2150626326
Zakład Biologii Molekularnej UMCS, wrzesień 2014
2. Delikatnie mieszać przez 10 min., a następnie dodać 5 ml buforu C, zamieszać, odwirować (jeśli nie zaznaczono inaczej wszystkie wirowania wykonywać przy 3000 rpm przez 5 min. w 4°C) i zebrać supematant (frakcja 1 - zawierająca białka niewiążące się do DE-52),
3. Do DE-52 dodać 50 ml 0,2 M NaCl w buforze C, zamieszać, odwirować i odrzucić supematant.
4. Powtórzyć pkt 3.
5. Do DE-52 dodać 5 ml 0,4 M NaCl (w celu elucji białek związanych z DE-52), mieszać przez 10 min. i po odwirowaniu zebrać supematant (frakcja 2).
Oczyszczanie PKA na P-11 celulozie
1. Supematant zawierający białka niewiążące się do DE-52 (frakcja 1) dodać do 5 ml P-11 celulozy, delikatnie mieszać przez 10 min. po czym odwirować i supematant odrzucić.
2. Do P-ll celulozy dodać 50 ml bufom C, zamieszać, odwirować i odrzucić supematant.
3. Powtórzyć pkt 2.
4. Następnie do P-ll celulozy dodać 5 ml 0,2 M NaCl w buforze C, mieszać przez 10 min. po czym odwirować i zebrać supematant zawierający aktywność kinazy białkowej A.
5. Zebrany supematant poddać dializie (przepis - patrz załącznik do ćwiczeń) wobec bufom C z dodatkiem 50% glicerolu. Po zakończeniu dializy roztwór przechowywać w temp. -20° C.
Oczyszczanie CK2 na P-11 celulozie
1. Supematant ulegający elucji przy 0,4 M NaCl (frakcja 2) rozcieńczyć dwukrotnie buforem C i dodać do 5 ml P-l 1 celulozy, delikatnie mieszać przez 10 min. po czym odwirować i supematant odrzucić.
2. Do P-11 celulozy dodać 50 ml 0,2 M NaCl w buforze C, zamieszać, odwirować i odrzucić supematant.
3. Powtórzyć pkt 2.
19
Wyszukiwarka
Podobne podstrony:
Zakład Biologii Molekularnej UMCS, wrzesień 2014 3. Mieszaninę inkubować 30 min. wZakład Biologii Molekularnej UMCS, wrzesień 2014 UNIWERSYTET MARII CURIE-SKŁODOWSKIEJ WYDZIAŁ BIOLOGZakład Biologii Molekularnej UMCS, wrzesień 2014 5. Kwaśny fenol (stały fenol nasyZakład Biologii Molekularnej UMCS, wrzesień 2014 5. Górne fazy wodne przenieść doZakład Biologii Molekularnej UMCS, wrzesień 2014 7. Bufor do precypitacji: 1,2 M NZakład Biologii Molekularnej UMCS, wrzesień 2014 11. Supernatant odrzucić, a doZakład Biologii Molekularnej UMCS, wrzesień 2014 4. Następnie do P-l 1 celulozy doZakład Biologii Molekularnej UMCS, wrzesień 2014 Materiały i odczynniki 1. 12-Zakład Biologii Molekularnej UMCS, wrzesień 2014 Uwaga! Formowanie się sferoplastów można monitorowaZakład Biologii Molekularnej UMCS, wrzesień 2014 10. Uzyskany osad DNA przemyć 1 mZakład Biologii Molekularnej UMCS, wrzesień 2014 starterów czy nieodpowiedniego stężenia jonów Mg+,Zakład Biologii Molekularnej UMCS, wrzesień 2014 9. Odczynniki i zestaw do elektroforezy kwasów nuklZakład Biologii Molekularnej UMCS. luty 2015 6. Zawiesinę mieszać poprzez vorteksoZakład Biologii Molekularnej UMCS, wrzesień 2014Izolacja i elektroforetyczna analiza RNA z komórekZakład Biologii Molekularnej UMCS, wrzesień 2014Wykrywanie inhibitorów proteaz serynowych ProteazyZakład Biologii Molekularnej UMCS, wniesień 2014 Materiały i odczynniki 1. RoztwórZakład Biologii Molekularnej UMCS, wrzesień 2014Izolacja kinaz białkowych z drożdży SaccharomycesZakład Biologii Molekularnej UMCS, wrzesień 2014Spis treści: 1. Izolacja genomowegZakład Biologii Molekularnej UMCS, wrzesień 2014Izolacja genomowego DNA z drożdży Saccharomyceswięcej podobnych podstron