frakcja 1) dodać do 5 ml P-11 celulozy, delikatnie mieszać przez 10 min. po czym odwirować i supematant odrzucić.

2.    Do P-ll celulozy dodać 50 ml bufom C, zamieszać, odwirować i odrzucić supematant.

3.    Powtórzyć pkt 2.

4.    Następnie do P-ll celulozy dodać 5 ml 0,2 M NaCl w buforze C, mieszać przez 10 min. po czym odwirować i zebrać supematant zawierający aktywność kinazy białkowej A.

5.    Zebrany supematant poddać dializie (przepis - patrz załącznik do ćwiczeń) wobec bufom C z dodatkiem 50% glicerolu. Po zakończeniu dializy roztwór przechowywać w temp. -20° C.

Oczyszczanie CK2 na P-11 celulozie

1.    Supematant ulegający elucji przy 0,4 M NaCl (frakcja 2) rozcieńczyć dwukrotnie buforem C i dodać do 5 ml P-l 1 celulozy, delikatnie mieszać przez 10 min. po czym odwirować i supematant odrzucić.

2.    Do P-11 celulozy dodać 50 ml 0,2 M NaCl w buforze C, zamieszać, odwirować i odrzucić supematant.

3.    Powtórzyć pkt 2.

19



Wyszukiwarka

Podobne podstrony:
Zakład Biologii Molekularnej UMCS, wrzesień 2014 3.    Mieszaninę inkubować 30 min. w
Zakład Biologii Molekularnej UMCS, wrzesień 2014 UNIWERSYTET MARII CURIE-SKŁODOWSKIEJ WYDZIAŁ BIOLOG
Zakład Biologii Molekularnej UMCS, wrzesień 2014 5.    Kwaśny fenol (stały fenol nasy
Zakład Biologii Molekularnej UMCS, wrzesień 2014 5.    Górne fazy wodne przenieść do
Zakład Biologii Molekularnej UMCS, wrzesień 2014 7.    Bufor do precypitacji: 1,2 M N
Zakład Biologii Molekularnej UMCS, wrzesień 2014 11.    Supernatant odrzucić, a do
Zakład Biologii Molekularnej UMCS, wrzesień 2014 4.    Następnie do P-l 1 celulozy do
Zakład Biologii Molekularnej UMCS, wrzesień 2014 Materiały i odczynniki 1.    12-
Zakład Biologii Molekularnej UMCS, wrzesień 2014 Uwaga! Formowanie się sferoplastów można monitorowa
Zakład Biologii Molekularnej UMCS, wrzesień 2014 10.    Uzyskany osad DNA przemyć 1 m
Zakład Biologii Molekularnej UMCS, wrzesień 2014 starterów czy nieodpowiedniego stężenia jonów Mg+,
Zakład Biologii Molekularnej UMCS, wrzesień 2014 9. Odczynniki i zestaw do elektroforezy kwasów nukl
Zakład Biologii Molekularnej UMCS. luty 2015 6.    Zawiesinę mieszać poprzez vortekso
Zakład Biologii Molekularnej UMCS, wrzesień 2014Izolacja i elektroforetyczna analiza RNA z komórek
Zakład Biologii Molekularnej UMCS, wrzesień 2014Wykrywanie inhibitorów proteaz serynowych Proteazy
Zakład Biologii Molekularnej UMCS, wniesień 2014 Materiały i odczynniki 1.    Roztwór
Zakład Biologii Molekularnej UMCS, wrzesień 2014Izolacja kinaz białkowych z drożdży Saccharomyces
Zakład Biologii Molekularnej UMCS, wrzesień 2014Spis treści: 1.    Izolacja genomoweg
Zakład Biologii Molekularnej UMCS, wrzesień 2014Izolacja genomowego DNA z drożdży Saccharomyces

więcej podobnych podstron