01 podręcznk 2008 12 12

background image


PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBEK

do laboratoryjnych badań diagnostycznych

chorób zakaźnych zwierząt

Opracowanie: Główny Inspektorat Weterynarii


PROJEKT WSPÓŁFINANSOWANY ZE ŚRODKÓW UNII EUROPEJSKIEJ

I BUDŻETU PAŃSTWA

Warszawa 2008

background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

1

Spis treści

Spis użytych skrótów ................................................................................ 3

I.

Wstęp .................................................................................................. 4

II.

Część ogólna ..................................................................................... 5

a. Ogólna procedura pobierania próbek................................ ............ 6

b. Zasady pobierania poszczególnych rodzajów materiału

biologicznego ................................ ................................ .................. 8

i. Próbki od zwierząt żywych ................................ ................. 8

ii. Próbki od zwierząt martwych (próbki post-mortem) ......... 9

iii. Próbki środowiskowe ................................ .......................... 10

c. Procedury dodatkowe związane z pobieraniem próbek

od zwierząt w stadzie podejrzanym ................................ .............. 10

d. Zestaw do pobierania materiału biologicznego do

laboratoryjnych badań w zakresie chorób zakaźnych

zwierząt (ilości minimalne) ................................................................12

III. Wytyczne pobierania próbek do diagnostyki określonych

chorób zakaźnych zwierząt z zastosowaniem właściwej
metody badawczej ........................................................................... 13

a. Bydło ................................ ................................ .............................. 14

i. Enzootyczna białaczka bydła................................ .............. 14

ii. Gąbczasta encefalopatia bydła ................................ ........... 16

iii. Gruźlica bydła ................................ ................................ ..... 18

iv. Zakaźne zapalenie nosa i tchawicy / otręt bydła ............... 20

v. Zaraza płucna bydła ................................ ........................... 21

b. Zwierzęta świniowate ................................ ................................ .... 23

i. Afrykański pomór świń ................................ ...................... 23

ii. Choroba Aujeszkyego u świń ................................ .............. 24

iii. Choroba pęcherzykowa świń ................................ .............. 27

iv. Klasyczny pomór świń ................................ ........................ 32

c. Zwierzęta jednokopytne ................................ ................................ 36

i. Afrykański pomór koni ................................ ....................... 36

ii. Niedokrwistość zakaźna koni ................................ ............. 38

iii. Nosacizna ................................ ................................ ............ 39

iv. Wirusowe zapalenie tętnic koni ................................ ......... 40

v. Zaraza stadnicza ................................ ................................ . 42

d. Małe przeżuwacze ................................ ................................ .......... 43

i. Trzęsawka owiec ................................ ................................ . 43

e. Ptaki ................................ ................................ ............................... 45

i. Chlamydioza ptaków ................................ .......................... 45

ii. Grypa ptaków ................................ ................................ ...... 46

iii. Mykoplazmy drobiu ................................ ............................ 48

iv. Rzekomy pomór drobiu ................................ ....................... 50

f. Pszczoły ................................ ................................ .......................... 52

i. Zgnilec amerykański pszczół ................................ .............. 52

background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

2

ii. Zgnilec europejski ................................ ............................... 54

g. Zwierzęta akwakultury ................................ ................................ . 55

i. Bonamioza ................................ ................................ ........... 55

ii. Marteilioza ................................ ................................ .......... 57

iii. Wiosenna wiremia karpi ................................ .................... 59

iv. Wirusowa posocznica krwotoczna ................................ ...... 61

v. Zakaźna anemia łososi................................ ........................ 63

vi. Zakaźna martwica układu krwiotwórczego ....................... 65

h. Różne gatunki zwierząt ................................ ................................ . 67

i. Bruceloza ................................ ................................ ............. 67

ii. Gorączka Q ................................ ................................ .......... 70

iii. Listerioza................................ ................................ ............. 72

iv. Pęcherzykowe zapalenie jamy ustnej................................ . 74

v. Pryszczyca ................................ ................................ ........... 75

vi. Wąglik ................................ ................................ ................. 81

vii. Wścieklizna ................................ ................................ ......... 83

IV.

Dane adresowe laboratoriów weterynaryjnych ....................... 85

V.

Aktualizacja i zgłaszanie uwag do Podręcznika ...................... 89

VI.

Bibliografia ....................................................................................... 90

VII. Załączniki .......................................................................................... 94

a. Załącznik 1 – Pismo przewodnie do próbek przekazywanych

do laboratoryjnych badań diagnostycznych................................ .. 95

b. Załącznik 2 – Protokół pobrania prób ................................ ........... 96

c. Załącznik 3 – Zalecany sposób pakowania materiałów

biologicznych z podejrzeniem pryszczycy i/lub choroby

pęcherzykowej świń ................................ ................................ ....... 98

d. Załącznik 4 – Protokół pobrania prób krwi od świń do badań

kontrolnych w kierunku choroby Aujeszkyego............................. 100

e. Załącznik 5 – Arkusz wyników badań w kierunku brucelozy

u bydła/kóz/owiec/świń ................................ ................................ .. 102

f. Załącznik 6 – Arkusz wyników badań w kierunku enzootycznej

białaczki bydła ................................ ................................ ............... 103

g. Załącznik 7 – Opis prawidłowo pobranej próbki do badań w

kierunku BSE z wykorzystaniem szybkich testów ...................... 104

h. Załącznik 8 – Przygotowanie płynów utrwalających ................... 105


background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

3

Spis użytych skrótów

SKRÓT

ZNACZENIE

AGID

Test immunodyfuzji w żelu agarowym - Agar gel immunodiffusion

c-ELISA

Kompetencyjny test immunoenzymatyczny - competitive ELISA

ELISA

Test immunoenzymatyczny - Enzyme-linked immunosorbent assay

ELISA gB

Test immunoenzymatyczny - test ELISA IBR-IPV Serum gB Blocking

HA

Hemaglutynacja

IF

Odczyn immunofluorescencji

IFAT

Metoda immunofluorescencji - Indirect Immunofluorescence Antibody Test

MIT

Test izolacji wirusa na białych myszkach

NPLA

Odczyn seroneutralizacji - Neutralising peroxidase-linked assay

OA

Odczyn aglutynacji probówkowej

OKAP

Odczyn kwaśnej aglutynacji płytowej

OWD

Odczyn wiązania dopełniacza

PCR

Reakcja polimeryzacji łańcuchowej - Polymerase chain reaction

RT-PCR

Reakcja polimeryzacji łańcuchowej z odwróconą transkrypcją - Reverse-

transcription polymerase chain reaction

SN

Test seroneutralizacji

background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

4

I.

Wstęp

Podręcznik pobierania próbek do laboratoryjnych badań diagnostycznych

chorób zakaźnych zwierząt, zwany dalej Podręcznikiem, jest adresowany do

wszystkich jednostek i osób pobierających próbki od zwierząt w celu:

1. diagnostyki określonych chorób zakaźnych zwierząt,

2. sprawowania nadzoru nad zdrowiem zwierząt,

3. wystawiania certyfikatów poświadczających zdrowie zwierząt,

4. monitoringu skuteczności leczenia lub szczepień.

Celem Podręcznika jest ujednolicenie postępowania jednostek i osób

pobierających wyżej wskazane próbki w zakresie:

-

procedury pobierania próbek,

-

stosowania odpowiedniego sprzętu,

-

pakowania pobranych próbek,

-

zapewnienia

odpowiednich

warunków

termicznych

przy

przechowywaniu i transporcie próbek,

-

opisu pobranych materiałów i informacji, które powinny być

przekazane do laboratorium,

-

terminowego dostarczania próbek do odpowiednich laboratoriów

diagnostycznych.

Podręcznik nie jest dokumentem prawnie wiążącym i nie może stanowić

podstawy prawnej decyzji administracyjnych.

Wersje elektroniczne załączników niniejszego Podręcznika są dostępne na

stronie internetowej Głównego Inspektoratu Weterynarii (www.wetgiw.gov.pl).

background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

5

II. Część ogólna

Przy podejmowaniu decyzji dotyczących próbek, które będą przekazane do

laboratorium, niezbędne jest posiadanie znaczącego zasobu wiedzy o chorobach

zakaźnych oraz odpowiednich umiejętności pobierania próbek, gdyż badanie

laboratoryjne rozpoczyna się już w momencie próbkobrania, a pobierający próbkę w

ten sposób w badaniu tym uczestniczy. Źle pobrana, niewłaściwie przechowywana

lub źle przesłana próbka może być powodem fałszywie dodatnich lub ujemnych

wyników badań laboratoryjnych lub może nie nadawać się w ogóle do analizy.

Próbki mogą być pobierane od zwierząt żywych, zwierząt padłych, poddanych

ubojowi lub zabitych, jak również ze środowiska, w celach, które podano we
Wstępie.

Próbki powinny być pobierane z uwzględnieniem celu, kierunku badania

i metody, którą będą badane, a ich wielkość i liczba powinny pozwalać na uzyskanie

statystycznie ważnych wyników.

W przypadku chorób o przebiegu klinicznym pobrane próbki powinny być

reprezentatywne dla stanu zdrowia i stwierdzonych zmian. Wskazane jest pobranie

próbek od kilku zwierząt, co stwarza większe szanse na wykrycie czynnika

zakaźnego (wirusów, bakterii).

W programach nadzoru i monitoringu zdrowia zwierząt, przy braku

klinicznych przypadków chorób, liczba próbek powinna być adekwatna do

częstotliwości występowania poszukiwanego czynnika w populacji. Ta częstotliwość

może być różna dla różnych jednostek chorobowych i różnych stad.

Pobieranie próbek powinno przebiegać z zachowaniem ostrożności

i należytej uwagi, tak, aby unikać niepotrzebnego stresu lub zranienia zwierzęcia

jak również zagrożenia dla osoby/osób zaangażowanych w procedurę próbkobrania.

Ponadto, próbki powinny być pobierane w taki sposób, aby uniknąć ich skażenia

krzyżowego.

W każdym przypadku manipulacja materiałem biologicznym pochodzącym

od zwierząt żywych lub martwych wymaga zachowania ostrożności w celu

uniknięcia potencjalnego ryzyka zakażenia chorobami odzwierzęcymi, skażenia

środowiska lub rozprzestrzenienia się choroby. W związku z powyższym, należy

właściwie zabezpieczać zwierzęta i tkanki generujące niebezpieczeństwo

skażenia.

Wszystkie pobrane próbki powinny być starannie opakowane, oznakowane

i przekazane do laboratorium w najkrótszym możliwym czasie z zachowaniem

odpowiednich wymagań termicznych.

Specyficzne wymagania w zakresie pobierania próbek do badania w kierunku

określonej choroby z zastosowaniem określonej procedury badawczej są podane w

Części III niniejszego Podręcznika.

Szczegółowe procedury pobierania próbek (postępowanie zabezpieczające,

liczba próbek, częstotliwość badania, itp.) w ramach realizacji programów

background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

6

zwalczania chorób lub planów gotowości, zawarte są w opracowanych

i zatwierdzonych planach i programach i powinny być przestrzegane przy

wykonywaniu czynności związanych z ich wdrażaniem.

a. Ogólna procedura pobierania próbek

Przed pobraniem próbek należy starannie przeanalizować cel, dla

którego będą one pobrane, gdyż wpłynie on zarówno na ich rodzaj i liczbę,

jak i warunki, które będą musiały być zapewnione aby uzyskać wiarygodne

wyniki.


Materiał od żywych zwierząt należy pobierać bez zadawania zwierzęciu

zbędnego bólu oraz z zachowaniem szczególnej ostrożności w celu uniknięcia

niepotrzebnego stresu lub zranienia zwierzęcia, jak również zagrożenia dla

pobierającego próbkę lub innych osób uczestniczących w próbkobraniu.

Koniecznym może być mechaniczne poskromienie zwierzęcia, zastosowanie

środków uspokajających lub narkozy.

Miejsca, z których pobierane są próby, nie mogą być odkażane, ponieważ

nawet nieznaczna ilość środka odkażającego może inaktywować zarazek.
Należy takie miejsca oczyścić lub opłukać wodą bez detergentów i środków

dezynfekcyjnych. Próbki materiału biologicznego pobiera się czystymi

jałowymi narzędziami najlepiej jednokrotnego użycia.

Pobrane próbki powinny być oznaczone liczbą bieżącą, pod którą badane

zwierzę zostało wpisane na listę w protokole pobierania próbek (Załącznik 2, 4, 5

lub 6). Pobierający próbki każdorazowo powinien sprawdzać zgodność ich

oznakowania z oznakowaniem zwierząt, tak aby nie doszło do zamiany kolejności

w protokole.


Zużyty sprzęt i odzież ochronna jednorazowego użytku powinny być

wyrzucone do wyznaczonego do tego celu, szczelnie zamykanego pojemnika i

przekazane wyspecjalizowanej jednostce do utylizacji lub zutylizowane pod

urzędowym nadzorem w gospodarstwie. Miejsce, w którym pobierano materiał

zakaźny, po zakończeniu tych czynności oczyszcza się i odkaża, a pozostały

materiał

biologiczny

i/lub

części

zwłok

zwierząt

usuwa

się

w sposób uniemożliwiający szerzenie się choroby, zgodnie z obowiązującymi

przepisami.


Z uwagi na to, że materiał biologiczny może zawierać niebezpieczne

czynniki zakaźne, każda próbka pobranego materiału powinna być

odpowiednio opakowana i transportowana z zachowaniem szczególnych

środków ostrożności. Opakowanie musi zapewniać:

- dobre zabezpieczenie próbki, tak aby w czasie transportu nie

zmieniła ona swoich cech w stopniu uniemożliwiającym otrzymanie

prawidłowego wyniku,

- całkowitą ochronę przed zakażeniem ludzi zaangażowanych

w transport próbki.

background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

7

Każda pobrana próbka powinna być umieszczona w mocnym szklanym

lub plastikowym sterylnym, szczelnie zamykanym pojemniku (w miarę

możliwości zakręcanym korkiem z gumową podkładką lub uszczelką)
zabezpieczającym przed wyciekiem zawartości. Zamknięcie to należy okleić

dookoła wodoodporną taśmą samoprzylepną. Powierzchnię zewnętrzną

pojemnika należy po zamknięciu starannie zdezynfekować, a następnie

opłukać czystą wodą.

Każdy pojemnik należy zaopatrzyć w etykietę zawierającą:

- numer identyfikacyjny i opis zwierzęcia,

- rodzaj i numer próbki,

- datę i miejsce pobrania.


Przekazywanym próbkom powinno towarzyszyć pismo przewodnie

wskazujące m. in. nadawcę, pochodzenie przekazywanego materiału

biologicznego wraz ze stosowną informacją na jego temat, identyfikacją zwierząt,

od których pobrano próbki oraz

wskazaniem

kierunku badania,

w celu wykonania którego próbki są przekazywane (wzór pisma przewodniego

zawarto w Załączniku 1; wzór protokołu badania, zawierającego informacje na

temat zwierząt, rodzaju próbek, terminu ich pobrania, itp., zawarty jest w

Załącznikach 2, 4, 5 i 6).

Po starannym zapakowaniu próbki, pojemnik z próbką i załączonym

pismem przewodnim umieszcza się w kontenerze, mocnym kartonie lub

pudełku drewnianym i transportuje do właściwego laboratorium zgodnie z

zachowaniem odpowiednich wymagań czasowych, temperaturowych, itp.,

zawartych w Części IV Podręcznika.

Na opakowaniu zewnętrznym kontenera (pudełka), w którym przewozi

się pobrany materiał biologiczny, należy zamieścić następujące napisy

ostrzegawcze i informacje:

Materiał biologiczny zakaźny! Nie otwierać podczas transportu!

W sytuacjach szczególnych kontaktować się z

*

.......................................................

......................................................................................................................................

......................................................................................................................................

*

Podać imiona i nazwiska lub nazwy oraz adresy i telefony nadawcy i odbiorcy.

Wskazane jest, aby osoba odpowiedzialna za pobrane próbki (Powiatowy

Lekarz Weterynarii lub osoba przez niego upoważniona), zgłosiła w laboratorium

przewidywaną datę i godzinę dostarczenia próbki, aktualne swoje dane (imię

nazwisko, adres, telefony itp.), umożliwiające nawiązanie kontaktu, jeśli okaże

się to konieczne.

background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

8

b. Zasady pobierania poszczególnych rodzajów materiału biologicznego

i. Próbki od zwierząt żywych

Pobieranie próbek krwi

Krew jest materiałem biologicznym najczęściej poddawanym

badaniom

laboratoryjnym:

hematologicznym,

serologicznym,

wirusologicznym, bakteriologicznym, parazytologiczn ym. W każdym

przypadku próbki powinny być pobierane jałowo, a używany sprzęt

powinien być sterylny.

Do testów serologicznych krew pobiera się „na skrzep” (probówka bez

antykolagulantów). W celu pozyskania surowicy, krew pobraną
pozostawia się w temperaturze pokojowej na około 2 godziny. Po

wydzieleniu się surowicy skrzep można oddzielić od ścian probówk i

sterylną długą igłą, a następnie próbki umieścić w lodówce w

temperaturze 4°C. Po kilku godzinach lub następnego dnia próbki można

odwirować – 1000g/10-15min., surowicę zdekantować lub przenieść pipetą

do probówek typu Ependorf.

Do pozostałych wymienionych wyżej rodzajów badań krew pobiera się

do probówek z dodatkiem środków zapobiegających krzepnięciu takich jak

sole heparyny czy kwas etyleno-dwuamino 4-octowy (EDTA). Próbki
pobrane na antykoagulant należy delikatnie wymieszać. Do wykonania

reakcji PCR preferowany jest EDTA.

U dużych zwierząt krew pobiera się z żyły jarzmowej, u świń najlepiej

z żyły czczej przedniej, a u drobiu z żyły skrzydłowej.

Pobieranie próbek kału

Kał do badań powinien być świeżo oddany lub pobrany bezpośrednio z

prostnicy.

Próbka kału nie powinna być mniejsza niż 10g. Kał do badań

parazytologicz nych

powinien

wypełniać

cały

pojemnik.

Czas

przechowywania i transportu nie powinien przekraczać 24 godzin, a

próbki należy przechowywać i transportować w temperaturze około 4°C.

Alternatywną i często zalecaną metodą jest pobieranie wymazów z

prostnicy (albo kloaki u drobiu). Wymazówka w czasie pobierania musi

mieć kontakt z błoną śluzową, a jej powierzchnia powinna być pokryta

kałem. Pobrane wymazy najlepiej przechowywać i transportować w

temperaturze 4°C.

Pobieranie próbek ze skóry

W chorobach, które powodują powstanie zmian pęcherzowych należy

pobrać z zachowaniem zasad aseptyki, o ile to możliwe, 2g tkanki

nabłonkowej, nie mniej jednak niż 1g lub o powierzchni 2 cm

2

i umieścić w 5ml buforu fosforanowego z gliceryną w równych częściach,

albo buforu tris o pH 7,2 – 7,6, najlepiej 7,4. Z pęcherzy nieuszkodzonych

należy pobrać płyn aspirując go strzykawką i przenieść do sterylnych

probówek. Transportować w temperaturze 4°C.

background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

9

Pobieranie próbek z układu rozrodczego

Próbki można pobierać w dwojaki sposób: płucząc pochwę lub worek

napletkowy albo poprzez pobranie wymazów. Te ostatnie można pobierać
również z szyjki macicy, jak i z samej macicy. Nasienie pobiera się za

pomocą sztucznej pochwy lub przez sztuczną stymulację prącia. Do badań

przesyła się frakcję bogatą w plemniki. Do przesyłania wymagane są

specjalne podłoża transportowe.

Pobieranie próbek z oka (worka spojówkowego) i jamy nosowej

Próbki pobiera się w sposób delikatny z powierzchni spojówki.

Wymazó wki powinny być mocowane na elastycznych aplikatorach. Ze

względów bezpieczeństwa nie używa się wymazówek z aplikatorem
drewnianym (uchwytem, rękojeścią).

Wydzielinę z nosa pobiera się wymazówką zwilżoną w podłożu

transportowym, a kontakt wymazówki z wydzieliną powinien trwać około

1 minuty.

Pobieranie próbek mleka

Przed pobraniem próbek mleka należy dokładnie oczyścić

i wysuszyć strzyk i ujście kanału strzykowego bez używania środków

dezynfekcyjnych.

Pierwsze

strumienie

mleka

należy

usunąć,

a następne pobrać do pojemnika (probówki).

Do wykonania niektórych testów można pobierać z jednego

gospodarstwa mleko zbiorcze.

Mleko do testów serologicznych nie może być zamrażane,

podgrzewane, czy też gotowane jak też poddawane gwałtownemu

wytrząsaniu. Jeżeli przesłanie próbek do laboratoriu m opóźni się, można

dodać środek konserwujący.

Próbki do badań bakteriologicznych, jeżeli jest to konieczne, można

zamrażać.

ii. Próbki od zwierząt martwych (próbki post-mortem)

Po śmierci zwierząt można pobierać próbki tkanek do

przeprowadzania badań laboratory jnych w różnych kierunkach.

Szczegółowe procedury przeprowadzania sekcji zwłok są opisane w wielu

podręcznikach z zakresu anatomii patologicznej. Lekarz przeprowadzający

sekcję powinien legitymować się dużym zasobem wiedzy z obszaru chorób

zakaźnych i patologii, która pozwoli mu dokonać właściwego wyboru

tkanek i narządów do badań.

Sprzęt niezbędny do sekcji zależy od wielkości i gatunku zwierzęcia,

ale zazwycza j niezbędne są: nóż, piła, topór, skalpele, kleszcze, pęsety,

nożyczki, w tym również z jednym ramieniem tępym do otwierania jelit.

Narzędzia do pobierania próbek powinny być jałowe.

Przeprowadzający badanie musi posiadać wystarczającą ilość

kontenerów, pojemników z podłożami transportowymi dla określonych

próbek i kierunków badań. Niezbędne jest posiadanie i używanie w czasie

sekcji odzieży ochronnej takiej jak: kombinezony, fartuchy, rękawice i buty

gumowe, a także maski ochronne na twarz i oczy. Te ostatnie są

background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

10

szczególnie ważne, jeżeli u zwierzęcia podejrzewamy chorobę odzwierzęcą i

istnieje potencjalne ryzyko zakażenia.

Wykaz niezbędnego sprzętu i odzieży ochronnej przedstawiony jest na

stronie 12 niniejszego Podręcznika.

iii. Próbki środowiskowe

Próbki środowiskowe mogą być pobierane w celu monitorowania

higieny w miejscu przebywania zwierząt albo mogą stanowić element

nadzoru nad drogami rozprzestrzeniania się choroby. Pobieranie próbek

środowiskowych jest szczególnie ważne w zakładach wylęgowych, stacjach

unasienniania oraz rzeźniach.

Najczęściej pobieranym materiałem jest pomiot albo ściółka, świeży

kał. Wymazy pobierane są też z powierzchni przewodów wentylacyjnych,

urządzeń do karmienia i pojenia zwierząt. Pasza może być pobierana z

urządzeń do karmienia, jak również z silosów (zbiorników).

c. Procedury dodatkowe związane z pobieraniem próbek od zwierząt

w stadzie podejrzanym

Członkowie zespołu pobierającego próbki, przed przystąpieniem do

próbkobrania, powinni omówić plan czynności, ubrać odzież ochronną,

przeprowadzić dezynfekcję osobistą, a następnie rozpocząć przegląd stada

i badanie kliniczne zwierząt podejrzanych oraz pobrać próbki. Wykonując

powyższe czynności należy zachować szczególną staranność w celu uniknięcia

rozprzestrzenienia czynnika zakaźnego.

W podejrzanym stadzie przegląd zwierząt gatunków podatnych

przeprowadza się na podstawie aktualnej księgi rejestracji znajdującej się

w każdej siedzibie stada, odrębnie dla poszczególnych gatunków zwierząt

oznakowanych i ich numerów identyfikacyjnych (jeżeli zwierzęta posiadają
indywidualne oznakowanie).

Podczas przeglądu sporządza się wykaz zwierząt chorych, podejrzanych

o chorobę lub o zakażenie, a także zapisuje się wszystkie objawy chorobowe,

które mogą świadczyć o zakażeniu. Określa się również miejsca lokalizacji

poszczególnych zwierząt w gospodarstwie.

Przegląd zwierząt rozpoczyna się w pierwszej kolejności od części,

w której znajdują się zwierzęta uznawane przez właściciela lub przedstawiciela
właściciela za zdrowe. Zwierzęta chore, podejrzane o chorobę lub zakażenie bada

się na końcu przeglądu. Jeśli zalecenia tego nie można spełnić, szczególnie gdy

stado jest liczne a pomoc niewystarczająca, przegląd z konieczności rozpoczyna

się od zwierząt podejrzanych o zakażenie, chorobę lub od chorych.

Zwierzęta przebywające na pastwisku w pobliżu gospodarstwa zapędza się

do pomieszczeń inwentarskich. Zwierzęta przebywające na pastwisku z dala od

gospodarstwa, gromadzi i bada się na pastwisku, szczególnie, gdy zachodzi

obawa, że w czasie ich przemieszczania do obór mogłoby zwiększyć się ryzyko

background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

11

rozprzestrzeniania czynnika zakaźnego, zainfekowania innych zwierząt lub

środowiska.


W celu zmniejszenia stresu zwierząt możliwe jest zastosowanie środków

uspokajających oraz, jeżeli jest to wskazane, miejscowego znieczulenia.

Uspokojenie i znieczulenie korzystnie wpływa zarówno na bezpieczeństwo

obsługi jak i zwierząt. Zmniejsza również zagrożenie dla obsługi podczas badania

klinicznego, a przede wszystkim umożliwia: dokładne badanie i ocenę zmian

chorobowych, ocenę i wybór materiału biologicznego do badań oraz właściwe

pobranie próbek. Uspokojenie jest szczególnie ważne przy osobnikach trudnych

do poskromienia oraz sprawiających problemy podczas badania. Zwierzętom,

których nie można schwytać, środek uspokajający w iniekcji należy podać przy
użyciu lotek wyrzucanych z broni pneumatycznej.

Jeżeli przed badaniem i pobieraniem próbek wymagane jest oczyszczenie

miejsc niezbędnych do przeprowadzenia badania lub pobrania próbek (np. racic),

należy obmyć je czystą zimną wodą i miękkim kawałkiem tkaniny lub gąbki.

Nie należy stosować mydła, detergentów, chemicznych środków

dezynfekcyjnych lub dezynfekcyjno-myjących, gdyż środki te mogą inaktywować

czynniki chorobotwórcze w materiale biologicznym i spowodować, że próbka

będzie nieprzydatna do badania laboratoryjnego (wynik może być fałszywie
ujemny).

Narzędzia do pobierania próbki i pojemniki na próbki również nie mogą

mieć kontaktu ze środkami dezynfekcyjnymi, aż do chwili szczelnego zamknięcia

próbki w pojemniku.

Poza sporządzeniem protokołu pobrania próbek (Załącznik 2, 4, 5 lub 6),

każde zwierzę, od którego została pobrana próbka należy oznaczyć łatwo

dostrzegalnym znakiem np. farbą w aerozolu, aby można było je łatwo odszukać,

jeśli konieczne będzie powtórne pobranie próbek.


Po zakończonym badaniu klinicznym i pobraniu próbek wszyscy, którzy

brali w tych działaniach udział, powinni dokładnie zdezynfekować ręce,

narzędzia, najbliższe otoczenie i odzież ochronną. Odzież po zdjęciu należy

umieścić w podwójnych workach foliowych, worki dokładnie zamknąć, a ich

powierzchnie zewnętrzne zdezynfekować i przekazać wyspecjalizowanej firmie

do

utylizacji

lub

zutylizować

pod

urzędowym

nadzorem

w gospodarstwie.

Uwaga! Jeśli podejrzenie choroby zostanie potwierdzone, zaleca się aby

członkowie zespołu pobierającego próbki przez trzy dni unikali kontaktów ze

zwierzętami podatnymi oraz nie przebywali w miejscach gromadzenia się takich

zwierząt.

background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

12

d. Zestaw do pobierania materiału biologicznego do laboratoryjnych

badań rozpoznawczych chorób zakaźnych zwierząt (ilości minimalne)

W skład zestawu do pobierania materiału biologicznego do laboratoryjnych

badań rozpoznawczych dla chorób zakaźnych zwierząt wchodzi:

1. Kombinezon ochronny z kapturem ................................ .. 2 szt.

2. Fartuch gumowy ................................ ................................ 2 szt.

3. Pokrowce ochronne na buty lub buty gumowe .............. 2 pary

4. Rękawice gumowe ................................ .............................. 2 pary

5. Okulary ochronne lub maska na twarz ........................... 2 szt.

6. Środki przeciwbólowe i uspokajające

7. Pęseta ................................ ................................ ................... 2 szt.
8. Nożyczki chirurgiczne z ostrym końcem .......................... 2 szt.

9. Nożyczki z jednym końcem tępym ................................................ 2 szt.

10. Łyżeczki z ostrymi krawędziami ................................ ...... 2 szt.

11. Skalpele ................................ ................................ ............... 2 szt.

12. Strzykawki jednorazowe ................................ ................... 5 szt.

13. Igły do strzykawek ................................ ............................ 100 szt.

14. Probówki z igłą do pobierania krwi (min. 10 ml):

a) dla bydła ................................ ................................ .. 50 szt.

b) dla świń ................................ ................................ ... 40 szt.

15. Kleszcze donosowe dla bydła ................................ ............ 1 szt.

16. Kleszcze donosowe dla świń ................................ ............. 1 szt.

17. Zgłębnik do pobierania próbek śluzu w przypadku

podejrzenia o nosicielstwo ................................ ............... 1 szt.

18. Pałeczki do wymazów z nosa dla świń, jałowe

w probówce z podłożem transportowym .......................... 10 szt.

19. Probówki ze środkiem przeciwkrzepliwym (heparyna

lub sól potasowa EDTA) ................................ ................... 10 szt.

20.Pojemnik na próbki mały (20—30 ml) odporny na

rozbicie z zakręcanym korkiem ................................ ....... 4 szt.

21.Pojemnik na probówki duży (100—200 ml) wyłożony

materiałem amortyzacyjnym i resorbującym z

zakręcanym korkiem ................................ ......................... 2 szt.

22. Kontener do transportu, chłodzony ................................ 2 szt.

23. Roztwór 10% formaliny ................................ .....................

24. Soda kaustyczna w płatkach (0,5 kg) lub inne środki

dezynfekcyjne

25. Pisak wodoodporny ................................ ........................... 2 szt.

26. Naklejki samoprzylepne ................................ ................... 100 szt.
27. Taśma uszczelniająca ................................ ......................... 5 szt.

28. Worki foliowe na zużyte materiały ................................ . 100 szt.

Ponadto, wskazane jest, aby w czasie pobierania prób posiadać:

1. termometr lekarski,

2. notes i pisak,

3. kolorowy mazak lub farbę w aerozolu do znaczenia zwierząt,

4. latarkę, zapasowe baterie,

5. formularze druków oficjalnych (pismo przewodnie, listy zwierząt).

background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

13

III. Wytyczne pobierania próbek do diagnostyki określonych

chorób zakaźnych zwierząt z zastosowaniem właściwej
metody badawczej

Uwagi ogólne

Część III Podręcznika zawiera wytyczne w zakresie pobierania,

przechowywania i transportu próbek materiału biologicznego pobranego w celu

diagnostyki określonych chorób zakaźnych zwierząt przy zastosowaniu właściwej

metody badawczej.


Wytyczne uporządkowane są według zwierząt, od których pobierany jest

materiał biologiczny, i tak:

- Część zielona zawiera wytyczne pobierania próbek do diagnostyki

chorób zakaźnych bydła;

- Część różowa zawiera wytyczne pobierania próbek do diagnostyki

chorób zakaźnych zwierząt świniowatych;

-

Część granatowa

zawiera wytyczne pobierania próbek do diagnostyki

chorób zakaźnych

zwierząt jednokopytnych

;

-

Część fioletowa

zawiera wytyczne pobierania próbek do diagnostyki

chorób zakaźnych

małych przeżuwaczy

;

- Część pomarańczowa zawiera wytyczne pobierania próbek do

diagnostyki chorób zakaźnych ptaków;

- Część żółta zawiera wytyczne pobierania próbek do diagnostyki

chorób zakaźnych pszczół;

- Część niebieska zawiera wytyczne pobierania próbek do diagnostyki

chorób zakaźnych zwierząt akwakultury;

-

Część brązowa

zawiera wytyczne pobierania próbek do diagnostyki

chorób zakaźnych wspólnych dla

różnych gatunków zwierząt

.

Choroby przenoszone przez zwierzęta, które stanowią zagrożenie również dla

zdrowia ludzkiego (zoonozy) i w związku z tym wymagające szczególnej ostrożności,

zostały wskazane poprzez umieszczenie w punkcie UWAGI SPECJANE

następującej informacji: „Ze względu na

potencjalne ryzyko zakażenia osób

zaangażowanych w próbkobranie należy zachować szczególnie surowe środki

ostrożności.”

background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

14

BYDŁO

KIERUNEK BADANIA

ENZOOTYCZNA BIAŁACZKA BYDŁA

Enzootic bovine leucosis - EBL

METODA / TEST

AGID

ELISA

UWAGI SPECJALNE

MATERIAŁ DO

BADANIA

Krew zwierząt podatnych.

REPREZENTATYWNA

LICZBA PRÓBEK

W zależności od statusu epizootycznego regionu, liczba pobieranych próbek

powinna być zgodna z programem zwalczania lub kontroli EBL.

SPRZĘT NIEZBĘDNY

DO POBRANIA

POJEDYNCZEJ

PRÓBKI

· jałowa igła

· próbówka bez antykoagulantu

PROCEDURA

POBRANIA PRÓBKI

Krew należy pobierać jałową igłą z żyły jarzmowej. Probówkę bez

antykoagulantu po napełnieniu krwią do 2/3 objętości (około 7 ml) należy

zamknąć szczelnie korkiem.

WYMAGANIA
ZWIĄZANE Z

PRZECHOWYWANIEM

I TRANSPORTEM

Świeżo pobraną krew należy odstawić na około 2 godziny w temperaturze
pokojowej, a następnie (najlepiej tego samego dnia) dostarczyć do

laboratorium. W czasie transportu próbki krwi chronić przed

przemarznięciem lub nadmiernym przegrzaniem, gdyż powoduje to

hemolizę.

Próbki surowicy można przechowywać w lodówce( w temperaturze +5°C ±

3°C) do 7 dni lub zamrażarce (temperatura - 20°C ± 3°C).

DOKUMENTACJA

TOWARZYSZĄCA

· Załącznik 1 – Pismo przewodnie do próbek przekazywanych do

laboratoryjnych badań diagnostycznych

· Załącznik 6 – Arkusz wyników badania w kierunku enzootycznej

białaczki bydła

CZAS NA

DOSTARCZENIE

POBRANEGO

MATERIAŁU DO
LABORATORIUM

Najlepiej w dniu pobrania próbki.

W razie trudności w dostarczeniu próbek krwi do laboratorium w dniu ich

pobrania, można po uformowaniu się skrzepu w temperaturze pokojowej

przechować je do dnia następnego w temperaturze 2-8ºC.

LABORATORIUM

WETERYNARYJNE

POSIADAJĄCE

AKREDYTACJĘ

METODY

· ZHW w Warszawie, TP w

Ostrołęce

· PIWet-PIB w Puławach

· ZHW w Bydgoszczy

· ZHW w Bydgoszczy, OT we

Włocławku

· ZHW w Łodzi

· ZHW w Krakowie

· ZHW w Warszawie, TP w

Siedlcach

· ZHW w Warszawie, TP w

Ostrołęce

· ZHW w Opolu

· ZHW w Krośnie

· ZHW w Białymstoku

· ZHW w Białymstoku Oddz. w

Łomży

· ZHW w Gdańsku

· ZHW w Katowicach

· ZHW w Kielcach

· ZHW w Poznaniu

· ZHW w Poznaniu Prac. w Lesznie

· ZHW w Poznaniu Prac. w

Koninie

· ZHW w Szczecinie

· ZHW w Szczecinie Oddz. w

Koszalinie

· PIWet-PIB w Puławach

background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

15

PRAWODAWSTWO UE Dyrektywa Rady 64/432/EWG z dnia 26 czerwca 1964 r. w sprawie

problemów zdrowotnych zwierząt wpływających na handel wewnątrz
wspólnotowy bydłem i trzodą chlewną

PRAWODAWSTWO

POLSKIE

· Ustawa z dnia 11 marca 2004 r. o ochronie zdrowia zwierząt oraz

zwalczaniu chorób zakaźnych zwierząt

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 17 grudnia

2004 r. w sprawie określenia jednostek chorobowych, sposobu

prowadzenia kontroli oraz zakresu badań kontrolnych zwierząt

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 27 czerwca

2005 r. w sprawie szczegółowych wymagań weterynaryjnych

niezbędnych do uzyskania i zachowania uznania stada lub

gospodarstwa za urzędowo wolne lub wolne od chorób zakaźnych

zwierząt

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 25 listopada

2005 r. w sprawie zakresu, sposobu i terminów przekazywania

informacji o występowaniu chorób zakaźnych zwierząt podlegających

obowiązkowi zwalczania i rejestracji oraz o wynikach monitorowania

chorób odzwierzęcych i odzwierzęcych czynników chorobotwórczych a

także związanej z nimi oporności na środki przeciw drobnoustrojowe

· Rozporządzenie Rady Ministrów z dnia 30 maja 2007 r. w sprawie

wprowadzenia programu zwalczania enzootycznej białaczki bydła,

gruźlicy bydła, brucelozy u bydła, wścieklizny, gąbczastej

encefalolopatii oraz programu zwalczania i kontroli zakażeń wirusami
wysoce zjadliwej grypy ptaków dawny pomór drobiu w drobiu i ptaków

dzikich

· Rozporządzenie Rady Ministrów z dnia 18 grudnia 2007 r. w sprawie

wprowadzenia programu zwalczania enzootycznej białaczki bydła

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 16 stycznia

2008 r. w sprawie sposobu prowadzenia dokumentacji związanej ze

zwalczaniem chorób zakaźnych zwierząt

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 16 stycznia

2008 r. w sprawie sposobu prowadzenia dokumentacji związanej ze

zwalczaniem chorób zakaźnych zwierząt

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 5 marca

2008 r. w sprawie zwalczania enzootycznej białaczki bydła

background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

16

BYDŁO

KIERUNEK BADANIA

GĄBCZASTA ENCEFALOPATIA BYDŁA

Bovine spongiform encephalopathy - BSE

METODA / TEST

Szybki test

ELISA.

Szybki test Bio-

Rad.

Szybki test

Enfer TSE.

Szybki test

IDEXX.

UWAGI SPECJALNE

Ze względu na

potencjalne ryzyko zakażenia osób

zaangażowanych w

próbkobranie należy zachować szczególnie surowe środki ostrożności.

Przedmiotem badania jest wykrywanie patologicznej formy białka

prionowego (PrP

Sc

) szybkimi testami w próbkach pobranych z rdzenia

przedłużonego.

MATERIAŁ DO

BADANIA

Rdzeń przedłużony z regionem zasuwki (Załącznik 7 – Opis prawidłowo

pobranej próbki do badań w kierunku BSE z wykorzystaniem szybkich

testów).

REPREZENTATYWNA

LICZBA PRÓBEK

Zgodnie z programem zwalczania.

SPRZĘT NIEZBĘDNY

DO POBRANIA

POJEDYNCZEJ

PRÓBKI

Specjalna łyżeczka (szpatułka).

PROCEDURA

POBRANIA PRÓBKI

Do badania należy pobrać rdzeń przedłużony z rejonem zasuwki. Każdą

pobraną próbkę wkłada się do odrębnego pojemnika (patrz również

Załącznik 7)

WYMAGANIA

ZWIĄZANE Z

PRZECHOWYWANIEM

I TRANSPORTEM

Nie zamrażać, przechowywać w temperaturze 2-8°C.

DOKUMENTACJA
TOWARZYSZĄCA

· Załącznik 1 – Pismo przewodnie do próbek przekazywanych do

laboratoryjnych badań diagnostycznych

· Załącznik 2 – Protokół pobrania prób

CZAS NA

DOSTARCZENIE
POBRANEGO

MATERIAŁU DO

LABORATORIUM

Jak najszybciej.

LABORATORIUM

WETERYNARYJNE

POSIADAJĄCE

AKREDYTACJĘ

METODY

· ZHW w

Warszawie

· ZHW w

Warszawie

TP w

Siedlcach

· ZHW w

Gdańsku

· ZHW w

Poznaniu

Prac. w

Lesznie

· PIWet-PIB w

Puławach

· ZHW w

Gdańsku

· ZHW w

Krakowie

· PIWet-PIB w

Puławach

PRAWODAWSTWO UE

· Rozporządzenie Parlamentu Europejskiego i Rady nr 999/2001 z dnia

22 maja 2001 r. ustanawiające zasady dotyczące zapobiegania, kontroli

i zwalczania niektórych przenośnych gąbczastych encefalopatii

· Rozporządzenie Komisji (WE) nr 21/2008 z dnia 11 stycznia 2008 r.

zmieniające załącznik X do rozporządzenia (WE) nr 999/2001

Parlamentu Europejskiego i Rady w odniesieniu do wykazów szybkich

testów

PRAWODAWSTWO

· Ustawa z dnia 11 marca 2004 r. o ochronie zdrowia zwierząt oraz

background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

17

POLSKIE

zwalczaniu chorób zakaźnych zwierząt

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 17 grudnia

2004 r. w sprawie określenia jednostek chorobowych, sposobu

prowadzenia kontroli oraz zakresu badań kontrolnych zwierząt

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 25 listopada

2005 r. w sprawie zakresu, sposobu i terminów przekazywania

informacji o występowaniu chorób zakaźnych zwierząt podlegających
obowiązkowi zwalczania i rejestracji oraz o wynikach monitorowania

chorób odzwierzęcych i odzwierzęcych czynników chorobotwórczych a

także związanej z nimi oporności na środki przeciw drobnoustrojowe

· Rozporządzenie Rady Ministrów z dnia 30 maja 2007 r. w sprawie

wprowadzenia programu zwalczania enzootycznej białaczki bydła,

gruźlicy bydła, brucelozy u bydła, wścieklizny, gąbczastej

encefalolopatii oraz programu zwalczania i kontroli zakażeń wirusami

wysoce zjadliwej grypy ptaków dawny pomór drobiu w drobiu i ptaków

dzikich

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 16 stycznia

2008 r. w sprawie sposobu prowadzenia dokumentacji związanej ze

zwalczaniem chorób zakaźnych zwierząt

background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

18

BYDŁO

KIERUNEK BADANIA

GRUŹLICA BYDŁA

Bovine tuberculosis

METODA / TEST

Wykrywanie drobnoustrojów z rodzaju Mycobacterium w materiale

biologicznym. Obejmuje następujące etapy:

· wstępne badanie anatomopatologiczne próby tkankowej

· badanie mikroskopowe

· badanie hodowlane

· badanie biologiczne na zwierzętach laboratoryjnych

· identyfikację genotypową izolatów Mycobacterium.

UWAGI SPECJALNE

Ze względu na

potencjalne ryzyko zakażenia osób

zaangażowanych w

próbkobranie należy zachować szczególnie surowe środki ostrożności.

MATERIAŁ DO

BADANIA

Do badań diagnostycznych pobiera się:

· wycinki chorobowo zmienionych narządów i organów miąższowych,

takich jak: płuca, wątroba, śledziona wraz z okolicznymi węzłami

chłonnymi – w przypadku uboju, padnięcia lub zabicia bydła, które

wykazywało dodatni wynik w teście tuberkulinowym;

· węzły chłonne: okołogardzielowe, oskrzelowe, śródpiersiowe,

nadwymieniowe, kąta żuchwy, krezkowe oraz wnęki

wątroby – w przypadku braku zmian chorobowych oraz w przypadku

zabicia bydła, które wykazywało dodatni wynik w teście

tuberkulinowym;

· inne próby, w epizootycznie uzasadnionych przypadkach:

- kał,

- mleko,

- wydzielina narządów rodnych,

- wykrztusina,

- nasienie,

- mocz.

REPREZENTATYWNA

LICZBA PRÓBEK

Badana laboratoryjnie jest każda sztuka bydła tuberkulinododatniego

poddanego ubojowi lub zabiciu oraz każde zwierzę padłe, u którego w czasie

sekcji stwierdzono zmiany anatomo-patologiczne nasuwające podejrzenie

gruźlicy.

SPRZĘT NIEZBĘDNY

DO POBRANIA

POJEDYNCZEJ

PRÓBKI

Próby pobiera się czystymi, jałowymi narzędziami, najlepiej jednorazowego

użytku:

- wydzielina narządów rodnych, pobierana jest jałowym tamponem

lub kateterem;

- wyksztusina, pobierana jest pędzelkiem dotchawicowym;

- nasienie, pobierane jest za pomocą sztucznej pochwy;

- mocz od samic, pobierany jest kateterem.

Dodatkowo:

· mocny, sterylny, szklany lub plastikowy pojemnik, zamykany

szczelnym przykryciem zabezpieczającym przed wyciekiem zawartości;

· wodoodporna taśma samoprzylepna.
Do zapakowania wszystkich pobranych prób:

· kontener, mocny karton lub drewniane pudełko.

PROCEDURA

POBRANIA PRÓBKI

Miejsca, z których są pobierane próby nie powinny być odkażane, ze

względu na możliwość inaktywowania czynnika zakaźnego nawet przez

nieznaczną ilość produktu biobójczego. Miejsca te oczyszcza się lub płucze

wodą bez detergentów i produktów biobójczych.

Próby inne:

- Kał, pobierany bezpośrednio z prostnicy. Wielkość próbki – 2-5 g.

- Próby mleka, pobierane są jałowo w końcowej fazie udoju, w

objętości około 25-50 cm

3

z każdej ćwiartki. W okresie letnim do

próby mleka możemy dodać kwas borny, do uzyskania końcowego

stężenia w próbce 0,5%.

- Wydzielina narządów rodnych - objętość próbki 2-10 cm

3

.

background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

19

- Wyksztusina, pobierana jest pędzelkiem dotchawicowym.

- Nasienie - objętość próbki 10-50 cm

3

.

- Mocz - objętość próby około 100 cm

3

.

WYMAGANIA

ZWIĄZANE Z

PRZECHOWYWANIEM

I TRANSPORTEM

Każdą próbę umieszcza się w mocnym, sterylnym, szklanym lub

plastikowym pojemniku, zamykanym szczelnym przykryciem

zabezpieczającym przed wyciekiem zawartości. Przykrycie okleja się

dookoła wodoodporną taśmą samoprzylepną. Powierzchnię zewnętrzną

pojemnika po jego zamknięciu odkaża się, a następnie płucze się czystą

wodą i osusza. Każdy pojemnik zaopatruje się w etykietę zawierającą opis

zwierzęcia i jego numer identyfikacyjny, rodzaj próby, datę i miejsce jej

pobrania, imię i nazwisko oraz adres posiadacza zwierzęcia.

Próby zapakowane w sposób określony powyżej umieszcza się w
kontenerze, mocnym kartonie lub drewnianym pudełku i transportuje do

laboratorium w temperaturze 4-8°C. Dopuszcza się transport zamrożonych

prób, bez rozmrażania ich w trakcie transportu.

DOKUMENTACJA

TOWARZYSZĄCA

· Załącznik 1 – Pismo przewodnie do próbek przekazywanych do

laboratoryjnych badań diagnostycznych

· Załącznik 2 – Protokół pobrania prób

CZAS NA

DOSTARCZENIE

POBRANEGO

MATERIAŁU DO

LABORATORIUM

Próby przesyła się bezpośrednio do laboratorium, w możliwie najkrótszym

terminie.

LABORATORIUM

WETERYNARYJNE
POSIADAJĄCE

AKREDYTACJĘ

METODY

PRAWODAWSTWO UE

· Dyrektywa Rady 64/432/EWG z dnia 26 czerwca 1964 r. w sprawie

problemów zdrowotnych zwierząt wpływających na handel wewnątrz

wspólnotowy bydłem i trzodą chlewną

· Rozporządzenie Komisji (WE) nr 1226/2002 z dnia 8 lipca 2002 r.

zmieniające załącznik B do dyrektywy Rady 64/432/EWG

PRAWODAWSTWO

POLSKIE

· Ustawa z dnia 11 marca 2004 r. o ochronie zdrowia zwierząt oraz

zwalczaniu chorób zakaźnych zwierząt

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 23 listopada

2004 r. w sprawie zwalczania gruźlicy bydła

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 17 grudnia

2004 r. w sprawie określenia jednostek chorobowych, sposobu

prowadzenia kontroli oraz zakresu badań kontrolnych zakażeń zwierząt

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 27 czerwca

2005 r. w sprawie szczegółowych wymagań weterynaryjnych niezbędnych

do uzyskania i zachowania uznania stada lub gospodarstwa za urzędowo

wolne lub wolne od chorób zakaźnych zwierząt

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 25 listopada

2005 r. w sprawie zakresu, sposobu i terminów przekazywania informacji

o występowaniu chorób zakaźnych zwierząt podlegających obowiązkowi

zwalczania i rejestracji oraz o wynikach monitorowania chorób

odzwierzęcych i odzwierzęcych czynników chorobotwórczych a także
związanej z nimi oporności na środki przeciw drobnoustrojowe

· Rozporządzenie Rady Ministrów z dnia 30 maja 2007 r. w sprawie

wprowadzenia programu zwalczania enzootycznej białaczki bydła,

gruźlicy bydła, brucelozy u bydła, wścieklizny, gąbczastej encefalolopatii

oraz programu zwalczania i kontroli zakażeń wirusami wysoce zjadliwej

grypy ptaków dawny pomór drobiu u drobiu i ptaków dzikich

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 16 stycznia

2008 r. w sprawie sposobu prowadzenia dokumentacji związanej ze

zwalczaniem chorób zakaźnych zwierząt

background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

20

BYDŁO

K

IERUNEK BADANIA

ZAKAŹNE ZAPALENIE NOSA I TCHAWICY / OTRĘT BYDŁA

Infectious bovine rhinotracheitis / infetious pustular vulvovaginitis

IBR/IPV

METODA / TEST

ELISA gB

SN

Test izolacji.

UWAGI SPECJALNE

MATERIAŁ DO

BADANIA

Krew zwierząt podatnych.

Wycinki narządów

wewnętrznych płodu,

łożysko, wymazy z

worka spojówkowego,
nosa i układu

rozrodczego.

REPREZENTATYWNA

LICZBA PRÓBEK

Do określenia w przypadku przyjęcia programu

zwalczania.

SPRZĘT NIEZBĘDNY

DO POBRANIA

POJEDYNCZEJ

PRÓBKI

Sterylna próbówka.

Sprzęt używany do

sekcji.

PROCEDURA

POBRANIA PRÓBKI

Krew pobierać do sterylnych probówek z

zachowaniem zasad aseptyki.

Próbki pobiera się do

sterylnych naczyń,

szczelnie zamykanych,

każdy narząd

oddzielnie.

WYMAGANIA

ZWIĄZANE Z

PRZECHOWYWANIEM

I TRANSPORTEM

Nie zamrażać.

DOKUMENTACJA

TOWARZYSZĄCA

· Załącznik 1 – Pismo przewodnie do próbek przekazywanych do

laboratoryjnych badań diagnostycznych

· Załącznik 2 – Protokół pobrania prób

CZAS NA
DOSTARCZENIE

POBRANEGO

MATERIAŁU DO

LABORATORIUM

Jak najszybciej.

LABORATORIUM

WETERYNARYJNE

POSIADAJĄCE

AKREDYTACJĘ

METODY

· ZHW w Bydgoszczy

· ZHW w Krośnie

· ZHW w Poznaniu

· ZHW w Szczecinie

Oddz. w Koszalinie

· PIWet-PIB w

Puławach

PRAWODAWSTWO UE Dyrektywa Rady 64/432/EWG z dnia 26 czerwca 1964 r. w sprawie

problemów zdrowotnych zwierząt wpływających na handel wewnątrz

wspólnotowy bydłem i trzodą chlewną

PRAWODAWSTWO

POLSKIE

· Ustawa z dnia 11 marca 2004 r. o ochronie zdrowia zwierząt oraz

zwalczaniu chorób zakaźnych zwierząt

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 25 listopada

2005 r. w sprawie zakresu, sposobu i terminów przekazywania

informacji o występowaniu chorób zakaźnych zwierząt podlegających

obowiązkowi zwalczania i rejestracji oraz o wynikach monitorowania

chorób odzwierzęcych i odzwierzęcych czynników chorobotwórczych a

także związanej z nimi oporności na środki przeciw drobnoustrojowe

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 16 stycznia

2008 r. w sprawie sposobu prowadzenia dokumentacji związanej ze

zwalczaniem chorób zakaźnych zwierząt

background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

21

BYDŁO

KIERUNEK BADANIA

ZARAZA PŁUCNA BYDŁA

Contagious bovine pleuropneumonia - CBPP

METODA / TEST

c-ELISA

OWD

UWAGI SPECJALNE

MATERIAŁ DO

BADANIA

Krew zwierząt podatnych.

REPREZENTATYWNA

LICZBA PRÓBEK

Od każdego zwierzęcia podejrzanego o chorobę.

SPRZĘT NIEZBĘDNY

DO POBRANIA

POJEDYNCZEJ

PRÓBKI

· jałowa igła

· probówka bez antykoagulantu

Zaleca się stosowanie zestawów jednorazowego użytku, zawierających
wkładkę ułatwiającą wydzielanie się surowicy i hermetycznie zamykanych.

PROCEDURA
POBRANIA PRÓBKI

Krew należy pobierać jałową igłą z żyły jarzmowej. Probówkę bez
antykoagulantu po napełnieniu krwią do 2/3 objętości (ok. 7 ml) należy

zamknąć szczelnie korkiem i niezwłocznie oznakować.

WYMAGANIA

ZWIĄZANE Z

PRZECHOWYWANIEM

I TRANSPORTEM

Probówki z krwią dokładnie oznakować i dołączyć pismo przewodnie.

Próbki pełnej krwi, świeżo pobranej, przed transportem, należy odstawić

na około 2 godziny w temperaturze pokojowej.

W czasie transportu próbki krwi chronić przed przemarznięciem lub

nadmiernym przegrzaniem, gdyż powoduje to hemolizę lub przerost florą

bakteryjną.

Transport i przechowywanie surowicy w stanie zamrożenia -20°C. W czasie

transportu surowica nie może ulec rozmnożeniu.

DOKUMENTACJA

TOWARZYSZĄCA

· Załącznik 1 – Pismo przewodnie do próbek przekazywanych do

laboratoryjnych badań diagnostycznych

· Załącznik 2 – Protokół pobrania prób

CZAS NA

DOSTARCZENIE

POBRANEGO

MATERIAŁU DO

LABORATORIUM

W dniu pobrania próbki.

W razie trudności dostarczenia próbek krwi do laboratorium w dniu ich

pobrania, można, po uformowaniu się skrzepu w temperaturze pokojowej,

do dnia następnego przechować je w chłodni (4°C ). Zebrane i

przechowywane w chłodni (4ºC) surowice są przydatne do badań w OWD

przez 2 dni.

Próbki surowic, które nie zostaną przebadane w ciągu najbliższych 48

godzin należy zamrozić w temperaturze -20ºC w szczelnie zamkniętych

probówkach.

LABORATORIUM
WETERYNARYJNE

POSIADAJĄCE

AKREDYTACJĘ

METODY

PRAWODAWSTWO UE

· Dyrektywa Rady 64/432/EWG z dnia 26 czerwca 1964 r. w sprawie

problemów zdrowotnych zwierząt wpływających na handel wewnątrz

wspólnotowy bydłem i trzodą chlewną

· Decyzja Komisji 2008/650/WE zmieniająca Dyrektywę Rady

82/894/EWG w sprawie wykazu zgłaszania chorób zwierząt we

wspólnocie poprzez włączenie niektórych chorób do wykazu chorób

wymagających zgłaszania oraz skreśleniu z tego wykazu

enterowirusowego zapalanie mózgu i rdzenia u świń

PRAWODAWSTWO

POLSKIE

· Ustawa z dnia 11 marca 2004 r. o ochronie zdrowia zwierząt oraz

zwalczaniu chorób zakaźnych zwierząt

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 25 listopada

2005 r. w sprawie zakresu, sposobu i terminów przekazywania

informacji o występowaniu chorób zakaźnych zwierząt podlegających

obowiązkowi zwalczania i rejestracji oraz o wynikach monitorowania
chorób odzwierzęcych i odzwierzęcych czynników chorobotwórczych a

background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

22

także związanej z nimi oporności na środki przeciw drobnoustrojowe

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 14 września

2007 r. w sprawie zwalczania zarazy płucnej bydła

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 16 stycznia

2008 r. w sprawie sposobu prowadzenia dokumentacji związanej ze

zwalczaniem chorób zakaźnych zwierząt

background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

23

ZWIERZĘTA ŚWINIOWATE

KIERUNEK BADANIA

AFRYKAŃSKI POMÓR ŚWIŃ

African swine fever - ASF

METODA / TEST

ELISA

UWAGI SPECJALNE

MATERIAŁ DO

BADANIA

Krew zwierząt podatnych.

REPREZENTATYWNA

LICZBA PRÓBEK

Od podejrzanych o chorobę zwierząt.

SPRZĘT NIEZBĘDNY

DO POBRANIA

POJEDYNCZEJ

PRÓBKI

· jednorazowa igła

· sterylna probówka bez dodatku środka konserwującego

lub

· tubostrzykawka

PROCEDURA
POBRANIA PRÓBKI

Do badań należy pobrać próbki krwi pełnej od świń chorujących
maksymalnie długo lub od świń podejrzanych, które miały styczność ze

zwierzętami zakażonymi lub podejrzanymi o zakażenie wirusem ASF.

Krew należy pobierać igłą jednorazową do sterylnej probówki (lub

tubostrzykawki) bez dodatku środka konserwującego; z igły krew powinna

wolno spływać do probówki po ścianie wewnętrznej do 2/3 pojemności.

WYMAGANIA

ZWIĄZANE Z

PRZECHOWYWANIEM

I TRANSPORTEM

Po pobraniu krew należy stopniowo schłodzić, ale nie zamrażać.

DOKUMENTACJA

TOWARZYSZĄCA

· Załącznik 1 – Pismo przewodnie do próbek przekazywanych do

laboratoryjnych badań diagnostycznych

· Załącznik 2 – Protokół pobrania prób

CZAS NA
DOSTARCZENIE

POBRANEGO

MATERIAŁU DO

LABORATORIUM

W ciągu 12 godzin od pobrania.

LABORATORIUM

WETERYNARYJNE

POSIADAJĄCE

AKREDYTACJĘ

METODY

PIWet-PIB w Puławach

PRAWODAWSTWO UE

· Dyrektywa Rady 64/432/EWG z dnia 26 czerwca 1964 r. w sprawie

problemów zdrowotnych zwierząt wpływających na handel wewnątrz
wspólnotowy bydłem i trzodą chlewną

· Decyzja Komisji 2008/650/WE zmieniająca Dyrektywę Rady

82/894/EWG w sprawie wykazu zgłaszania chorób zwierząt we
wspólnocie poprzez włączenie niektórych chorób do wykazu chorób

wymagających zgłaszania oraz skreśleniu z tego wykazu

enterowirusowego zapalanie mózgu i rdzenia u świń

PRAWODAWSTWO

POLSKIE

· Ustawa z dnia 11 marca 2004 r. o ochronie zdrowia zwierząt oraz

zwalczaniu chorób zakaźnych zwierząt

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 23 czerwca

2004 r. w sprawie zwalczania afrykańskiego pomoru świń

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 25 listopada

2005 r. w sprawie zakresu, sposobu i terminów przekazywania

informacji o występowaniu chorób zakaźnych zwierząt podlegających

obowiązkowi zwalczania i rejestracji oraz o wynikach monitorowania

chorób odzwierzęcych i odzwierzęcych czynników chorobotwórczych a

także związanej z nimi oporności na środki przeciw drobnoustrojowe

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 16 stycznia

2008 r. w sprawie sposobu prowadzenia dokumentacji związanej ze

zwalczaniem chorób zakaźnych zwierząt

background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

24

ZWIERZĘTA ŚWINIOWATE

KIERUNEK BADANIA

CHOROBA AUJESZKYEGO U ŚWIŃ

Aujeszky's disease in pigs

METODA / TEST

Diagnostyka przyżyciowa:

· ELISA

· Izolacja wirusa z wymazów (rzadko)

· IF z wymazów (rzadko)

Diagnostyka pośmiertna:

· Izolacja wirusa z narządów

· IF z narządów (rzadko)

UWAGI SPECJALNE

MATERIAŁ DO

BADANIA

Przyżyciowo:

· krew – badania serologiczne (świnie, dziki)

· wymazy z części nosowo-gardłowej – izolacja wirusa (warchlaki,

tuczniki)

Pośmiertnie – izolacja wirusa:

· świnie: połowa mózgu pozyskana z cięcia podłużnego, migdałki,

śledziona, płuca od świeżo padłych prosiąt lub warchlaków

(najbardziej polecany materiał to tkanka mózgowa)

· inne zwierzęta: część rdzenia kręgowego odpowiedzialną za

unerwianie części skóry objętej świądem, skóra wraz z tkanką

podskórną w miejscach wykazujących świąd

REPREZENTATYWNA

LICZBA PRÓBEK

Krew – świnie

W badaniach serologicznych krew pobiera się od reprezentatywnej liczby

zwierząt:

a)

liczba próbek ukierunkowanych na wykrycie zakażenia stada przy 95%
prawdopodobieństwa wykrycia

Wielkość

stada

Współczynnik szerzenie się

czynnika zakaźnego

Liczba próbek

1*

2

5

10

20*

50

50

48

35

10

12

100

95

78

45

22

13

150

130

95

49

25

13

200

155

105

51

26

14

300

189

117

54

27

14

500

225

129

56

28

14

750

246

135

57

28

14

1000

258

138

57

28

14

1500

271

142

58

29

14

2000

277

143

58

29

14

5000

290

147

59

29

14

b)

liczba próbek ukierunkowanych na wykrycie zakażenia stada przy 99%
prawdopodobieństwa wykrycia:

Wielkość

stada

Współczynnik szerzenie się

czynnika zakaźnego

Liczba próbek

1*

2

5

10

20*

50

50

50

42

29

17

100

99

90

59

36

19

150

143

117

68

38

20

background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

25

200

180

136

73

40

20

300

235

160

78

41

20

500

300

183

83

42

21

750

343

197

85

43

21

1000

368

204

86

43

21

1500

395

212

88

44

21

2000

410

216

88

44

21

5000

438

223

89

44

21

SPRZĘT NIEZBĘDNY

DO POBRANIA

POJEDYNCZEJ

PRÓBKI

Krew

Świnie – sterylna igłoprobówka, niezawierająca dodatków środków

zapobiegających krzepnięciu krwi.

Dziki – sterylna igła i sterylna próbówka nie zawierająca dodatków

środków zapobiegających krzepnięciu krwi lub probówko-strzykawka o

pojemności co najmniej 7,5 ml.

Wymazy z nosa – sterylny patyczek wymazowy.

Wycinki narządów – sterylny, szczelnie zamykany pojemnik.

PROCEDURA

POBRANIA PRÓBKI

Krew

Świnie – krew należy pobrać z żyły czczej przedniej lub żyły jarzmowej

powierzchownej do 3/4 objętości sterylnej igłoprobówki. Krew z igły

powinna wolno spływać do probówki po ściance wewnętrznej, co zmniejsza

ryzyko wystąpienia hemolizy.

Dziki – krew pobiera się bezpośrednio po odstrzeleniu, podczas

wytrzewiania z jamy klatki piersiowej, dużych żył brzusznych lub komór

serca. Krew pobiera się do 3/4 objętości sterylnej probówki lub do

całkowitego wypełnienia probówko-strzykawki o pojemności co najmniej
7,5ml. Przy pobieraniu krwi probówko-strzykawką jej konus należy

zanurzyć we krwi, po czym powoli odciągać tłoczek do uzyskania oporu, aż

do wyraźnego „kliknięcia”, po czym tłoczek odłamać, a konus strzykawki

zatkać zatyczką. Uważać aby nie zaaspirować powietrza lub innych

elementów.

Wymazy z nosa – w celu pobrania wymazu należy unieruchomić zwierzę,

trzymając za ryj jedną ręką, delikatnie odchylić głowę ku górze, a drugą

ręką umieścić koniec sterylnego patyczka wymazowego w nozdrzu

zwierzęcia, w części dystalnej jamy nosowej i energiczne potrzeć nabłonek

śluzowy, dla pewności, iż wymaz zawiera zarówno śluz jak i komórki z

wnętrza nozdrza.
Wycinki narządów - materiał należy pobrać z zachowaniem zasad

aseptyki, umieścić w oznaczonym pojemniku. W przypadku świń

materiałem preferowanym przy izolacji wirusa jest w pierwszej kolejności

mózg oraz migdałki, a w dalszej kolejności pozostałe wycinki.

WYMAGANIA

ZWIĄZANE Z

PRZECHOWYWANIEM

I TRANSPORTEM

Krew

Po napełnieniu probówki krwią należy ją szczelnie zamknąć i czytelnie

oznakować.

Świnie – pozyskaną krew początkowo przechowywać w temperaturze

pokojowej, do czasu wydzielenia się surowicy, jeżeli to nie nastąpi do 12

godzin wówczas w celu przyspieszenia wydzielenia surowicy czystą igłą
oddzielić formujący się skrzep od ścianki probówki. Po wydzieleniu się

surowicy, próbki poddać schłodzeniu do temperatury 2-8°C. Podczas

przechowywania krwi w chłodziarce chronić próbki przed przypadkowym

zamrożeniem prowadzącym do hemolizy.

W czasie transportu próbki zabezpieczać przed nadmiernym wpływem

wysokiej temperatury, bezpośredniego oddziaływania promieni słonecznych

i wstrząsów. Próbki należy transportować w pozycji pionowej.

Dziki – po napełnieniu probówki należy umieścić w pozycji pionowej, w

miarę możliwości chronić przed wstrząsami i możliwie szybko umieścić w

temperaturze pokojowej w celu wydzielenia się surowicy. Po wydzieleniu

background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

26

się surowicy próbki poddać schłodzeniu do temperatury 2-8°C. Podczas

przechowywania krwi w chłodziarce chronić próbki przed przypadkowym
zamrożeniem prowadzącym do hemolizy.

W czasie transportu próbki zabezpieczać przed nadmiernym wpływem

wysokiej temperatury, bezpośredniego oddziaływania promieni słonecznych

i wstrząsów. Próbki należy transportować w pozycji pionowej.

Wymazy z nosa – wymazówkę umieścić w probówce z podłożem

transportowym dla wirusów i w stanie schłodzenia do temperatury 2-8°C

przesłać do laboratorium.

Wycinki narządów – próbki niezwłocznie poddać schłodzeniu do

temperatury 2-8°C i w takim stanie przesłać do laboratorium. Próbek nie

należy zamrażać.

DOKUMENTACJA

TOWARZYSZĄCA

· Załącznik 1 – Pismo przewodnie do próbek przekazywanych do

laboratoryjnych badań diagnostycznych

oraz, w zależności od pobieranego materiału:

· Załącznik 2 – Protokół pobrania prób

lub

· Załącznik 4 – Protokół pobrania prób krwi od świń do badań

kontrolnych w kierunku choroby Aujeszkyego

CZAS NA

DOSTARCZENIE

POBRANEGO

MATERIAŁU DO

LABORATORIUM

Krew - czas od pobrania próbek do ich dostarczenia do laboratorium nie

może przekraczać 48 godzin.

Wymazy z nosa i wycinki narządów - w czasie nieprzekraczającym 24

godzin dostarczyć do laboratorium.

LABORATORIUM

WETERYNARYJNE

POSIADAJĄCE

AKREDYTACJĘ
METODY

Diagnostyka przyżyciowa:

· ZHW w Bydgoszczy (ELISA)

· ZHW w Krośnie (ELISA)

· ZHW w Poznaniu (ELISA)

· ZHW w Poznaniu Prac. w Koninie (ELISA)

· ZHW w Poznaniu Prac. w Lesznie (ELISA)

· ZHW w Szczecinie (ELISA)

· PIWet-PIB w Puławach (ELISA)

PRAWODAWSTWO UE Dyrektywa Rady 64/432/EWG z dnia 26 czerwca 1964 r. w sprawie

problemów zdrowotnych zwierząt wpływających na handel wewnątrz

wspólnotowy bydłem i trzodą chlewną

PRAWODAWSTWO

POLSKIE

· Ustawa z dnia 11 marca 2004 r. o ochronie zdrowia zwierząt oraz

zwalczaniu chorób zakaźnych zwierząt

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 25 listopada

2005 r. w sprawie zakresu, sposobu i terminów przekazywania

informacji o występowaniu chorób zakaźnych zwierząt podlegających

obowiązkowi zwalczania i rejestracji oraz o wynikach monitorowania

chorób odzwierzęcych i odzwierzęcych czynników chorobotwórczych a

także związanej z nimi oporności na środki przeciw drobnoustrojowe

· Rozporządzenie Rady Ministrów z dnia 19 marca 2008 r. w sprawie

wprowadzenia programu zwalczania choroby Aujeszkyego u świń

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 16 stycznia

2008 r. w sprawie sposobu prowadzenia dokumentacji związanej ze

zwalczaniem chorób zakaźnych zwierząt

background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

27

ZWIERZĘTA ŚWINIOWATE

KIERUNEK BADANIA

CHOROBA PĘCHERZYKOWA ŚWIŃ CZĘŚĆ I

Swine vesicular disease - SVD

METODA / TEST

Rozpoznanie wirusologiczne.

RT-PCR

ELISA

Test izolacji.

UWAGI SPECJALNE

MATERIAŁ DO

BADANIA

· Nabłonek (materiał najbardziej odpowiedni)

· płynna zawartość pęcherzy

· krew od świń i dzików.

Krew zwierząt

podatnych.

Dodatkowo:

· kał

· wymaz z nosa.

REPREZENTATYWNA

LICZBA PRÓBEK

Liczba próbek powinna być adekwatna do częstotliwości występowania

poszukiwanego czynnika w populacji.

W celu kontroli występowania SVD corocznie bada się, na obszarze

powiatu, próbki krwi pobrane od 10 sztuk świń.

Jeżeli choroba występuje w formie klinicznej pobrać próbkę od 2-4

zwierząt.

SPRZĘT NIEZBĘDNY

DO POBRANIA

POJEDYNCZEJ

PRÓBKI

Próbki pobiera się czystymi, jałowymi narzędziami, do jałowych naczyń,

najlepiej jednorazowych.

· zawartość pęcherza: strzykawka z igłą,

· krew: probówka z etykietą, w systemie próżniowym,

· kał: łyżeczka, naczynie z szerokim otworem i zakręcą pokrywką,

· wymazy z nosa: jałowy wacik lub wymazówka.

Uwaga! Naczynie na próbkę o pojemności ok. 10ml musi być

przystosowane do ewentualnego zamrażania, szczelnie zamykane, aby

gaz nie przedostał się do jego wnętrza, ponieważ spowoduje obniżenie
pH i inaktywację wirusa (próbka taka jest nieprzydatna do badania).

Zalecany sposób pakowania materiałów biologicznych z podejrzeniem

pryszczycy i/lub choroby pęcherzykowej świń oraz sprzęt niezbędny do

zapakowania są opisane w Załączniku 3.

PROCEDURA

POBRANIA PRÓBKI

Próbkę, każdą oddzielnie, pobiera się od zwierząt

żywych lub martwych, (zabitych lub padłych).

Nabłonek - próbkę ze ścian nieuszkodzonego lub

świeżo rozerwanego pęcherza, nie mniej niż 1g

(wielkość znaczka pocztowego 2 cm

2

).

Zawartość pęcherza - pobrać strzykawką z igłą,
tyle ile tylko możliwe, nie mniej niż 3g.

Krew - 5-10ml zarówno od zwierząt zdrowych,

podejrzanych, chorych i rekonwalescentów.

Próbkę krwi pobrać jałowo. Podczas pobierania

krew powinna powoli spływać po ściance

probówki, do 2/3 objętości, nie dopuścić do

hemolizy krwinek Probówki napełnionej krwią

nie otwierać.

5-10ml zarówno od

zwierząt zdrowych,

podejrzanych, chorych i

rekonwalescentów.

Próbkę krwi pobrać

jałowo. Podczas
pobierania krew

powinna powoli

spływać po ściance

probówki, do 2/3

objętości, nie dopuścić

do hemolizy krwinek

Probówki napełnionej

krwią nie otwierać.

Kał - 20g kału od świń

lub z pomieszczenia, w

którym przebywają lub

przebywały świnie
podejrzane o chorobę

pęcherzykową świń.

Wymazy z nosa -

Pobrać co najmniej

dwa wymazy z nosa.

background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

28

WYMAGANIA

ZWIĄZANE Z
PRZECHOWYWANIEM

I TRANSPORTEM

Wirus choroby pęcherzykowej świń, oporny jest

zarówno na wahania temperatury w szerokim
zakresie i pH w granicach wartości 2,5-12.

Jednakże, w związku z faktem, że epizootie

chorób świń z objawami pęcherzowymi,

zwłaszcza w początkowej fazie traktuje się jako

podejrzenie pryszczycy, próbkę transportuje się w

warunkach optymalnych dla wirusa pryszczycy,

tj. pH 7,2 -7,6 oraz temp. +5°C(±

3

°C).

Nabłonek - próbkę nabłonka schłodzić, nie

zamrażać. Transport w +5

o

C(±3

°C).

Surowicza zawartość pęcherza - warunki

transportu jak w przypadku nabłonka - pH 7.2 –

7.6, temperatura +5°C(±

3

°C).

Po pobraniu delikatnie

wymieszać krew ze
środkiem

zapobiegającym

krzepnięciu - EDTA

(kwasem etylenodwu-

aminoczterooctowym)

lub solami heparyny, a

następnie schłodzić.

Nie zamrażać.

Krew transportować

schłodzoną +5°C

(±3°C).

Kał - transport w

+5°C(±3°C).

Wymazy z nosa -

pobrany materiał

natychmiast umieszcza

się w buforze (płyn

Eagle`a do hodowli

tkankowej/gliceryna z

antybiotykiem).

Transport w
+5°C(±3°C).

DOKUMENTACJA

TOWARZYSZĄCA

· Załącznik 1 – Pismo przewodnie do próbek przekazywanych do

laboratoryjnych badań diagnostycznych

· Załącznik 2 – Protokół pobrania prób

CZAS NA

DOSTARCZENIE

POBRANEGO

MATERIAŁU DO

LABORATORIUM

Przewóz próbki z podejrzeniem pryszczycy i/lub choroby pęcherzykowej

świń nie może być zlecany przedsiębiorstwom spedycyjnym, świadczącym

usługi transportowe.

Próbki musi dostarczyć kurier najszybszym możliwym środkiem

transportu, niezwłocznie po pobraniu, najpóźniej przed upływem 24

godzin od pobrania.

Nabłonek – do laboratorium należy dostarczyć natychmiast (w czasie kilku

godzin) w tym czasie może być przewożony bez buforu.

Jednakże, jeżeli istnieje obawa, że czas transportu może wydłużyć się,
nabłonek należy umieścić w małej ilości buforu 2-5ml, składającego się z

równych części 0,04 M buforu fosforanowego i gliceryny (PBS/gliceryna) lub

innego równoważnego buforu (ważne pH 7,2 -7,6). Transport w +5°C(±3

°C).

Ponadto, dla ochrony przed rozwojem mikroorganizmów do buforu dodaje

się jeden z niżej wymienionych antybiotyków w stężeniu:

(i) penicylina 1 000 IU

(ii) siarczan neomycyny 100 IU

(iii) siarczan polimyksyny B 50 IU

(iv) mykostatyna 100 IU

Wymazy z nosa - do laboratorium należy dostarczyć natychmiast (w czasie

kilku godzin). Jednakże, jeżeli zachodzi obawa, że transport może trwać

powyżej kilku godzin, próbkę należy zamrozić w suchym lodzie lub ciekłym
azocie.

LABORATORIUM

WETERYNARYJNE

POSIADAJĄCE

AKREDYTACJĘ

METODY

Zakład PIWet-PIB w

Zduńskiej Woli

Zakład PIWet-PIB w

Zduńskiej Woli

PRAWODAWSTWO UE

· Dyrektywa Rady 64/432/EWG z dnia 26 czerwca 1964 r. w sprawie

problemów zdrowotnych zwierząt wpływających na handel wewnątrz

wspólnotowy bydłem i trzodą chlewną

background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

29

· Decyzja Komisji 2008/650/WE zmieniająca Dyrektywę Rady

82/894/EWG w sprawie wykazu zgłaszania chorób zwierząt we

wspólnocie poprzez włączenie niektórych chorób do wykazu chorób

wymagających zgłaszania oraz skreśleniu z tego wykazu

enterowirusowego zapalanie mózgu i rdzenia u świń

PRAWODAWSTWO

POLSKIE

· Ustawa z dnia 11 marca 2004 r. o ochronie zdrowia zwierząt oraz

zwalczaniu chorób zakaźnych zwierząt

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 17 grudnia

2004 r. w sprawie określenia jednostek chorobowych, sposobu

prowadzenia kontroli oraz zakresu badań kontrolnych zwierząt

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 25 listopada

2005 r. w sprawie zakresu, sposobu i terminów przekazywania

informacji o występowaniu chorób zakaźnych zwierząt podlegających

obowiązkowi zwalczania i rejestracji oraz o wynikach monitorowania

chorób odzwierzęcych i odzwierzęcych czynników chorobotwórczych a

także związanej z nimi oporności na środki przeciw drobnoustrojowe

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 16 stycznia

2008 r. w sprawie sposobu prowadzenia dokumentacji związanej ze

zwalczaniem chorób zakaźnych zwierząt

background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

30

ZWIERZĘTA ŚWINIOWATE

KIERUNEK BADANIA

CHOROBA PĘCHERZYKOWA ŚWIŃ CZĘŚĆ II

Swine vesicular disease - SVD

METODA / TEST

SN

ELISA – rozpoznanie serologiczne.

UWAGI SPECJALNE

MATERIAŁ DO

BADANIA

Krew pełna zwierząt podatnych lub surowica pozyskana z krwi zwierząt

podatnych.

REPREZENTATYWNA

LICZBA PRÓBEK

Liczba próbek powinna być adekwatna do częstotliwości występowania

poszukiwanego czynnika w populacji.
W celu kontroli występowania SVD corocznie bada się, na obszarze

powiatu, próbki krwi pobrane od 10 sztuk świń.

Jeżeli choroba występuje w formie klinicznej pobrać próbkę od 2-4

zwierząt.

SPRZĘT NIEZBĘDNY

DO POBRANIA

POJEDYNCZEJ

PRÓBKI

· jednorazowa igła

· sterylna probówka bez dodatku środka konserwującego
lub

· tubostrzykawka
Zalecany sposób pakowania materiałów biologicznych z podejrzeniem

pryszczycy i/lub choroby pęcherzykowej świń oraz sprzęt niezbędny do

zapakowania są opisane w Załączniku 3.

PROCEDURA

POBRANIA PRÓBKI

Do badań należy pobrać próbki krwi pełnej od świń chorych lub

ozdrowieńców, które miały styczność ze zwierzętami zakażonymi lub

podejrzanymi o zakażenie wirusem SVD. Z igły krew powinna wolno

spływać do probówki po ścianie wewnętrznej do 2/3 pojemności, nie

dopuścić do hemolizy krwinek.

WYMAGANIA

ZWIĄZANE Z

PRZECHOWYWANIEM

I TRANSPORTEM

Po pobraniu pełną krew należy stopniowo schłodzić, ale nie zamrażać i

transportować schłodzoną +5°C (±3

°C).

Surowicę schłodzić lub zamrozić. Transportować schłodzoną +5°C(±3°C) lub

zamrożoną.

DOKUMENTACJA

TOWARZYSZĄCA

· Załącznik 1 – Pismo przewodnie do próbek przekazywanych do

laboratoryjnych badań diagnostycznych

· Załącznik 2 – Protokół pobrania prób

CZAS NA

DOSTARCZENIE

POBRANEGO

MATERIAŁU DO

LABORATORIUM

Przewóz próbki z podejrzeniem pryszczycy i/lub choroby pęcherzykowej

świń nie może być zlecany przedsiębiorstwom spedycyjnym, świadczącym

usługi transportowe.

Próbki musi dostarczyć kurier najszybszym możliwym środkiem

transportu, niezwłocznie po pobraniu, najpóźniej przed upływem 24

godzin od pobrania.

LABORATORIUM

WETERYNARYJNE

POSIADAJĄCE

AKREDYTACJĘ
METODY

Zakład PIWet-PIB w Zduńskiej Woli

PRAWODAWSTWO UE

· Dyrektywa Rady 64/432/EWG z dnia 26 czerwca 1964 r. w sprawie

problemów zdrowotnych zwierząt wpływających na handel wewnątrz

wspólnotowy bydłem i trzodą chlewną

· Decyzja Komisji 2008/650/WE zmieniająca Dyrektywę Rady

82/894/EWG w sprawie wykazu zgłaszania chorób zwierząt we

wspólnocie poprzez włączenie niektórych chorób do wykazu chorób

wymagających zgłaszania oraz skreśleniu z tego wykazu

enterowirusowego zapalanie mózgu i rdzenia u świń

PRAWODAWSTWO

POLSKIE

· Ustawa z dnia 11 marca 2004 r. o ochronie zdrowia zwierząt oraz

zwalczaniu chorób zakaźnych zwierząt

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 25 listopada

2005 r. w sprawie zakresu, sposobu i terminów przekazywania

informacji o występowaniu chorób zakaźnych zwierząt podlegających

obowiązkowi zwalczania i rejestracji oraz o wynikach monitorowania

background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

31

chorób odzwierzęcych i odzwierzęcych czynników chorobotwórczych a

także związanej z nimi oporności na środki przeciw drobnoustrojowe

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 17 grudnia

2004 r. w sprawie określenia jednostek chorobowych, sposobu
prowadzenia kontroli oraz zakresu badań kontrolnych zwierząt

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 16 stycznia

2008 r. w sprawie sposobu prowadzenia dokumentacji związanej ze
zwalczaniem chorób zakaźnych zwierząt

background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

32

ZWIERZĘTA ŚWINIOWATE

KIERUNEK BADANIA

KLASYCZNY POMÓR ŚWIŃ

CZĘŚĆ I

Classical swine fever - CSF, Hog cholera

METODA / TEST

Rozpoznanie wirusologiczne.

Izolacja wirusa klasycznego pomoru

świń w hodowli komórkowej.

PCR

UWAGI SPECJALNE

MATERIAŁ DO

BADANIA

Najwłaściwszym materiałem do badań laboratoryjnych są migdałki

(pierwszy narząd, w którym dochodzi do namnażania się wirusa,
i w którym utrzymuje się on najdłużej), węzły chłonne żuchwowe, śledziona

i nerki.

W przewlekłych i nietypowych przypadkach choroby wskazanym jest

przesłanie do badań również końcowego odcinka jelita biodrowego oraz

mózgu.

W przypadku, gdy padła świnia uległa autolizie do badań laboratoryjnych

pobrać należy kość długą i/lub mostek.

Do wczesnego wykrywania CSFV bardzo przydatne są próbki pełnej krwi.

REPREZENTATYWNA

LICZBA PRÓBEK

W celu kontroli występowania CSF corocznie bada się próbki w ilości

zgodnej z rozporządzeniem Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 17
grudnia 2004 r. w sprawie określenia jednostek chorobowych, sposobu

prowadzenia kontroli oraz zakresu badań kontrolnych zwierząt.

W czasie wystąpienia CSF, liczba pobieranych próbek powinna być zgodna

z Decyzją Komisji 2002/106/WE

SPRZĘT NIEZBĘDNY

DO POBRANIA

POJEDYNCZEJ

PRÓBKI

W zależności od pobieranego materiału:

· igła,

· próbówka,

· sprzęt niezbędny do przeprowadzenia sekcji.

PROCEDURA

POBRANIA PRÓBKI

Narządy: materiał patologiczny przeznaczony do badań laboratoryjnych

pobiera się od zwierząt wykazujących objawy choroby (gorączka) ubitych

diagnostycznie lub świeżo padłych (do 4 godzin).

Krew: do badań należy przesłać około 5ml krwi pobranej, do probówek z

wersenianem potasu (K3EDTA) w proporcji 1,8mg EDTA/ 1ml.

WYMAGANIA

ZWIĄZANE Z
PRZECHOWYWANIEM

I TRANSPORTEM

Każda próbka tkanki powinna zostać umieszczona w oddzielnym

plastikowym woreczku, odpowiednio zamknięta, włożona do drugiego
woreczka i opisana.

Próbki należy przechowywać i transportować w szczelnych, odpornych na

zniszczenie pojemnikach.

Próbki nie mogą być zamrażane. Należy je transportować w temperaturze

lodówki.

DOKUMENTACJA

TOWARZYSZĄCA

· Załącznik 1 – Pismo przewodnie do próbek przekazywanych do

laboratoryjnych badań diagnostycznych

· Załącznik 2 – Protokół pobrania prób

CZAS NA

DOSTARCZENIE

POBRANEGO

MATERIAŁU DO

LABORATORIUM

Próbki należy poddać badaniu w ciągu 24 godzin od pobrania.

Każdorazowo, przed wysyłką próbek, należy o tym powiadomić

laboratorium rozpoznawcze.

LABORATORIUM

WETERYNARYJNE

POSIADAJĄCE

AKREDYTACJĘ

METODY

PRAWODAWSTWO UE

· Dyrektywa Rady 64/432/EWG z dnia 26 czerwca 1964 r. w sprawie

problemów zdrowotnych zwierząt wpływających na handel wewnątrz

wspólnotowy bydłem i trzodą chlewną

· Decyzja Komisji nr 2002/106/WE zatwierdzająca Podręcznik

Diagnostyczny ustalający procedury diagnostyczne, metody pobierania

background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

33

próbek oraz kryteria do oceny testów laboratoryjnych służących do

potwierdzenia klasycznego pomoru świń

· Decyzja Komisji 2008/650/WE zmieniająca Dyrektywę Rady

82/894/EWG w sprawie wykazu zgłaszania chorób zwierząt we

wspólnocie poprzez włączenie niektórych chorób do wykazu chorób
wymagających zgłaszania oraz skreśleniu z tego wykazu

enterowirusowego zapalanie mózgu i rdzenia u świń

PRAWODAWSTWO

POLSKIE

· Ustawa z dnia 11 marca 2004 r. o ochronie zdrowia zwierząt oraz

zwalczaniu chorób zakaźnych zwierząt

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 17 grudnia

2004 r. w sprawie określenia jednostek chorobowych, sposobu

prowadzenia kontroli oraz zakresu badań kontrolnych zwierząt

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 25 listopada

2005 r. w sprawie zakresu, sposobu i terminów przekazywania informacji

o występowaniu chorób zakaźnych zwierząt podlegających obowiązkowi

zwalczania i rejestracji oraz o wynikach monitorowania chorób

odzwierzęcych i odzwierzęcych czynników chorobotwórczych a także

związanej z nimi oporności na środki przeciw drobnoustrojowe

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 18 grudnia

2006 r. w sprawie zwalczania klasycznego pomoru świń

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 16 stycznia

2008 r. w sprawie sposobu prowadzenia dokumentacji związanej ze

zwalczaniem chorób zakaźnych zwierząt

background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

34

ZWIERZĘTA ŚWINIOWATE

KIERUNEK BADANIA

KLASYCZNY POMÓR ŚWIŃ

CZĘŚĆ II

Classical swine fever - CSF, Hog cholera

METODA / TEST

Rozpoznanie serologiczne - służy jedynie jako pomoc w przypadkach

podejrzenia klasycznego pomoru świń. Jeśli od świń podejrzanych o CSF

albo z materiału pochodzącego z gospodarstw, które miały kontakt z

przypadkami choroby nie wyizolowano wirusa lub nie wykryto jego

antygenu względnie materiału genetycznego, to celowe jest

przeprowadzenie badań serologicznych.
NPLA

ELISA

UWAGI SPECJALNE

MATERIAŁ DO

BADANIA

Krew zwierząt podatnych.

REPREZENTATYWNA

LICZBA PRÓBEK

W celu kontroli występowania CSF corocznie bada się próbki w ilości

zgodnej z rozporządzeniem Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 17

grudnia 2004 r. w sprawie określenia jednostek chorobowych, sposobu

prowadzenia kontroli oraz zakresu badań kontrolnych zwierząt.

W czasie wystąpienia CSF, liczba pobieranych próbek powinna być zgodna

z Decyzją Komisji 2002/106/WE

SPRZĘT NIEZBĘDNY

DO POBRANIA

POJEDYNCZEJ

PRÓBKI

· Igła,

· próbówka.

PROCEDURA

POBRANIA PRÓBKI

Próbki krwi do badań powinny być pobrane od ozdrowieńców oraz od świń,

które miały styczność z zakażonymi lub podejrzanymi o zakażenie wirusem

CSF zwierzętami. Dla dokładnej oceny sytuacji zdrowotnej w stadzie oraz

określenia dynamiki szerzenia się zakażenia wskazane byłoby pobranie

próbek krwi od zwierząt z różnych grup technologicznych (w różnym
wieku).

Krew, w objętości do 5ml, należy pobrać z żyły czczej przedniej (vena cava

cranialis) lub z żyły jarzmowej (vena jugularis) do odpowiednich probówek.

WYMAGANIA

ZWIĄZANE Z

PRZECHOWYWANIEM

I TRANSPORTEM

Probówki z pobraną krwią zostawia się w temperaturze pokojowej na okres

2-3 godzin. Po tym czasie należy oddzielić skrzep od ściany probówki przy

użyciu szklanej bagietki lub długiej, jałowej igły a następnie wstawić

probówki do lodówki na okres 14-18 godzin (na noc). Po tym czasie

uzyskaną surowicę należy przelać do małych, zamykanych szczelnym

kapslem probówek typu Eppendorf o pojemności 1,5ml. Tak przygotowane

próbki należy odpowiednio ponumerować (identyfikacja zwierząt!)
i przesłać, w temperaturze lodówki, do laboratorium.

DOKUMENTACJA

TOWARZYSZĄCA

· Załącznik 1 – Pismo przewodnie do próbek przekazywanych do

laboratoryjnych badań diagnostycznych

· Załącznik 2 – Protokół pobrania prób

CZAS NA

DOSTARCZENIE

POBRANEGO

MATERIAŁU DO

LABORATORIUM

Jak najszybciej, nie później niż w ciągu 24 godzin.

LABORATORIUM

WETERYNARYJNE

POSIADAJĄCE

AKREDYTACJĘ
METODY

· ZHW w Bydgoszczy

· ZHW w Gdańsku

· ZHW w Kielcach

· ZHW w Poznaniu

· PIWet-PIB w Puławach

PRAWODAWSTWO UE

· Dyrektywa Rady 64/432/EWG z dnia 26 czerwca 1964 r. w sprawie

problemów zdrowotnych zwierząt wpływających na handel wewnątrz

wspólnotowy bydłem i trzodą chlewną

· Decyzja Komisji nr 2002/106/WE zatwierdzająca Podręcznik

Diagnostyczny ustalający procedury diagnostyczne, metody pobierania

background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

35

próbek oraz kryteria do oceny testów laboratoryjnych służących do

potwierdzenia klasycznego pomoru świń

· Decyzja Komisji 2008/650/WE zmieniająca Dyrektywę Rady

82/894/EWG w sprawie wykazu zgłaszania chorób zwierząt we

wspólnocie poprzez włączenie niektórych chorób do wykazu chorób
wymagających zgłaszania oraz skreśleniu z tego wykazu

enterowirusowego zapalanie mózgu i rdzenia u świń

PRAWODAWSTWO

POLSKIE

· Ustawa z dnia 11 marca 2004 r. o ochronie zdrowia zwierząt oraz

zwalczaniu chorób zakaźnych zwierząt

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 17 grudnia

2004 r. w sprawie określenia jednostek chorobowych, sposobu

prowadzenia kontroli oraz zakresu badań kontrolnych zwierząt

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 25 listopada

2005 r. w sprawie zakresu, sposobu i terminów przekazywania informacji

o występowaniu chorób zakaźnych zwierząt podlegających obowiązkowi

zwalczania i rejestracji oraz o wynikach monitorowania chorób

odzwierzęcych i odzwierzęcych czynników chorobotwórczych a także

związanej z nimi oporności na środki przeciw drobnoustrojowe

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 18 grudnia

2006 r. w sprawie zwalczania klasycznego pomoru świń

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 16 stycznia

2008 r. w sprawie sposobu prowadzenia dokumentacji związanej ze

zwalczaniem chorób zakaźnych zwierząt

background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

36

ZWIERZĘTA JEDNOKOPYTNE

KIERUNEK BADANIA

AFRYKAŃSKI POMÓR KONI

African horse sickness

METODA / TEST

Badanie wirusologiczne.

Badanie serologiczne.

UWAGI SPECJALNE

MATERIAŁ DO

BADANIA

Zwierzęta żywe - pełna krew.

Zwierzęta padłe - wycinki śledziony,

płuc, węzłów chłonnych.

Krew zwierząt podatnych.

REPREZENTATYWNA
LICZBA PRÓBEK

Od każdego zwierzęcia podejrzanego o chorobę, od zwierząt padłych z
podejrzeniem choroby.

SPRZĘT NIEZBĘDNY

DO POBRANIA

POJEDYNCZEJ

PRÓBKI

W zależności od pobieranego materiału:

- krew: sterylna igła i próbówka,

- wycinki – czyste, jałowe narzędzia, najlepiej jednorazowego użytku.

PROCEDURA

POBRANIA PRÓBKI

Zwierzęta żywe - pełna krew (co

najmniej 10ml) pobrana od zwierząt

chorych w okresie gorączkowym na

antykoagulant (EDTA, heparyna);
Zwierzęta padłe - wycinki pobierać

do 10% zbuforowanego roztworu

glicerolu, pH 7,4.

Od zwierząt, które przeżyły

zakażenie wirusem AHS należy

pobrać po około 20ml krwi.

WYMAGANIA

ZWIĄZANE Z

PRZECHOWYWANIEM

I TRANSPORTEM

Próbki należy przechowywać w

temperaturze 4°C. Do laboratorium

należy je dostarczyć jak najszybciej,

najlepiej w termo torbach z

wkładami chłodzącymi, które

utrzymują temp. około 4°C podczas

transportu próbek.

DOKUMENTACJA

TOWARZYSZĄCA

· Załącznik 1 – Pismo przewodnie do próbek przekazywanych do

laboratoryjnych badań diagnostycznych

· Załącznik 2 – Protokół pobrania prób

CZAS NA

DOSTARCZENIE

POBRANEGO

MATERIAŁU DO

LABORATORIUM

Jak najszybciej.

W przypadku pobierania próbek w związku z podejrzeniem choroby, próbki

należy dostarczyć do Laboratorium Zakładu Wirusologii Państwowego

Instytutu Weterynaryjnego - Państwowego Instytutu Badawczego (ul.

Partyzantów 57, 24-100 Puławy).

LABORATORIUM

WETERYNARYJNE

POSIADAJĄCE

AKREDYTACJĘ

METODY

PRAWODAWSTWO UE Decyzja Komisji 2008/650/WE zmieniająca Dyrektywę Rady 82/894/EWG

w sprawie wykazu zgłaszania chorób zwierząt we wspólnocie poprzez

włączenie niektórych chorób do wykazu chorób wymagających zgłaszania

oraz skreśleniu z tego wykazu enterowirusowego zapalanie mózgu i rdzenia

u świń

PRAWODAWSTWO

POLSKIE

· Ustawa z dnia 11 marca 2004 r. o ochronie zdrowia zwierząt oraz

zwalczaniu chorób zakaźnych zwierząt

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 18 maja 2004

r. w sprawie szczegółowego sposobu i trybu zwalczania afrykańskiego

pomoru koni

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 25 listopada

2005 r. w sprawie zakresu, sposobu i terminów przekazywania

informacji o występowaniu chorób zakaźnych zwierząt podlegających

obowiązkowi zwalczania i rejestracji oraz o wynikach monitorowania

chorób odzwierzęcych i odzwierzęcych czynników chorobotwórczych a

także związanej z nimi oporności na środki przeciw drobnoustrojowe

background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

37

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 16 stycznia

2008 r. w sprawie sposobu prowadzenia dokumentacji związanej ze

zwalczaniem chorób zakaźnych zwierząt

background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

38

ZWIERZĘTA JEDNOKOPYTNE

KIERUNEK BADANIA

NIEDOKRWISTOŚĆ ZAKAŹNA KONI

Equine infectious anaemia

METODA / TEST

AGID

UWAGI SPECJALNE

MATERIAŁ DO

BADANIA

Krew zwierząt podatnych.

REPREZENTATYWNA

LICZBA PRÓBEK

W przypadku podejrzenia choroby od wszystkich podejrzanych zwierząt.

SPRZĘT NIEZBĘDNY

DO POBRANIA

POJEDYNCZEJ

PRÓBKI

· sterylne probówki i igły lub

· tubostrzykawki.

PROCEDURA

POBRANIA PRÓBKI

Krew należy pobierać jałową igłą z żyły jarzmowej. Probówkę bez

antykoagulantu po napełnieniu krwią do około 7ml należy zamknąć

szczelnie korkiem i niezwłocznie oznakować.

Zaleca się stosowanie zestawów jednorazowego użytku zawierających

wkładkę ułatwiającą wydzielanie się surowicy i hermetycznie zamykanych.

WYMAGANIA

ZWIĄZANE Z

PRZECHOWYWANIEM

I TRANSPORTEM

Nie zamrażać.

Surowica uzyskana z próbki krwi nie może mieć znamion hemolizy lub być

zanieczyszczona florą bakteryjną.

DOKUMENTACJA

TOWARZYSZĄCA

· Załącznik 1 – Pismo przewodnie do próbek przekazywanych do

laboratoryjnych badań diagnostycznych

· Załącznik 2 – Protokół pobrania prób

CZAS NA

DOSTARCZENIE

POBRANEGO

MATERIAŁU DO

LABORATORIUM

W ciągu 24 godzin.

LABORATORIUM

WETERYNARYJNE

POSIADAJĄCE

AKREDYTACJĘ

METODY

· ZHW w Łodzi

· ZHW w Krośnie

· ZHW w Poznaniu

· ZHW w Szczecinie

PRAWODAWSTWO UE Decyzja Komisji 2008/650/WE zmieniająca Dyrektywę Rady 82/894/EWG

w sprawie wykazu zgłaszania chorób zwierząt we wspólnocie poprzez

włączenie niektórych chorób do wykazu chorób wymagających zgłaszania

oraz skreśleniu z tego wykazu enterowirusowego zapalanie mózgu i rdzenia

u świń

PRAWODAWSTWO

POLSKIE

· Ustawa z dnia 11 marca 2004 r. o ochronie zdrowia zwierząt oraz

zwalczaniu chorób zakaźnych zwierząt

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 25 listopada

2005 r. w sprawie zakresu, sposobu i terminów przekazywania
informacji o występowaniu chorób zakaźnych zwierząt podlegających

obowiązkowi zwalczania i rejestracji oraz o wynikach monitorowania

chorób odzwierzęcych i odzwierzęcych czynników chorobotwórczych a

także związanej z nimi oporności na środki przeciw drobnoustrojowe

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 16 stycznia

2008 r. w sprawie sposobu prowadzenia dokumentacji związanej ze

zwalczaniem chorób zakaźnych zwierząt

background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

39

ZWIERZĘTA JEDNOKOPYTNE

KIERUNEK BADANIA

NOSACIZNA

Glanders

METODA / TEST

OWD

UWAGI SPECJALNE

Ze względu na

potencjalne ryzyko zakażenia osób

zaangażowanych w

próbkobranie należy zachować szczególnie surowe środki ostrożności.

MATERIAŁ DO

BADANIA

Krew zwierząt podatnych.

REPREZENTATYWNA
LICZBA PRÓBEK

Od każdego zwierzęcia podejrzanego o chorobę.

SPRZĘT NIEZBĘDNY

DO POBRANIA

POJEDYNCZEJ

PRÓBKI

· sterylne probówki i igły lub

· tubostrzykawki.

PROCEDURA

POBRANIA PRÓBKI

Krew należy pobierać jałową igłą z żyły jarzmowej. Probówkę bez

antykoagulantu po napełnieniu krwią do około 7ml należy zamknąć

szczelnie korkiem i niezwłocznie oznakować.

Zaleca się stosowanie zestawów jednorazowego użytku zawierających
wkładkę ułatwiającą wydzielanie się surowicy i zamykanych hermetycznie.

WYMAGANIA

ZWIĄZANE Z

PRZECHOWYWANIEM

I TRANSPORTEM

Surowica uzyskana z próbki krwi nie może mieć znamion hemolizy lub być

zanieczyszczona florą bakteryjną.

Można przesyłać też surowicę w ilości 2-3ml.

DOKUMENTACJA

TOWARZYSZĄCA

· Załącznik 1 – Pismo przewodnie do próbek przekazywanych do

laboratoryjnych badań diagnostycznych

· Załącznik 2 – Protokół pobrania prób

CZAS NA

DOSTARCZENIE

POBRANEGO

MATERIAŁU DO

LABORATORIUM

W ciągu 24 godzin.

LABORATORIUM

WETERYNARYJNE

POSIADAJĄCE

AKREDYTACJĘ

METODY

· ZHW w Krośnie

· ZHW w Gdańsku

· ZHW w Szczecinie

· PIWet-PIB w Puławach

PRAWODAWSTWO UE Decyzja Komisji 2008/650/WE zmieniająca Dyrektywę Rady 82/894/EWG

w sprawie wykazu zgłaszania chorób zwierząt we wspólnocie poprzez

włączenie niektórych chorób do wykazu chorób wymagających zgłaszania

oraz skreśleniu z tego wykazu enterowirusowego zapalanie mózgu i rdzenia
u świń

PRAWODAWSTWO

POLSKIE

· Ustawa z dnia 11 marca 2004 r. o ochronie zdrowia zwierząt oraz

zwalczaniu chorób zakaźnych zwierząt

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 25 listopada

2005 r. w sprawie zakresu, sposobu i terminów przekazywania

informacji o występowaniu chorób zakaźnych zwierząt podlegających

obowiązkowi zwalczania i rejestracji oraz o wynikach monitorowania

chorób odzwierzęcych i odzwierzęcych czynników chorobotwórczych a

także związanej z nimi oporności na środki przeciw drobnoustrojowe

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 16 stycznia

2008 r. w sprawie sposobu prowadzenia dokumentacji związanej ze

zwalczaniem chorób zakaźnych zwierząt

background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

40

ZWIERZĘTA JEDNOKOPYTNE

KIERUNEK BADANIA

WIRUSOWE ZAPALENIE TĘTNIC KONI

Equine viral arteritis-EVA

METODA / TEST

SN

Test izolacji.

UWAGI SPECJALNE

MATERIAŁ DO

BADANIA

Krew zwierząt podatnych.

W przypadku podejrzenia

wystąpienia EVA: wymazy z worka

spojówkowego i nosogardzieli lub

próbki krwi.

W przypadku śmierci lub poronienia
źrebiąt: wycinki narządów

wewnętrznych (płuca, śledzina,

wątroba, łożysko) i węzły chłonne

krezkowe.

W celu wykluczenia siewstwa

wirusa z nasieniem do badania

należy przesłać próbki nasienia

pobrane od ogierów serologicznie

dodatnich.

REPREZENTATYWNA
LICZBA PRÓBEK

Od każdego zwierzęcia podejrzanego o chorobę.

SPRZĘT NIEZBĘDNY

DO POBRANIA

POJEDYNCZEJ

PRÓBKI

Sterylna próbówka i igły.

· wymazówki (przyżyciowo)

· sprzęt niezbędny do sekcji (w

przypadku zwierząt padłych)

PROCEDURA

POBRANIA PRÓBKI

Krew pobierać do sterylnych

probówek z zachowaniem zasad

aseptyki.

Wymazy i próbki krwi – próbki krwi

pobrać na antykoagulant z

wyjątkiem heparyny. Próbki należy

pobrać możliwie jak najwcześniej po

wystąpieniu gorączki u zakażonych

zwierząt.

Nasienie - należy pobrać i przesłać

do badania frakcję nasienia bogatą

w plemniki. Zaleca się pobranie
dwóch ejakulatów pobranych

najlepiej w odstępie kilku godzin lub

dni.

WYMAGANIA

ZWIĄZANE Z

PRZECHOWYWANIEM

I TRANSPORTEM

Nie zamrażać.

Przesyłać w temperaturze lodówki

po wcześniejszym uformowaniu

skrzepu w temperaturze pokojowej.

Wycinki - próbki należy schłodzić

lub zamrozić i jak najszybciej wysłać

do laboratorium.

Nasienie należy schłodzić i w stanie

schłodzonym przesłać jak

najszybciej do laboratorium. Jeżeli

nasienie nie może być natychmiast
wysłane do laboratorium należy je

zamrozić w -20°C i przesłać do

laboratorium w stanie zamrożenia.

DOKUMENTACJA

TOWARZYSZĄCA

· Załącznik 1 – Pismo przewodnie do próbek przekazywanych do

laboratoryjnych badań diagnostycznych

· Załącznik 2 – Protokół pobrania prób

CZAS NA

DOSTARCZENIE

POBRANEGO

MATERIAŁU DO

LABORATORIUM

Jak najszybciej.

Jak najszybciej.

Jeżeli nasienie nie może być

natychmiast wysłane do

laboratorium należy je zamrozić

w -20°C i przesłać do laboratorium

w stanie zamrożenia.

LABORATORIUM

background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

41

WETERYNARYJNE

POSIADAJĄCE
AKREDYTACJĘ

METODY
PRAWODAWSTWO UE
PRAWODAWSTWO

POLSKIE

· Ustawa z dnia 11 marca 2004 r. o ochronie zdrowia zwierząt oraz

zwalczaniu chorób zakaźnych zwierząt

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 25 listopada

2005 r. w sprawie zakresu, sposobu i terminów przekazywania

informacji o występowaniu chorób zakaźnych zwierząt podlegających

obowiązkowi zwalczania i rejestracji oraz o wynikach monitorowania

chorób odzwierzęcych i odzwierzęcych czynników chorobotwórczych a

także związanej z nimi oporności na środki przeciw drobnoustrojowe

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 16 stycznia

2008 r. w sprawie sposobu prowadzenia dokumentacji związanej ze

zwalczaniem chorób zakaźnych zwierząt

background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

42

ZWIERZĘTA JEDNOKOPYTNE

KIERUNEK BADANIA

ZARAZA STADNICZA

Dourine

METODA / TEST

OWD metodą probówkową (metodą

makro).

OWD metodą mikromiareczkową

(mikrometodą, metodą płytkową).

UWAGI SPECJALNE

MATERIAŁ DO

BADANIA

Krew zwierząt podatnych.

REPREZENTATYWNA
LICZBA PRÓBEK

Od wszystkich zwierząt podejrzanych o chorobę .

SPRZĘT NIEZBĘDNY

DO POBRANIA

POJEDYNCZEJ

PRÓBKI

Sterylne igły, probówki.

PROCEDURA

POBRANIA PRÓBKI

Krew pobiera się z żyły jarzmowej w ilości około 7ml.

WYMAGANIA
ZWIĄZANE Z

PRZECHOWYWANIEM

I TRANSPORTEM

Świeżo pobrane próbki krwi należy pozostawić na około 2 godziny w
temperaturze pokojowej (od 18ºC do 25ºC), a następnie dostarczyć do

laboratorium. W czasie transportu próbki krwi chronić przed

przemarznięciem lub nadmiernym przegrzaniem, gdyż powoduje to

hemolizę lub przerośnięcie próbek.

Surowice wydzielone z próbek krwi silnie zhemolizowanych lub

zanieczyszczonych florą bakteryjną nie nadają się do badań OWD.

Silnie antykomplementarnie działają także wszystkie związki chemiczne,

które wiążą jony Mg i Ca np. wersenian sodowy, stosowany jako

antykoagulant przy pobieraniu krwi.

DOKUMENTACJA
TOWARZYSZĄCA

· Załącznik 1 – Pismo przewodnie do próbek przekazywanych do

laboratoryjnych badań diagnostycznych

· Załącznik 2 – Protokół pobrania prób

CZAS NA

DOSTARCZENIE
POBRANEGO

MATERIAŁU DO

LABORATORIUM

W dniu pobrania.

W razie trudności dostarczenia próbek krwi do laboratorium w dniu ich
pobrania, można, po uformowaniu się skrzepu w temperaturze pokojowej,

do dnia następnego przechować je w chłodni (2-8°C).

LABORATORIUM

WETERYNARYJNE

POSIADAJĄCE

AKREDYTACJĘ

METODY

· ZHW w Krośnie

· ZHW w Białymstoku

· ZHW w Szczecinie

· ZHW w Krośnie

· ZHW w Białymstoku

· ZHW w Szczecinie

· PIWet-PIB w Puławach

PRAWODAWSTWO UE Decyzja Komisji 2008/650/WE zmieniająca Dyrektywę Rady 82/894/EWG

w sprawie wykazu zgłaszania chorób zwierząt we wspólnocie poprzez

włączenie niektórych chorób do wykazu chorób wymagających zgłaszania

oraz skreśleniu z tego wykazu enterowirusowego zapalanie mózgu i rdzenia

u świń

PRAWODAWSTWO

POLSKIE

· Ustawa z dnia 11 marca 2004 r. o ochronie zdrowia zwierząt oraz

zwalczaniu chorób zakaźnych zwierząt

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 25 listopada

2005 r. w sprawie zakresu, sposobu i terminów przekazywania

informacji o występowaniu chorób zakaźnych zwierząt podlegających

obowiązkowi zwalczania i rejestracji oraz o wynikach monitorowania

chorób odzwierzęcych i odzwierzęcych czynników chorobotwórczych a

także związanej z nimi oporności na środki przeciw drobnoustrojowe

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 16 stycznia

2008 r. w sprawie sposobu prowadzenia dokumentacji związanej ze

zwalczaniem chorób zakaźnych zwierząt


background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

43

MAŁE PRZEŻUWACZE

KIERUNEK BADANIA

TRZĘSAWKA OWIEC

Scrapie

METODA / TEST

ELISA

UWAGI SPECJALNE

Ze względu na

potencjalne ryzyko zakażenia osób

zaangażowanych w

próbkobranie należy zachować szczególnie surowe środki ostrożności.

Przedmiotem badania jest wykrywanie patologicznej formy białka

prionowego (PrP

Sc

) szybkimi testami w próbkach pnia mózgu.

MATERIAŁ DO

BADANIA

Rdzeń przedłużony z regionem zasuwki.

REPREZENTATYWNA

LICZBA PRÓBEK

Zgodnie z programem zwalczania.

SPRZĘT NIEZBĘDNY

DO POBRANIA

POJEDYNCZEJ

PRÓBKI

Łyżeczka (szpatułka).

PROCEDURA

POBRANIA PRÓBKI

Do badania należy pobrać rdzeń przedłużony małych przeżuwaczy, z

rejonem zasuwki. W przypadku podejrzenia postaci atypowej zaleca się
pobieranie dodatkowo próbek móżdżku.

WYMAGANIA

ZWIĄZANE Z

PRZECHOWYWANIEM

I TRANSPORTEM

Nie zamrażać, przesyłać w temperaturze lodówki.

DOKUMENTACJA

TOWARZYSZĄCA

· Załącznik 1 – Pismo przewodnie do próbek przekazywanych do

laboratoryjnych badań diagnostycznych

· Załącznik 2 – Protokół pobrania prób

CZAS NA

DOSTARCZENIE

POBRANEGO

MATERIAŁU DO

LABORATORIUM

Jak najszybciej.

LABORATORIUM

WETERYNARYJNE

POSIADAJĄCE

AKREDYTACJĘ

METODY

· ZHW w Krakowie

· ZHW w Gdańsku

· ZHW w Poznaniu Prac. w Lesznie

· PIWet-PIB

PRAWODAWSTWO UE

· Rozporządzenie Parlamentu Europejskiego i Rady nr 999/2001 z dnia 22

maja 2001 r. ustanawiające zasady dotyczące zapobiegania, kontroli i

zwalczania niektórych przenośnych gąbczastych encefalopatii

· Rozporządzenie Komisji (WE) nr 21/2008 z dnia 11 stycznia 2008 r.

zmieniające załącznik X do rozporządzenia (WE) nr 999/2001

Parlamentu Europejskiego i Rady w odniesieniu do wykazów szybkich

testów

PRAWODAWSTWO
POLSKIE

· Ustawa z dnia 11 marca 2004 r. o ochronie zdrowia zwierząt oraz

zwalczaniu chorób zakaźnych zwierząt

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 17 grudnia

2004 r. w sprawie określenia jednostek chorobowych, sposobu

prowadzenia kontroli oraz zakresu badań kontrolnych zwierząt

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 25 listopada

2005 r. w sprawie zakresu, sposobu i terminów przekazywania informacji
o występowaniu chorób zakaźnych zwierząt podlegających obowiązkowi

zwalczania i rejestracji oraz o wynikach monitorowania chorób

odzwierzęcych i odzwierzęcych czynników chorobotwórczych a także

związanej z nimi oporności na środki przeciw drobnoustrojowe

· Rozporządzenie Rady Ministrów z dnia 30 maja 2007 r. w sprawie

wprowadzenia programu zwalczania enzootycznej białaczki bydła,

gruźlicy bydła, brucelozy u bydła, wścieklizny, gąbczastej encefalolopatii

background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

44

oraz programu zwalczania i kontroli zakażeń wirusami wysoce zjadliwej

grypy ptaków dawny pomór drobiu u drobiu i ptaków dzikich

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 16 stycznia

2008 r. w sprawie sposobu prowadzenia dokumentacji związanej ze
zwalczaniem chorób zakaźnych zwierząt

background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

45

PTAKI

KIERUNEK BADANIA

CHLAMYDIOZA PTAKÓW

Avian chlamydiosis

METODA / TEST

OWD

UWAGI SPECJALNE

Ze względu na

potencjalne ryzyko zakażenia osób

zaangażowanych w

próbkobranie należy zachować szczególnie surowe środki ostrożności.

MATERIAŁ DO

BADANIA

Krew zwierząt podatnych.

REPREZENTATYWNA
LICZBA PRÓBEK

Liczba próbek powinna być adekwatna do częstotliwości występowania
poszukiwanego czynnika w populacji.

SPRZĘT NIEZBĘDNY

DO POBRANIA

POJEDYNCZEJ

PRÓBKI

· jałowa igła

· próbówka bez antykoagulantu
Zaleca się stosowanie zestawów jednorazowego użytku, zawierających

wkładkę ułatwiającą wydzielanie się surowicy i hermetycznie

zamykanych.

PROCEDURA

POBRANIA PRÓBKI

Przed pobraniem krwi upoważniony lekarz weterynarii powinien

sporządzić listę zwierząt zgodnie ze wzorem zawartym w Załączniku 2.

Krew należy pobierać jałową igłą z żyły skrzydłowej. Do probówki bez

antykolagulantu pobrać 1 do 2 ml krwi, zamknąć szczelnie korkiem i

niezwłocznie oznakować.

WYMAGANIA

ZWIĄZANE Z
PRZECHOWYWANIEM

I TRANSPORTEM

Uzyskana z próbki krwi surowica nie może być zhemolizowana lub

zanieczyszczona florą bakteryjną. Świeżo pobrane próbki krwi należy
pozostawić na około 2 godziny w temperaturze pokojowej.

W czasie transportu próbki krwi chronić przed przemarznięciem lub

nadmiernym przegrzaniem, gdyż powoduje to hemolizę lub przerośnięcie

próbek.

DOKUMENTACJA

TOWARZYSZĄCA

Załącznik 1 – Pismo przewodnie do próbek przekazywanych do

laboratoryjnych badań diagnostycznych

CZAS NA

DOSTARCZENIE

POBRANEGO
MATERIAŁU DO

LABORATORIUM

W dniu pobrania próbki (zalecane).

W razie trudności dostarczenia próbek krwi do laboratorium w dniu ich

pobrania, można je do dnia następnego przechować w chłodni (2-8ºC), ale
po kilku godzinach formowania się skrzepu w temperaturze pokojowej.

LABORATORIUM

WETERYNARYJNE

POSIADAJĄCE

AKREDYTACJĘ

METODY

PRAWODAWSTWO UE
PRAWODAWSTWO

POLSKIE

· Ustawa z dnia 11 marca 2004 r. o ochronie zdrowia zwierząt oraz

zwalczaniu chorób zakaźnych zwierząt

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 25 listopada

2005 r. w sprawie zakresu, sposobu i terminów przekazywania

informacji o występowaniu chorób zakaźnych zwierząt podlegających
obowiązkowi zwalczania i rejestracji oraz o wynikach monitorowania

chorób odzwierzęcych i odzwierzęcych czynników chorobotwórczych a

także związanej z nimi oporności na środki przeciw drobnoustrojowe

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 16 stycznia

2008 r. w sprawie sposobu prowadzenia dokumentacji związanej ze

zwalczaniem chorób zakaźnych zwierząt

background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

46

PTAKI

KIERUNEK BADANIA

GRYPA PTAKÓW

Avian influenza

METODA / TEST

HA

UWAGI SPECJALNE

Ze względu na

potencjalne ryzyko zakażenia osób

zaangażowanych w

próbkobranie należy zachować szczególnie surowe środki ostrożności.

MATERIAŁ DO

BADANIA

Od ptaków padłych do badań pobiera się: tchawicę, płuca, mózg, śledzionę,

serce, wątrobę, nerki oraz jelita z treścią lub kał.

Przyżyciowo pobiera się od ptaków wymazy z tchawicy i szpary

podniebiennej oraz wymazy z kloaki wraz z kałem. Wskazane jest również
pobranie próbki z innych zmienionych narządów.

REPREZENTATYWNA

LICZBA PRÓBEK

Próbki do izolacji wirusa AI powinny pochodzić od co najmniej 5 ptaków

świeżo padłych i/lub chorych, poddanych humanitarnemu ubojowi.

Wymazy z kloaki wraz z kałem należy pobrać od co najmniej 20 ptaków.

SPRZĘT NIEZBĘDNY

DO POBRANIA

POJEDYNCZEJ

PRÓBKI

· sterylne plastikowe pojemniki lub podwójne, wodoszczelne, szczelnie

zamykane plastikowe woreczki

· waciki do pobierania wymazów z kloaki

PROCEDURA

POBRANIA PRÓBKI

Ze stada podejrzanego o zakażenie należy pobrać wymazy z kloaki wraz z

kałem (na waciku musi być wyraźnie widoczny kał).

Próbki należy pobierać z zachowaniem zasad aseptyki, do sterylnych

plastikowych pojemników lub podwójnych wodoszczelnych plastikowych

woreczków, szczelnie zamykanych, oddzielnie lub jako próbki zbiorcze, z

wyjątkiem kału i treści jelit, które puluje się oddzielnie.

WYMAGANIA

ZWIĄZANE Z

PRZECHOWYWANIEM

I TRANSPORTEM

Przechowywać i transportować w temperaturze 4°C.

DOKUMENTACJA

TOWARZYSZĄCA

Załącznik 1 – Pismo przewodnie do próbek przekazywanych do

laboratoryjnych badań diagnostycznych

CZAS NA

DOSTARCZENIE

POBRANEGO

MATERIAŁU DO

LABORATORIUM

Natychmiast po pobraniu.

LABORATORIUM

WETERYNARYJNE
POSIADAJĄCE

AKREDYTACJĘ

METODY

PRAWODAWSTWO UE Decyzja Komisji 2006/437/WE zatwierdzająca podręcznik diagnostyczny

dotyczący grypy ptaków, przewidziany w dyrektywie Rady 2005/94/WE

PRAWODAWSTWO

POLSKIE

· Ustawa z dnia 11 marca 2004 r. o ochronie zdrowia zwierząt oraz

zwalczaniu chorób zakaźnych zwierząt

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 17 grudnia

2004 r. w sprawie określenia jednostek chorobowych, sposobu

prowadzenia kontroli oraz zakresu badań kontrolnych zwierząt

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 25 listopada

2005 r. w sprawie zakresu, sposobu i terminów przekazywania

informacji o występowaniu chorób zakaźnych zwierząt podlegających

obowiązkowi zwalczania i rejestracji oraz o wynikach monitorowania

chorób odzwierzęcych i odzwierzęcych czynników chorobotwórczych a
także związanej z nimi oporności na środki przeciw drobnoustrojowe

· Rozporządzenie Rady Ministrów z dnia 30 maja 2007 r. w sprawie

wprowadzenia programu zwalczania enzootycznej białaczki bydła,

gruźlicy bydła, brucelozy u bydła, wścieklizny, gąbczastej

encefalolopatii oraz programu zwalczania i kontroli zakażeń wirusami

background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

47

wysoce zjadliwej grypy ptaków dawny pomór drobiu w drobiu i ptaków

dzikich

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 18 grudnia

2007 r. w sprawie zwalczania grypy ptaków

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 16 stycznia

2008 r. w sprawie sposobu prowadzenia dokumentacji związanej ze

zwalczaniem chorób zakaźnych zwierząt

background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

48

PTAKI

KIERUNEK BADANIA

MYKOPLAZMY DROBIU

Avian mycoplasmosis

METODA / TEST

· Wykrycie zarazków Mycoplasma poprzez wykazanie wzrostu na

podłożach PPLO charakterystycznych kolonii mykoplazm, a następnie

ich identyfikacja na selektywnych dla mykoplazm podłożach, z

zastosowaniem testów biochemicznych i/lub immunologicznych.

· Odczyn aglutynacji płytowej z użyciem antygenów (zinaktywowanych).

· ELISA.

UWAGI SPECJALNE

MATERIAŁ DO

BADANIA

Od ptaków żywych należy pobrać próbki krwi i/lub wymaz z tchawicy, ze

szczeliny podniebiennej, kloaki lub prącia. W stadach gdzie prowadzona

jest inseminacja należy pobrać próbki spermy. W zakładzie wylęgowym do

badań pobiera się zamarłe w czasie klucia zarodki (z nie uszkodzoną

skorupą)

Od ptaków padłych lub dobitych należy pobrać próbki z jamy nosowej,

zatok, tchawicy, worków powietrznych, jajnika i z jajowodu, kloaki lub
prącia.

W środowisku kurnika pobrać wymazy z systemów wentylacyjnych, z

poideł i karmideł.

REPREZENTATYWNA

LICZBA PRÓBEK

Zawsze należy pobierać 60 próbek danego materiału.

SPRZĘT NIEZBĘDNY

DO POBRANIA

POJEDYNCZEJ

PRÓBKI

Sterylne igły, probówki, wymazówki i pęsety.

PROCEDURA

POBRANIA PRÓBKI

Próbki krwi pobrać od ptaków losowo schwytanych (z żyły skrzydłowej lub

po skrwawieniu).

W laboratorium do badania można łączyć (pulować) po 10 próbek

indywidualnych.

WYMAGANIA

ZWIĄZANE Z

PRZECHOWYWANIEM

I TRANSPORTEM

Przechowywać w temperaturze od 2 do 8°C.

DOKUMENTACJA

TOWARZYSZĄCA

Załącznik 1 – Pismo przewodnie do próbek przekazywanych do

laboratoryjnych badań diagnostycznych

CZAS NA

DOSTARCZENIE

POBRANEGO

MATERIAŁU DO

LABORATORIUM

Jak najszybciej.

LABORATORIUM

WETERYNARYJNE

POSIADAJĄCE
AKREDYTACJĘ

METODY

· ZHW w Krakowie

- odczyn aglutynacji płytowej z użyciem antygenów (zinaktywowanych)

- ELISA

· ZHW w Warszawie

- odczyn aglutynacji płytowej z użyciem antygenów (zinaktywowanych)

· ZHW w Poznaniu

- odczyn aglutynacji płytowej z użyciem antygenów (zinaktywowanych)

- ELISA

· ZHW w Szczecinie

- odczyn aglutynacji płytowej z użyciem antygenów (zinaktywowanych)

- ELISA

· PIWet-PIB w Puławach

- odczyn aglutynacji płytowej z użyciem antygenów (zinaktywowanych)

- ELISA

PRAWODAWSTWO UE Dyrektywa Rady 90/539/EWG z 15 października 1990 roku w sprawie

warunków zdrowotnych zwierząt, regulujących handel

background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

49

wewnątrzwspólnotowy i przywóz z państw trzecich drobiu i jaj wylęgowych

PRAWODAWSTWO

POLSKIE

· Ustawa z dnia 11 marca 2004 r. o ochronie zdrowia zwierząt oraz

zwalczaniu chorób zakaźnych zwierząt

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 25 listopada

2005 r. w sprawie zakresu, sposobu i terminów przekazywania informacji

o występowaniu chorób zakaźnych zwierząt podlegających obowiązkowi
zwalczania i rejestracji oraz o wynikach monitorowania chorób

odzwierzęcych i odzwierzęcych czynników chorobotwórczych a także

związanej z nimi oporności na środki przeciw drobnoustrojowe

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 16 stycznia

2008 r. w sprawie sposobu prowadzenia dokumentacji związanej ze

zwalczaniem chorób zakaźnych zwierząt

background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

50

PTAKI

KIERUNEK BADANIA

RZEKOMY POMÓR DROBIU

Newcastle disease - ND

METODA / TEST

Izolacja wirusa i jego identyfikacja metodą HA.

UWAGI SPECJALNE

Ze względu na

potencjalne ryzyko zakażenia osób

zaangażowanych w

próbkobranie należy zachować szczególnie surowe środki ostrożności.

MATERIAŁ DO

BADANIA

Od ptaków padłych i/lub chorych poddanych humanitarnemu zabiciu do

badań pobiera się: tchawicę, płuca, mózg, śledzionę, wątrobę, nerki oraz

jelita z treścią lub kał.

Przyżyciowo pobiera się od ptaków wymazy z tchawicy i szpary
podniebiennej oraz wymazy z kloaki wraz z kałem. Wskazane jest również

pobranie próbki z innych zmienionych narządów.

REPREZENTATYWNA

LICZBA PRÓBEK

Próbki do izolacji wirusa ND powinny pochodzić od co najmniej 5 ptaków

świeżo padłych i/lub chorych, poddanych humanitarnemu ubojowi.

Wymazy z kloaki wraz z kałem należy pobrać od co najmniej 20 ptaków.

SPRZĘT NIEZBĘDNY

DO POBRANIA

POJEDYNCZEJ

PRÓBKI

· Sterylne plastikowe pojemniki lub podwójne, wodoszczelne, szczelnie

zamykane plastikowe woreczki;

· Waciki do pobierania wymazów z kloaki.

PROCEDURA

POBRANIA PRÓBKI

Ze stada podejrzanego o zakażenie należy pobrać wymazy z kloaki wraz z

kałem (na waciku musi być wyraźnie widoczny kał) i umieścić w podłożu

transportowym (1-2ml PBS z dodatkiem antybiotyków: penicylina 10 tys.

JM/ml, streptomycyna 10mg/ml, gentamycyna 0,25 mg/ml, mykostatyna 5

tys. JM/ml ).

Próbki należy pobierać z zachowaniem zasad aseptyki, do sterylnych

plastikowych pojemników lub podwójnych wodoszczelnych plastikowych

woreczków, szczelnie zamykanych, oddzielnie lub jako próbki zbiorcze, z

wyjątkiem kału i treści jelit, które puluje się oddzielnie.

WYMAGANIA

ZWIĄZANE Z

PRZECHOWYWANIEM

I TRANSPORTEM

Transportować w temperaturze od 2 do 8°C.

DOKUMENTACJA

TOWARZYSZĄCA

Załącznik 1 - Pismo przewodnie do próbek przekazywanych do

laboratoryjnych badań diagnostycznych

CZAS NA

DOSTARCZENIE

POBRANEGO
MATERIAŁU DO

LABORATORIUM

LABORATORIUM

WETERYNARYJNE

POSIADAJĄCE

AKREDYTACJĘ

METODY

PIWet-PIB w Puławach

PRAWODAWSTWO UE Dyrektywa Rady 92/66/EWG wprowadzająca wspólnotowe środki

zwalczania rzekomego pomoru drobiu

PRAWODAWSTWO

POLSKIE

· Ustawa z dnia 11 marca 2004 r. o ochronie zdrowia zwierząt oraz

zwalczaniu chorób zakaźnych zwierząt

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 29 lipca 2005

r. w sprawie zwalczania rzekomego pomoru drobiu

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 25 listopada

2005 r. w sprawie zakresu, sposobu i terminów przekazywania
informacji o występowaniu chorób zakaźnych zwierząt podlegających

obowiązkowi zwalczania i rejestracji oraz o wynikach monitorowania

chorób odzwierzęcych i odzwierzęcych czynników chorobotwórczych a

także związanej z nimi oporności na środki przeciw drobnoustrojowe

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 16 stycznia

background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

51

2008 r. w sprawie sposobu prowadzenia dokumentacji związanej ze

zwalczaniem chorób zakaźnych zwierząt

background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

52

PSZCZOŁY

KIERUNEK BADANIA

ZGNILEC AMERYKAŃSKI PSZCZÓŁ

American foulbrood

METODA / TEST

Izolacja i identyfikacja bakterii Paenibacillus larvae z badanego materiału

w drodze badań mikrobiologicznych (hodowlanych i mikroskopowych).

UWAGI SPECJALNE

MATERIAŁ DO

BADANIA

1. Patologicznie zmieniony czerw

*

- przy stwierdzeniu w rodzinach

pszczelich obecności patologicznie zmienionego czerwiu;

2. Miód lub zapasy pokarmu - z rodzin podejrzanych o zakażenie, w

których nie stwierdza się klinicznych objawów choroby.

REPREZENTATYWNA

LICZBA PRÓBEK

Z kilku pni chorych lub podejrzanych o chorobę.

SPRZĘT NIEZBĘDNY

DO POBRANIA

POJEDYNCZEJ

PRÓBKI

Metalowa łyżka, duży skalpel albo nóż używany w pasiece lub duży nóż

stołowy.

PROCEDURA

POBRANIA PRÓBKI

Patologicznie zmieniony czerw - z chorych rodzin, z plastra z czerwiem

krytym należy wyciąć fragment o wymiarach 10 x 10 cm (wg OIE około 20
cm

2

). Pobrany wycinek powinien zawierać możliwie dużo komórek ze

zmienionym chorobowo czerwiem, natomiast niepożądana jest w nim

obecność miodu.

Miód lub zapasy pokarmu - metalową łyżką wybrać próbki zapasów

pokarmu z komórek plastrów z czerwiem. Próby można pobrać z

pojedynczych rodzin lub można pobrać próby zbiorcze, wówczas 1 próba

zbiorcza stanowi zapasy pokarmu z 6 rodzin. Wielkość 1 próby powinna

wynosić około 50ml miodu (zapasu pokarmu).

Próby miodu do badań można również pobrać z miodu już odwirowanego

(przeznaczonego do sprzedaży). Jednak w takim przypadku, wykrycie w

próbce obecności przetrwalników nie pozwala na dokładną identyfikację
zakażonych rodzin.

WYMAGANIA

ZWIĄZANE Z

PRZECHOWYWANIEM

I TRANSPORTEM

Patologicznie zmieniony czerw - w przypadku wycinków plastrów, pobrane

próby należy luźno opakować w papier i najlepiej umieścić w twardym,

kartonowym lub drewnianym pudełku, zabezpieczającym przed

zgnieceniem. Do pakowania prób nie należy używać materiałów

utrudniających przepływ powietrza (torby plastikowe, folia aluminiowa,

opakowania szklane lub metalowe), które sprzyjają rozwojowi pleśni i

utrudniają wykonanie badań.

Miód lub zapasy pokarmu - próby miodu powinny być umieszczone w

czystych, szklanych opakowaniach, zabezpieczonych dodatkowo przed
stłuczeniem.

Oznakowanie próbek - na papierowym opakowaniu, w który zapakowano

pobrane wycinki plastrów, umieszcza się numer ula. Każdą próbkę (miód i

wycinki) zaopatruje się w etykietę zawierającą opis i numer

identyfikacyjny, rodzaj próbki, datę i miejsce jej pobrania, imię i nazwisko

oraz adres posiadacza pszczół.

Temperatura - czynności przygotowawcze przeprowadza się w

temperaturze pokojowej. Transport i przechowywanie prób w temp. poniżej

0ºC.

DOKUMENTACJA

TOWARZYSZĄCA

Załącznik 1 – Pismo przewodnie do próbek przekazywanych do

laboratoryjnych badań diagnostycznych

CZAS NA

DOSTARCZENIE

POBRANEGO

MATERIAŁU DO

LABORATORIUM

Jak najszybciej, nie później niż przed upływem 24 godzin od pobrania.

*

Czerw – w pszczelarstwie łączna nazwa stadiów rozwojowych pszczoły miodnej od jaja do poczwarki.

background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

53

LABORATORIUM

WETERYNARYJNE
POSIADAJĄCE

AKREDYTACJĘ

METODY

PRAWODAWSTWO UE
PRAWODAWSTWO

POLSKIE

· Ustawa z dnia 11 marca 2004 r. o ochronie zdrowia zwierząt oraz

zwalczaniu chorób zakaźnych zwierząt

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 14 września

2005 r. w sprawie zwalczania zgnilca amerykańskiego pszczół

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 25 listopada

2005 r. w sprawie zakresu, sposobu i terminów przekazywania

informacji o występowaniu chorób zakaźnych zwierząt podlegających

obowiązkowi zwalczania i rejestracji oraz o wynikach monitorowania

chorób odzwierzęcych i odzwierzęcych czynników chorobotwórczych a

także związanej z nimi oporności na środki przeciw drobnoustrojowe

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 16 stycznia

2008 r. w sprawie sposobu prowadzenia dokumentacji związanej ze

zwalczaniem chorób zakaźnych zwierząt

background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

54

PSZCZOŁY

KIERUNEK BADANIA

ZGNILEC EUROPEJSKI

European foulbrood

METODA / TEST

Izolacja i identyfikacja bakterii Melissococcus plutonius z badanego

materiału w drodze badań mikrobiologicznych (hodowlanych i

mikroskopowych).

UWAGI SPECJALNE

MATERIAŁ DO

BADANIA

Patologicznie zmieniony czerw

*

.

REPREZENTATYWNA

LICZBA PRÓBEK

Z kilku pni chorych lub podejrzanych o chorobę.

SPRZĘT NIEZBĘDNY

DO POBRANIA

POJEDYNCZEJ

PRÓBKI

Metalowa łyżka, duży skalpel albo nóż używany w pasiece lub duży nóż

stołowy.

PROCEDURA

POBRANIA PRÓBKI

Z chorych rodzin, z plastra z czerwiem krytym należy wyciąć fragment o

wymiarach 10 x 10 cm (wg OIE około 20 cm

2

). Pobrany wycinek powinien

zawierać możliwie dużo komórek ze zmienionym chorobowo czerwiem,
natomiast niepożądana jest w nim obecność miodu.

WYMAGANIA

ZWIĄZANE Z

PRZECHOWYWANIEM

I TRANSPORTEM

W przypadku wycinków plastrów, pobrane próby należy luźno opakować w

papier i najlepiej umieścić w twardym, kartonowym lub drewnianym

pudełku, zabezpieczającym przed zgnieceniem. Do pakowania prób nie

należy używać materiałów utrudniających przepływ powietrza (torby

plastikowe, folia aluminiowa, opakowania szklane lub metalowe), które

sprzyjają rozwojowi pleśni i utrudniają wykonanie badań.

Czynności przygotowawcze przeprowadza się w temperaturze pokojowej.

Transport i przechowywanie prób w temp. poniżej 0ºC.

DOKUMENTACJA

TOWARZYSZĄCA

Załącznik 1 – Pismo przewodnie do próbek przekazywanych do

laboratoryjnych badań diagnostycznych

CZAS NA

DOSTARCZENIE

POBRANEGO

MATERIAŁU DO

LABORATORIUM

Jak najszybciej, nie później niż w ciągu 24 godzin.

LABORATORIUM

WETERYNARYJNE

POSIADAJĄCE
AKREDYTACJĘ

METODY

PRAWODAWSTWO UE
PRAWODAWSTWO

POLSKIE

·

Ustawa z dnia 11 marca 2004 r. o ochronie zdrowia zwierząt oraz
zwalczaniu chorób zakaźnych zwierząt

·

Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 25 listopada
2005 r. w sprawie zakresu, sposobu i terminów przekazywania

informacji o występowaniu chorób zakaźnych zwierząt podlegających

obowiązkowi zwalczania i rejestracji oraz o wynikach monitorowania

chorób odzwierzęcych i odzwierzęcych czynników chorobotwórczych a

także związanej z nimi oporności na środki przeciw drobnoustrojowe

·

Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 16 stycznia
2008 r. w sprawie sposobu prowadzenia dokumentacji związanej ze

zwalczaniem chorób zakaźnych zwierząt

*

Czerw – w pszczelarstwie łączna nazwa stadiów rozwojowych pszczoły miodnej od jaja do poczwarki.

background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

55

ZWIERZĘTA AKWAKULTURY

KIERUNEK BADANIA

BONAMIOZA

Bonamia ostreae

METODA / TEST

Mikroskopowa identyfikacja Bonamia ostreae na podstawie cech

morfologicznych barwionych preparatów odciskowych i histologicznych.

UWAGI SPECJALNE

MATERIAŁ DO

BADANIA

Do laboratorium należy dostarczyć żywe ostrygi lub prawidłowo pobrane

próbki, zabezpieczone w płynie utrwalającym (Załącznik 8 – Przygotowanie

płynów utrwalających). Materiał do badań stanowią preparaty odciskowe

oraz histologiczne przygotowane z ostryg.

REPREZENTATYWNA

LICZBA PRÓBEK

Liczba ostryg stanowiących próbę zależy od wielkości produkcji danego

obiektu, jednak nie mniej niż 30 sztuk.

Zależność wielkości próby od liczebności produkcji i prawdopodobieństwa

wykrycia patogenu, przy założonym rozpowszechnieniu patogenu w grupie

i stuprocentowej czułości metody badawczej, obrazuje poniższa tabela

autorstwa Ossiander i Wedemeyer, zawarta w podręczniku do diagnostyki

chorób zwierząt wodnych OIE:

Liczebność

produkcji

Przy 2%

rozpowszechnieniu,

wielkość próby

Przy 5%

rozpowszechnieniu,

wielkość próby

Przy 10%

rozpowszechnieniu,

wielkość próby

50

50

35

20

100

75

45

23

250

110

50

25

500

130

55

26

1000

140

55

27

1500

140

55

27

2000

145

60

27

4000

145

60

27

10.000

145

60

27

100.000

lub

więcej

150

60

30

SPRZĘT NIEZBĘDNY

DO POBRANIA

POJEDYNCZEJ

PRÓBKI

Skalpel, nożyce i nożyczki, kasetka do badań histologicznych lub probówka,

płyn utrwalający.

PROCEDURA

POBRANIA PRÓBKI

Żywe ostrygi powinny być pobierane z obiektu/strefy hodowli w taki sposób,

aby dana próba umożliwiła przegląd i ocenę stanu zdrowotnego całej

populacji mięczaków, a więc wszystkich grup wiekowych.

Próbki zabezpieczone w płynie utrwalającym - w czasie przeprowadzania

sekcji skalpelem dokonuje się poprzecznego cięcia poprzez tkanki miękkie
ostrygi tak, aby preparat zawierał przekrój przez jak najwięcej narządów.

Próbkę umieszcza się w kasetce do badań histologicznych lub probówce i

utrwala w płynie utrwalającym minimum 2 dni. Stosunek płynu do próbki

powinien wynosić 1:10 (Załącznik 8 – Przygotowanie płynów

utrwalających).

WYMAGANIA

ZWIĄZANE Z

PRZECHOWYWANIEM

I TRANSPORTEM

Ostrygi transportowane do laboratorium muszą być tak zabezpieczone, aby

nie uległy uszkodzeniu ani nie wystąpiły śnięcia.

DOKUMENTACJA

TOWARZYSZĄCA

Załącznik 1 – Pismo przewodnie do próbek przekazywanych do

laboratoryjnych badań diagnostycznych

CZAS NA

DOSTARCZENIE

POBRANEGO

MATERIAŁU DO

LABORATORIUM

Transport żywych ostryg do laboratorium powinien odbyć się do 24 godzin

od odłowu.

background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

56

LABORATORIUM

WETERYNARYJNE
POSIADAJĄCE

AKREDYTACJĘ

METODY

PRAWODAWSTWO UE

· Dyrektywa Rady 91/67/EWG dotycząca warunków zdrowotnych

zwierząt, obowiązujących przy wprowadzaniu na rynek zwierząt i

produktów akwakultury

· Dyrektywa Rady 95/70/WE wprowadzająca minimalne wspólnotowe

środki zwalczania niektórych chorób małży

· Decyzja Komisji 2002/878/WE ustanawiająca plany pobierania próbek

oraz metody diagnostyczne stosowane w celu wykrywania i

potwierdzania występowania u mięczaków Bonamiosis (Bonami ostreae)

i Marteiliosis (Marteilia refringens)

· Decyzja

Komisji

2008/650/WE

zmieniająca

Dyrektywę

Rady

82/894/EWG w sprawie wykazu zgłaszania chorób zwierząt we

wspólnocie poprzez włączenie niektórych chorób do wykazu chorób

wymagających

zgłaszania

oraz

skreśleniu

z

tego

wykazu

enterowirusowego zapalanie mózgu i rdzenia u świń

PRAWODAWSTWO

POLSKIE

· Ustawa z dnia 11 marca 2004 r. o ochronie zdrowia zwierząt oraz

zwalczaniu chorób zakaźnych zwierząt

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 17 grudnia

2004 r. w sprawie określenia jednostek chorobowych, sposobu

prowadzenia kontroli oraz zakresu badań kontrolnych zwierząt

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 25 listopada

2005 r. w sprawie zakresu, sposobu i terminów przekazywania informacji

o występowaniu chorób zakaźnych zwierząt podlegających obowiązkowi
zwalczania i rejestracji oraz o wynikach monitorowania chorób

odzwierzęcych i odzwierzęcych czynników chorobotwórczych a także

związanej z nimi oporności na środki przeciw drobnoustrojowe

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 12 kwietnia

2006 r. w sprawie zwalczania niektórych chorób zakaźnych mięczaków

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 16 stycznia

2008 r. w sprawie sposobu prowadzenia dokumentacji związanej ze

zwalczaniem chorób zakaźnych zwierząt

background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

57

ZWIERZĘTA AKWAKULTURY

KIERUNEK BADANIA

MARTEILIOZA

Marteilia refringens

METODA / TEST

Mikroskopowa identyfikacja Marteilia refringens na podstawie cech

morfologicznych barwionych preparatów odciskowych i histologicznych.

UWAGI SPECJALNE

MATERIAŁ DO

BADANIA

Do laboratorium należy dostarczyć żywe ostrygi lub prawidłowo pobrane

próbki, zabezpieczone w płynie utrwalającym (Załącznik 8 – Przygotowanie

płynów utrwalających). Materiał do badań stanowią preparaty odciskowe

oraz histologiczne przygotowane z ostryg.

REPREZENTATYWNA

LICZBA PRÓBEK

Liczba ostryg stanowiących próbę zależy od wielkości produkcji danego

obiektu, jednak nie mniej niż 30 sztuk.

Zależność wielkości próby od liczebności produkcji i prawdopodobieństwa

wykrycia patogenu, przy założonym rozpowszechnieniu patogenu w grupie

i stuprocentowej czułości metody badawczej, obrazuje poniższa tabela

autorstwa Ossiander i Wedemeyer, zawarta w podręczniku do diagnostyki

chorób zwierząt wodnych OIE:

Liczebność

produkcji

Przy 2%

rozpowszechnieniu,

wielkość próby

Przy 5%

rozpowszechnieniu,

wielkość próby

Przy 10%

rozpowszechnieniu,

wielkość próby

50

50

35

20

100

75

45

23

250

110

50

25

500

130

55

26

1000

140

55

27

1500

140

55

27

2000

145

60

27

4000

145

60

27

10.000

145

60

27

100.000

lub

więcej

150

60

30

SPRZĘT NIEZBĘDNY

DO POBRANIA

POJEDYNCZEJ

PRÓBKI

Skalpel, nożyce, nóż, kasetka do badań histologicznych lub probówka, płyn

utrwalający.

PROCEDURA

POBRANIA PRÓBKI

Żywe ostrygi powinny być pobierane z obiektu/strefy hodowli w taki sposób,

aby dana próba umożliwiła przegląd i ocenę stanu zdrowotnego całej

populacji mięczaków, a więc wszystkich grup wiekowych.

Próbki zabezpieczone w płynie utrwalającym. W czasie przeprowadzania

sekcji skalpelem dokonuje się poprzecznego cięcia poprzez tkanki miękkie
ostrygi tak, aby preparat zawierał przekrój przez jak najwięcej narządów.

Próbkę umieszcza się w kasetce do badań histologicznych lub probówce i

utrwala w płynie utrwalającym minimum 2 dni. Stosunek płynu do próbki

powinien wynosić 1:10 (Załącznik 8 – Przygotowanie płynów

utrwalających).

WYMAGANIA

ZWIĄZANE Z

PRZECHOWYWANIEM

I TRANSPORTEM

Ostrygi transportowane do laboratorium muszą być tak zabezpieczone, aby

nie uległy uszkodzeniu ani nie wystąpiły śnięcia.

DOKUMENTACJA

TOWARZYSZĄCA

Załącznik 1 – Pismo przewodnie do próbek przekazywanych do

laboratoryjnych badań diagnostycznych

CZAS NA

DOSTARCZENIE

POBRANEGO

MATERIAŁU DO

LABORATORIUM

Transport żywych ostryg do laboratorium powinien odbyć się do 24 godzin

od odłowu.

background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

58

LABORATORIUM

WETERYNARYJNE
POSIADAJĄCE

AKREDYTACJĘ

METODY

PRAWODAWSTWO UE

· Dyrektywa Rady 91/67/EWG dotycząca warunków zdrowotnych

zwierząt, obowiązujących przy wprowadzaniu na rynek zwierząt i

produktów akwakultury

· Dyrektywa Rady 95/70/WE wprowadzająca minimalne wspólnotowe

środki zwalczania niektórych chorób małży

· Decyzja Komisji 2002/878/WE ustanawiająca plany pobierania próbek

oraz metody diagnostyczne stosowane w celu wykrywania i

potwierdzania występowania u mięczaków Bonamiosis (Bonami ostreae)

i Marteiliosis (Marteilia refringens)

· Decyzja

Komisji

2008/650/WE

zmieniająca

Dyrektywę

Rady

82/894/EWG w sprawie wykazu zgłaszania chorób zwierząt we

wspólnocie poprzez włączenie niektórych chorób do wykazu chorób

wymagających

zgłaszania

oraz

skreśleniu

z

tego

wykazu

enterowirusowego zapalanie mózgu i rdzenia u świń

PRAWODAWSTWO

POLSKIE

· Ustawa z dnia 11 marca 2004 r. o ochronie zdrowia zwierząt oraz

zwalczaniu chorób zakaźnych zwierząt

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 17 grudnia

2004 r. w sprawie określenia jednostek chorobowych, sposobu

prowadzenia kontroli oraz zakresu badań kontrolnych zwierząt

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 25 listopada

2005 r. w sprawie zakresu, sposobu i terminów przekazywania informacji

o występowaniu chorób zakaźnych zwierząt podlegających obowiązkowi
zwalczania i rejestracji oraz o wynikach monitorowania chorób

odzwierzęcych i odzwierzęcych czynników chorobotwórczych a także

związanej z nimi oporności na środki przeciw drobnoustrojowe

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 12 kwietnia

2006 r. w sprawie zwalczania niektórych chorób zakaźnych mięczaków

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 16 stycznia

2008 r. w sprawie sposobu prowadzenia dokumentacji związanej ze

zwalczaniem chorób zakaźnych zwierząt

background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

59

ZWIERZĘTA AKWAKULTURY

KIERUNEK BADANIA

WIOSENNA WIREMIA KARPI

Spring viraemia of carp - SVC

METODA / TEST

Identyfikacja wirusa (ELISA) wyizolowanego uprzednio w hodowli

komórkowej.

UWAGI SPECJALNE

MATERIAŁ DO

BADANIA

Ryby (żywe lub martwe).

REPREZENTATYWNA
LICZBA PRÓBEK

Ilość ryb
1. od 30 szt. do 150 szt. ryb dwukrotnie w ciągu roku - w przypadku próbek

pobieranych do badań monitoringowych;

2. 10 szt. ryb z objawami klinicznymi - w przypadku podejrzenia choroby;

3. 150 szt. ryb dwukrotnie w ciągu roku - w przypadku próbek do badań w

ramach realizacji programu zwalczania SVC.

Zasada priorytetów przy doborze ryb w próbce:

1. ryby wykazujące objawy chorobowe oraz ryby o osłabionej kondycji,

2. ryby należące do najbardziej wrażliwych na infekcję wirusów, wg

załączonego wykazu:

a. Karp (Cyprinus carpio) i koi karp

b. Amur (Ctenopharyngodon idella)
c. Tołpyga biała (Hypophthalmichthys molitrix)

d. Tołpyga pstra (Aristichthys nobilis)

e. Karaś srebrzysty (Carassius auratus)

f. Karaś pospolity (Carassius carassius)

g. Karaś „złota rybka” (Carassius auratus)

h. Lin (Tinca tinca)

i. Sum (Silurus glanis).

SPRZĘT NIEZBĘDNY
DO POBRANIA

POJEDYNCZEJ

PRÓBKI

Plombownica do zaplombowania próbki oraz:
Żywe ryby - pojemniki (kontenery) zapewniające bezpieczeństwo,

odpowiednią przestrzeń i warunki, a w szczególności: wentylację, właściwą

temperaturę, zaopatrzenie w wodę i tlen.

Uśmiercone ryby:

· worek foliowy (2 szt.),

· papier posiadający właściwości absorpcyjne,

· lód lub wkłady chłodzące,

· pudełko styropianowe.

PROCEDURA

POBRANIA PRÓBKI

Do badań monitoringowych w kierunku SVC, próbki pobiera się, gdy

temperatura wody w ciągu doby nie przekracza 15ºC. Próbki ryb do

badania pobiera się dwa razy w ciągu roku w odstępie minimum 4 miesięcy

(w miesiącach marzec-maj i wrzesień-grudzień).

W przypadku podejrzenia wystąpienia klinicznej postaci SVC nie stosuje

się ograniczeń termicznych, czy też czasowych.

WYMAGANIA

ZWIĄZANE Z

PRZECHOWYWANIEM

I TRANSPORTEM

Każda próbka ryb powinna być zaplombowana przez nadzorującego

pobranie urzędowego lekarza (ewentualnie upoważnioną przez niego osobę)

oraz zaopatrzona w pismo przewodnie.

Żywe ryby transportuje się w pojemnikach (kontenerach) zapewniających

bezpieczeństwo, odpowiednią przestrzeń i warunki, a w szczególności:
wentylację, właściwą temperaturę, zaopatrzenie w wodę i tlen.

Uśmiercone ryby umieszcza się w worku foliowym, zawija się w papier

posiadający właściwości absorpcyjne, a następnie układa między

warstwami lodu lub wkładów chłodzących. Całość umieszcza się w worku

foliowym, a następnie w pudełku styropianowym. Temperatura wewnątrz

opakowania na początku transportu powinna wynosić około 4°C, natomiast

na końcu, tj. przy odbiorze w laboratorium, nie powinna przekraczać 10°C.

Ryby nie mogą być zamrożone!

DOKUMENTACJA

TOWARZYSZĄCA

Załącznik 1 – Pismo przewodnie do próbek przekazywanych do

laboratoryjnych badań diagnostycznych

background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

60

CZAS NA

DOSTARCZENIE
POBRANEGO

MATERIAŁU DO

LABORATORIUM

Czas transportu próbek do laboratorium może wynosić maksymalnie:

- w przypadku ryb żywych - 6 h.
- w przypadku ryb uśmierconych - 12 h.

LABORATORIUM

WETERYNARYJNE

POSIADAJĄCE

AKREDYTACJĘ

METODY

· ZHW w Bydgoszczy

PRAWODAWSTWO UE Decyzja Komisji 2001/183/WE ustanawiająca plany pobierania próbek i

metody diagnostyczne do celów wykrywania i potwierdzania występowania

niektórych chorób ryb oraz uchylająca decyzję 92/532/EWG

PRAWODAWSTWO

POLSKIE

·

Ustawa z dnia 11 marca 2004 r. o ochronie zdrowia zwierząt oraz
zwalczaniu chorób zakaźnych zwierząt

·

Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 25 listopada
2005 r. w sprawie zakresu, sposobu i terminów przekazywania

informacji o występowaniu chorób zakaźnych zwierząt podlegających

obowiązkowi zwalczania i rejestracji oraz o wynikach monitorowania

chorób odzwierzęcych i odzwierzęcych czynników chorobotwórczych a

także związanej z nimi oporności na środki przeciw drobnoustrojowe

·

Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 16 stycznia
2008 r. w sprawie sposobu prowadzenia dokumentacji związanej ze

zwalczaniem chorób zakaźnych zwierząt

background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

61

ZWIERZĘTA AKWAKULTURY

KIERUNEK BADANIA

WIRUSOWA POSOCZNICA KRWOTOCZNA

Viral haemorrhagic septicaemia - VHS

METODA / TEST

Identyfikacja wirusa (ELISA) wyizolowanego uprzednio w hodowli

komórkowej.

UWAGI SPECJALNE

MATERIAŁ DO

BADANIA

Ryby (żywe lub martwe).

REPREZENTATYWNA
LICZBA PRÓBEK

Ilość ryb

1. od 30 szt. do 150 szt. ryb dwukrotnie w ciągu roku - w przypadku

próbek pobieranych do badań monitoringowych;

2. 10 szt. ryb z objawami klinicznymi - w przypadku podejrzenia choroby;

3. 150 szt. ryb dwukrotnie w ciągu roku - w przypadku próbek do badań

w ramach realizacji programu zwalczania VHS i IHN.

Zasada priorytetów przy doborze ryb w próbce:

1. ryby wykazujące objawy chorobowe oraz ryby o osłabionej kondycji,

2. ryby należące do najbardziej wrażliwych na infekcję wirusów, wg

załączonego wykazu:

· Pstrąg tęczowy (Oncorhynchus mykiss)

· Pstrąg źródlany (Salvelinus fontinalis)

· Pstrąg potokowy (Salmo trutta)

· Łosoś atlantycki (Salmo salar)

· Szczupak (Esox lucius)

· Lipień (Thymallus thymallus)

· Korygonidy (Corygonus sp.)

SPRZĘT NIEZBĘDNY

DO POBRANIA

POJEDYNCZEJ

PRÓBKI

Plombownica do zaplombowania próbki oraz:

Żywe ryby - pojemniki (kontenery) zapewniające bezpieczeństwo,

odpowiednią przestrzeń i warunki, a w szczególności: wentylację, właściwą

temperaturę, zaopatrzenie w wodę i tlen.

Uśmiercone ryby:

· worek foliowy (2 szt.),

· papier posiadający właściwości absorpcyjne,

· lód lub wkłady chłodzące,

· pudełko styropianowe.

PROCEDURA

POBRANIA PRÓBKI

Do badań monitoringowych w kierunku VHS, próbki pobiera się, gdy

temperatura wody w ciągu doby nie przekracza 15ºC. Próbki ryb do

badania pobiera się dwa razy w ciągu roku w odstępie minimum 4 miesięcy

(w miesiącach marzec-maj i wrzesień-grudzień).

W przypadku podejrzenia wystąpienia klinicznej postaci VHS nie stosuje

się ograniczeń termicznych, czy też czasowych.

WYMAGANIA

ZWIĄZANE Z

PRZECHOWYWANIEM
I TRANSPORTEM

Każda próbka ryb powinna być zaplombowana przez nadzorującego

pobranie urzędowego lekarza (ewentualnie upoważnioną przez niego osobę)

oraz zaopatrzona w pismo przewodnie.
Żywe ryby transportuje się w pojemnikach (kontenerach) zapewniających

bezpieczeństwo, odpowiednią przestrzeń i warunki, a w szczególności:

wentylację, właściwą temperaturę, zaopatrzenie w wodę i tlen.

Uśmiercone ryby umieszcza się w worku foliowym, zawija się w papier

posiadający właściwości absorpcyjne, a następnie układa między

warstwami lodu lub wkładów chłodzących. Całość umieszcza się w worku

foliowym, a następnie w pudełku styropianowym. Temperatura wewnątrz

opakowania na początku transportu powinna wynosić około 4°C, natomiast

na końcu, tj. przy odbiorze w laboratorium, nie powinna przekraczać 10°C.

Ryby nie mogą być zamrożone!

DOKUMENTACJA

TOWARZYSZĄCA

Załącznik 1 – Pismo przewodnie do próbek przekazywanych do

laboratoryjnych badań diagnostycznych

CZAS NA

DOSTARCZENIE

Czas transportu próbek do laboratorium może wynosić maksymalnie:

- w przypadku ryb żywych - 6 godzin

background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

62

POBRANEGO

MATERIAŁU DO
LABORATORIUM

- w przypadku ryb uśmierconych - 12 godzin.

LABORATORIUM

WETERYNARYJNE

POSIADAJĄCE

AKREDYTACJĘ

METODY

· ZHW w Bydgoszczy

PRAWODAWSTWO UE Decyzja Komisji 2001/183/WE ustanawiająca plany pobierania próbek i

metody diagnostyczne do celów wykrywania i potwierdzania występowania

niektórych chorób ryb oraz uchylająca decyzję 92/532/EWG

PRAWODAWSTWO

POLSKIE

· Ustawa z dnia 11 marca 2004 r. o ochronie zdrowia zwierząt oraz

zwalczaniu chorób zakaźnych zwierząt

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 17 grudnia

2004 r. w sprawie określenia jednostek chorobowych, sposobu
prowadzenia kontroli oraz zakresu badań kontrolnych zwierząt

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 29 marca

2005 r. w sprawie zwalczania chorób zakaźnych ryb

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 25 listopada

2005 r. w sprawie zakresu, sposobu i terminów przekazywania

informacji o występowaniu chorób zakaźnych zwierząt podlegających

obowiązkowi zwalczania i rejestracji oraz o wynikach monitorowania

chorób odzwierzęcych i odzwierzęcych czynników chorobotwórczych a

także związanej z nimi oporności na środki przeciw drobnoustrojowe

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 16 stycznia

2008 r. w sprawie sposobu prowadzenia dokumentacji związanej ze

zwalczaniem chorób zakaźnych zwierząt

background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

63

ZWIERZĘTA AKWAKULTURY

KIERUNEK BADANIA

ZAKAŹNA ANEMIA ŁOSOSI

Infectious salmon anaemia - ISA

METODA / TEST

Identyfikacja wirusa (IFAT) wyizolowanego uprzednio w hodowli

komórkowej.

UWAGI SPECJALNE

MATERIAŁ DO

BADANIA

Ryby (żywe lub martwe).

REPREZENTATYWNA
LICZBA PRÓBEK

Ilość ryb

1. od 30 szt. do 150 szt. ryb dwukrotnie w ciągu roku - w przypadku

próbek pobieranych do badań monitoringowych;

2. 10 szt. ryb z objawami klinicznymi - w przypadku podejrzenia

choroby.

SPRZĘT NIEZBĘDNY

DO POBRANIA

POJEDYNCZEJ

PRÓBKI

Plombownica do zaplombowania próbki oraz:

Żywe ryby - pojemniki (kontenery) zapewniające bezpieczeństwo,

odpowiednią przestrzeń i warunki, a w szczególności: wentylację, właściwą

temperaturę, zaopatrzenie w wodę i tlen.

Uśmiercone ryby:

· worek foliowy (2 szt.),

· papier posiadający właściwości absorpcyjne,

· lód lub wkłady chłodzące,

· pudełko styropianowe.

PROCEDURA

POBRANIA PRÓBKI

Do badań monitoringowych w kierunku IHN próbki pobiera się, gdy

temperatura wody w ciągu doby nie przekracza 15ºC. Próbki ryb do

badania pobiera się dwa razy w ciągu roku w odstępie minimum 4 miesięcy

(w miesiącach marzec-maj i wrzesień-grudzień).

W przypadku podejrzenia wystąpienia klinicznej postaci IHN nie stosuje
się ograniczeń termicznych, czy też czasowych.

WYMAGANIA

ZWIĄZANE Z

PRZECHOWYWANIEM

I TRANSPORTEM

Każda próbka ryb powinna być zaplombowana przez nadzorującego

pobranie urzędowego lekarza (ewentualnie upoważnioną przez niego osobę)

oraz zaopatrzona w pismo przewodnie.

Żywe ryby transportuje się w pojemnikach (kontenerach) zapewniających

bezpieczeństwo, odpowiednią przestrzeń i warunki, a w szczególności:

wentylację, właściwą temperaturę, zaopatrzenie w wodę i tlen.

Uśmiercone ryby umieszcza się w worku foliowym, zawija się w papier

posiadający właściwości absorpcyjne, a następnie układa między

warstwami lodu lub wkładów chłodzących. Całość umieszcza się w worku

foliowym, a następnie w pudełku styropianowym. Temperatura wewnątrz
opakowania na początku transportu powinna wynosić około 4°C, natomiast

na końcu, tj. przy odbiorze w laboratorium, nie powinna przekraczać 10°C.

Ryby nie mogą być zamrożone!

DOKUMENTACJA

TOWARZYSZĄCA

Załącznik 1 – Pismo przewodnie do próbek przekazywanych do

laboratoryjnych badań diagnostycznych

CZAS NA

DOSTARCZENIE

POBRANEGO

MATERIAŁU DO
LABORATORIUM

Czas transportu próbek do laboratorium może wynosić maksymalnie:

- w przypadku ryb żywych - 6 godzin

- w przypadku ryb uśmierconych - 12 godzin.

LABORATORIUM

WETERYNARYJNE

POSIADAJĄCE

AKREDYTACJĘ

METODY

PRAWODAWSTWO UE

· Decyzja Komisji 2001/183/WE ustanawiająca plany pobierania próbek i

metody diagnostyczne do celów wykrywania i potwierdzania

występowania niektórych chorób ryb oraz uchylająca decyzję

92/532/EWG

background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

64

· Decyzja Komisji 203/466/WE ustanawiająca kryteria podziału na strefy

i urzędowego nadzoru w następstwie podejrzenia lub potwierdzenia

występowania niedokrwistości zakaźnej łososia (ISA)

PRAWODAWSTWO
POLSKIE

·

Ustawa z dnia 11 marca 2004 r. o ochronie zdrowia zwierząt oraz
zwalczaniu chorób zakaźnych zwierząt

·

Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 29 marca
2005 r. w sprawie zwalczania chorób zakaźnych ryb

·

Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 25 listopada
2005 r. w sprawie zakresu, sposobu i terminów przekazywania

informacji o występowaniu chorób zakaźnych zwierząt podlegających
obowiązkowi zwalczania i rejestracji oraz o wynikach monitorowania

chorób odzwierzęcych i odzwierzęcych czynników chorobotwórczych a

także związanej z nimi oporności na środki przeciw drobnoustrojowe

·

Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 16 stycznia
2008 r. w sprawie sposobu prowadzenia dokumentacji związanej ze

zwalczaniem chorób zakaźnych zwierząt

background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

65

ZWIERZĘTA AKWAKULTURY

KIERUNEK BADANIA

ZAKAŹNA MARTWICA UKŁADU KRWIOTWÓRCZEGO

Infectious haematopoietic necrosis - IHN

METODA / TEST

Identyfikacja wirusa (RT-PCR) wyizolowanego uprzednio w hodowli

komórkowej.

UWAGI SPECJALNE

MATERIAŁ DO

BADANIA

Ryby (żywe lub martwe).

REPREZENTATYWNA
LICZBA PRÓBEK

Ilość ryb

1. od 30 szt. do 150 szt. ryb dwukrotnie w ciągu roku - w przypadku

próbek pobieranych do badań monitoringowych;

2. 10 szt. ryb z objawami klinicznymi - w przypadku podejrzenia

choroby;

3. 150 szt. ryb dwukrotnie w ciągu roku - w przypadku próbek do

badań w ramach realizacji programu zwalczania VHS i IHN.

Zasada priorytetów przy doborze ryb w próbce:

1. ryby wykazujące objawy chorobowe oraz ryby o osłabionej kondycji,

2. ryby należące do najbardziej wrażliwych na infekcję wirusów, wg

załączonego wykazu:

· Pstrąg tęczowy (Oncorhynchus mykiss)

· Łosoś atlantycki (Salmo salar)

· Pstrąg potokowy (Salmo trutta)

· Pstrąg źródlany (Salvelinus fontinalis)

· Pstrąg arktyczny (Salvelinus alpinus)

SPRZĘT NIEZBĘDNY

DO POBRANIA

POJEDYNCZEJ

PRÓBKI

Plombownica do zaplombowania próbki oraz:

Żywe ryby - pojemniki (kontenery) zapewniające bezpieczeństwo,

odpowiednią przestrzeń i warunki, a w szczególności: wentylację, właściwą

temperaturę, zaopatrzenie w wodę i tlen.

Uśmiercone ryby:

· worek foliowy (2 szt.),

· papier posiadający właściwości absorpcyjne,

· lód lub wkłady chłodzące,

· pudełko styropianowe.

PROCEDURA

POBRANIA PRÓBKI

Do badań monitoringowych w kierunku IHN próbki pobiera się, gdy

temperatura wody w ciągu doby nie przekracza 15ºC. Próbki ryb do

badania pobiera się dwa razy w ciągu roku w odstępie minimum 4 miesięcy

(w miesiącach marzec-maj i wrzesień – grudzień).

W przypadku podejrzenia wystąpienia klinicznej postaci IHN nie stosuje

się ograniczeń termicznych, czy też czasowych.

WYMAGANIA

ZWIĄZANE Z

PRZECHOWYWANIEM

I TRANSPORTEM

Każda próbka ryb powinna być zaplombowana przez nadzorującego

pobranie urzędowego lekarza (ewentualnie upoważnioną przez niego osobę)

oraz zaopatrzona w pismo przewodnie.

Żywe ryby transportuje się w pojemnikach (kontenerach) zapewniających

bezpieczeństwo, odpowiednią przestrzeń i warunki, a w szczególności:

wentylację, właściwą temperaturę, zaopatrzenie w wodę i tlen.

Uśmiercone ryby umieszcza się w worku foliowym, zawija się w papier

posiadający właściwości absorpcyjne, a następnie układa między

warstwami lodu lub wkładów chłodzących. Całość umieszcza się w worku

foliowym, a następnie w pudełku styropianowym. Temperatura wewnątrz
opakowania na początku transportu powinna wynosić około 4°C, natomiast

na końcu, tj. przy odbiorze w laboratorium, nie powinna przekraczać 10°C.

Ryby nie mogą być zamrożone!

DOKUMENTACJA

TOWARZYSZĄCA

Załącznik 1 – Pismo przewodnie do próbek przekazywanych do

laboratoryjnych badań diagnostycznych

CZAS NA

DOSTARCZENIE

POBRANEGO

Czas transportu próbek do laboratorium może wynosić maksymalnie:

- w przypadku ryb żywych - 6 godzin

- w przypadku ryb uśmierconych - 12 godzin.

background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

66

MATERIAŁU DO

LABORATORIUM
LABORATORIUM

WETERYNARYJNE

POSIADAJĄCE

AKREDYTACJĘ

METODY

PRAWODAWSTWO UE Decyzja Komisji 2001/183/WE ustanawiająca plany pobierania próbek i

metody diagnostyczne do celów wykrywania i potwierdzania występowania

niektórych chorób ryb oraz uchylająca decyzję 92/532/EWG

PRAWODAWSTWO
POLSKIE

· Ustawa z dnia 11 marca 2004 r. o ochronie zdrowia zwierząt oraz

zwalczaniu chorób zakaźnych zwierząt

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 17 grudnia

2004 r. w sprawie określenia jednostek chorobowych, sposobu

prowadzenia kontroli oraz zakresu badań kontrolnych zwierząt

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 29 marca

2005 r. w sprawie zwalczania chorób zakaźnych ryb

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 25 listopada

2005 r. w sprawie zakresu, sposobu i terminów przekazywania
informacji o występowaniu chorób zakaźnych zwierząt podlegających

obowiązkowi zwalczania i rejestracji oraz o wynikach monitorowania

chorób odzwierzęcych i odzwierzęcych czynników chorobotwórczych a

także związanej z nimi oporności na środki przeciw drobnoustrojowe

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 16 stycznia

2008 r. w sprawie sposobu prowadzenia dokumentacji związanej ze

zwalczaniem chorób zakaźnych zwierząt

background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

67

RÓŻNE GATUNKI ZWIERZĄT

KIERUNEK BADANIA

BRUCELOZA

Brucellosis

METODA / TEST

OA

OKAP

OWD

UWAGI SPECJALNE

Ze względu na

potencjalne ryzyko zakażenia osób

zaangażowanych w

próbkobranie należy zachować szczególnie surowe środki ostrożności.

W obrębie rodzaju Brucella wyróżnia się 6 podstawowych gatunków

mających wśród zwierząt swoich głównych żywicieli: B. abortus (bydło), B.

melitensis (kozy, owce), B. suis (świnie), B. canis (psy), B. ovis (owce) i B.

neotomae (szczur pustynny).
Źródłem zakażenia dla ludzi mogą być chore na brucelozę zwierzęta oraz

produkty pochodzące od tych zwierząt, a szczególnie mleko i jego

przetwory.

Największą zjadliwością dla człowieka odznaczają się B. melitensis i B. suis

wywołujące zazwyczaj długo trwającą chorobę o ciężkim przebiegu.

Człowiek wrażliwy jest też na zakażenie pałeczkami B. abortus i B. canis.

Wyjątek stanowi B. suis biotyp 2, który uważany jest za niepatogenny lub

mało patogenny dla człowieka. Nie stwierdzono dotychczas zachorowań u

ludzi wywołanych przez B. ovis i B. neotomae.

MATERIAŁ DO

BADANIA

Krew zwierząt podatnych, pobrana od każdego zwierzęcia.

REPREZENTATYWNA

LICZBA PRÓBEK

Zgodnie z programem zwalczania.

SPRZĘT NIEZBĘDNY

DO POBRANIA

POJEDYNCZEJ

PRÓBKI

· jednorazowa igła

· sterylna probówka
lub

· tubostrzykawka,

· antykoagulant - w sytuacji określonej poniżej

· mocny, sterylny, szklany lub plastikowy pojemnik, zamykany

szczelnym przykryciem zabezpieczającym przed wyciekiem

· wodoodporna, samoprzylepna taśma

· środek do odkażania zewnętrznej części pojemnika oraz woda do jego

przemycia

· ręczniki do osuszenia pojemnika

PROCEDURA
POBRANIA PRÓBKI

Krew pobierana jest od zwierząt, z wyjątkiem samic:

- ciężarnych, u których poród powinien nastąpić w terminie 2 tygodni;

- u których poród nastąpił w terminie do 2 tygodni od dnia pobrania

próbki.

W przypadku samic, które poroniły, do badań serologicznych pobiera się, w
terminie od 12 do 20 dni po poronieniu, krew

1

:

- z dodatkiem środka zapobiegającego krzepliwości (antykoagulanta), w

przypadku badań na wykrycie bakterii we krwi (okres bakteremii);

- bez dodatku środka zapobiegającego krzepliwości, w przypadku badań

na wykrycie przeciwciał brucelozy.

Probówkę napełnia się w taki sposób, aby krew spływała wolno po jej

wewnętrznej ścianie, aż do napełnienia probówki w 2/3 jej pojemności.

WYMAGANIA

ZWIĄZANE Z

PRZECHOWYWANIEM

I TRANSPORTEM

Pobraną krew stopniowo schładza się.

Niedopuszczalne jest zamrażanie pobranej krwi.

Próbki krwi z antykoagulantem powinny zostać

wymieszane.

Każdą próbkę umieszcza się w mocnym,

sterylnym, szklanym lub plastikowym

pojemniku, zamykanym szczelnym przykryciem

Surowice otrzymane z

próbek krwi silnie

zhemolizowanych lub

zanieczyszczonych florą

bakteryjną nie nadają

się do badań w OWD.

Świeżo pobrane próbki

1

Pobranie krwi do badań bakteriologicznych między 12 a 20 dniem po poronieniu nie zwalnia z obowiązku

wcześniejszego wysłania do laboratorium poronionego płodu w całości lub wycinków narządów wewnętrznych

oraz wycinku łożyska.

background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

68

zabezpieczającym przed wyciekiem. Przykrycie

okleja się dookoła wodoodporną taśmą
samoprzylepną.

Powierzchnię zewnętrzną pojemnika, po jego

zamknięciu, odkaża się, a następnie płucze się

czystą wodą i osusza.

Na pojemniku umieszcza się etykietę zawierającą

opis zwierzęcia i jego numer identyfikacyjny,

rodzaj próbki, datę i miejsce jej pobrania, imię i

nazwisko oraz adres posiadacza zwierzęcia.

Próbki zapakowane w wyżej opisany sposób,

umieszcza się w mocnym kartonie lub

drewnianym pudełku i transportuje do

laboratorium w temperaturze 4°C.

krwi należy pozostawić

na około 2 godziny w
temperaturze

pokojowej, a następnie

dostarczyć do

laboratorium. W czasie

transportu próbki krwi

należy chronić przed

przemarznięciem lub

nadmiernym

przegrzaniem, gdyż

powoduje to hemolizę

lub przerośnięcie florą

bakteryjną próbek.

DOKUMENTACJA

TOWARZYSZĄCA

· Załącznik 1 – Pismo przewodnie do próbek przekazywanych do

laboratoryjnych badań diagnostycznych

· Załącznik 5 – Arkusz wyników badań w kierunku brucelozy

u bydła/kóz/owiec/świń

CZAS NA

DOSTARCZENIE

POBRANEGO

MATERIAŁU DO

LABORATORIUM

Próbki przesyła się bezpośrednio do

laboratorium, przed upływem 24 godzin od ich

pobrania.

O przewidywanym terminie dostarczenia

przesyłki powiadamia się laboratorium.

W dniu pobrania

próbki.

W razie trudności

dostarczenia próbek

krwi do laboratorium w

dniu ich pobrania,

można je po kilku

godzinach formowania

się skrzepu w
temperaturze

pokojowej, przechować

do dnia następnego w

chłodni (2-8

o

C).

LABORATORIUM

WETERYNARYJNE

POSIADAJĄCE

AKREDYTACJĘ

METODY

· ZHW w Bydgoszczy

· ZHW w Krośnie

· ZHW w ZHW w

Białymstoku

· ZHW w ZHW w

Białymstoku Oddz.

w Łomży

· ZHW w Gdańsku

· ZHW w Poznaniu

· ZHW w Poznaniu

Prac. w Koninie

· ZHW w Szczecinie

· PIWet-PIB w

Puławach

· ZHW w Bydgoszczy

· ZHW w Bydgoszczy,

OT we Włocławku

· ZHW w Łodzi

· ZHW w Krakowie

· ZHW w Warszawie

TP w Siedlcach

· ZHW w Warszawie

TP w Ostrołęce

· ZHW w Opolu

· ZHW w Krośnie

· ZHW w ZHW w

Białymstoku

· ZHW w ZHW w

Białymstoku Oddz.

w Łomży

· ZHW w Gdańsku

· ZHW w Katowicach

· ZHW w Kielcach

· ZHW w Poznaniu

Prac. w Lesznie

· ZHW w Poznaniu

· ZHW w Poznaniu

Prac. w Koninie

· ZHW w Szczecinie

· PIWet-PIB w

Puławach

· ZHW w Bydgoszczy

· ZHW w Krośnie

· ZHW w ZHW w

Białymstoku

· ZHW w Gdańsku

· ZHW w Poznaniu

· ZHW w Poznaniu

Prac. w Koninie

· ZHW w Szczecinie

· PIWet-PIB w

Puławach

background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

69

PRAWODAWSTWO UE
PRAWODAWSTWO

POLSKIE

· Ustawa z dnia 11 marca 2004 r. o ochronie zdrowia zwierząt oraz

zwalczaniu chorób zakaźnych zwierząt

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 20 kwietnia

2005 r. w sprawie zwalczania brucelozy

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 17 grudnia

2004 r. w sprawie określenia jednostek chorobowych, sposobu

prowadzenia kontroli oraz zakresu badań kontrolnych zakażeń zwierząt

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 22 lutego 2006

r. zmieniające rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju z dnia 17

grudnia 2004 r. w sprawie określenia jednostek chorobowych, sposobu

prowadzenia kontroli oraz zakresu badań kontrolnych zakażeń zwierząt

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 27 czerwca

2005 r. w sprawie szczegółowych wymagań weterynaryjnych niezbędnych

do uzyskania i zachowania uznania stada lub gospodarstwa za urzędowo

wolne lub wolne od chorób zakaźnych zwierząt

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 25 listopada

2005 r. w sprawie zakresu, sposobu i terminów przekazywania informacji

o występowaniu chorób zakaźnych zwierząt podlegających obowiązkowi

zwalczania i rejestracji oraz o wynikach monitorowania chorób

odzwierzęcych i odzwierzęcych czynników chorobotwórczych a także

związanej z nimi oporności na środki przeciw drobnoustrojowe

· Rozporządzenie Rady Ministrów z dnia 30 maja 2007 r. w sprawie

wprowadzenia programu zwalczania enzootycznej białaczki bydła,

gruźlicy bydła, brucelozy u bydła, wścieklizny, gąbczastej encefalolopatii

oraz programu zwalczania i kontroli zakażeń wirusami wysoce zjadliwej
grypy ptaków dawny pomór drobiu w drobiu i ptaków dzikich

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 16 stycznia

2008 r. w sprawie sposobu prowadzenia dokumentacji związanej ze

zwalczaniem chorób zakaźnych zwierząt

background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

70

RÓŻNE GATUNKI ZWIERZĄT

KIERUNEK BADANIA

GORĄCZKA Q

Q fever

METODA / TEST

OWD

UWAGI SPECJALNE

Ze względu na

potencjalne ryzyko zakażenia osób

zaangażowanych w

próbkobranie należy zachować szczególnie surowe środki ostrożności.

MATERIAŁ DO

BADANIA

Krew zwierząt podatnych.

REPREZENTATYWNA
LICZBA PRÓBEK

Od wszystkich zwierząt podejrzanych o chorobę.

SPRZĘT NIEZBĘDNY

DO POBRANIA

POJEDYNCZEJ

PRÓBKI

· jednorazowa igła

· probówka bez antykoagulantu

Zaleca się stosowanie zestawów jednorazowego użytku, zawierających

wkładkę ułatwiającą wydzielanie się surowicy i hermetycznie

zamykanych.

PROCEDURA

POBRANIA PRÓBKI

Przed pobraniem krwi upoważniony lekarz weterynarii powinien

sporządzić listę zwierząt zgodną z Załącznikiem 2.

Krew należy pobierać jałową igłą z żyły jarzmowej. Probówkę bez

antykoagulantu po napełnieniu krwią do 2/3 objętości (ok. 7 ml) należy

zamknąć szczelnie korkiem i niezwłocznie oznakować. Probówki z krwią

należy oznaczyć liczbą bieżącą, pod którą badane zwierzę zostało wpisane

na listę. Zaleca się stosowanie zestawów jednorazowego użytku,

zawierających wkładkę ułatwiającą wydzielanie się surowicy i
hermetycznie zamykanych.

WYMAGANIA

ZWIĄZANE Z

PRZECHOWYWANIEM

I TRANSPORTEM

Surowice wydzielone z próbek krwi silnie zhemolizowanych lub

zanieczyszczonych florą bakteryjną nie nadają się do badań serologicznych.

Silnie antykomplementarnie działają również wszystkie związki

chemiczne, które wiążą jony Mg i Ca, np. wersenian sodowy.

Świeżo pobrane próbki krwi należy odstawić na około 2 godziny w

temperaturze pokojowej, a następnie (najlepiej tego samego dnia)

dostarczyć do laboratorium.

W czasie transportu próbki krwi chronić przed przemarznięciem lub

nadmiernym przegrzaniem, gdyż powoduje to hemolizę lub przerośnięcie
próbek.

DOKUMENTACJA

TOWARZYSZĄCA

· Załącznik 1 – Pismo przewodnie do próbek przekazywanych do

laboratoryjnych badań diagnostycznych

· Załącznik 2 – Protokół pobrania prób

CZAS NA

DOSTARCZENIE

POBRANEGO

MATERIAŁU DO

LABORATORIUM

W dniu pobrania próbki.

W razie trudności dostarczenia próbek krwi do laboratorium w dniu ich

pobrania, można je do dnia następnego przechować w chłodni (2-8ºC), ale

po kilku godzinach formowania się skrzepu w temperaturze pokojowej.

LABORATORIUM

WETERYNARYJNE

POSIADAJĄCE

AKREDYTACJĘ
METODY

PIWet-PIB w Puławach

PRAWODAWSTWO UE
PRAWODAWSTWO

POLSKIE

·

Ustawa z dnia 11 marca 2004 r. o ochronie zdrowia zwierząt oraz
zwalczaniu chorób zakaźnych zwierząt

·

Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 25 listopada
2005 r. w sprawie zakresu, sposobu i terminów przekazywania

informacji o występowaniu chorób zakaźnych zwierząt podlegających

obowiązkowi zwalczania i rejestracji oraz o wynikach monitorowania

chorób odzwierzęcych i odzwierzęcych czynników chorobotwórczych a

także związanej z nimi oporności na środki przeciw drobnoustrojowe

·

Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 16 stycznia

background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

71

2008 r. w sprawie sposobu prowadzenia dokumentacji związanej ze

zwalczaniem chorób zakaźnych zwierząt

background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

72

RÓŻNE GATUNKI ZWIERZĄT

KIERUNEK BADANIA

LISTERIOZA

Listeriosis

METODA / TEST

Horyzontalna metoda wykrywania obecności i oznaczania liczby Listeria

monocytogenes; metoda wykrywania obecności – zgodnie z opisem

zawartym w PN-EN ISO 11290-1 oraz PN-EN ISO 11290-1:1999/A1.

UWAGI SPECJALNE

Ze względu na

potencjalne ryzyko zakażenia osób

zaangażowanych w

próbkobranie należy zachować szczególnie surowe środki ostrożności.

MATERIAŁ DO
BADANIA

W zależności od postaci klinicznej choroby do badań diagnostycznych
pobiera się:

- krew
- chorobowo zmienione narządy wewnętrzne
- mózg
- rdzeń kręgowy
- płyn mózgowo-rdzeniowy
- poroniony płód
- mleko.

REPREZENTATYWNA

LICZBA PRÓBEK

Od zwierząt chorych, podejrzanych o chorobę i padłych z podejrzeniem

listeriozy.

SPRZĘT NIEZBĘDNY

DO POBRANIA

POJEDYNCZEJ

PRÓBKI

Próbki materiału pobiera się czystymi, jałowymi narzędziami, najlepiej

jednorazowego użytku.

Dodatkowo:

· mocny, sterylny, szklany lub plastikowy pojemnik, zamykany

szczelnym przykryciem zabezpieczającym przed wyciekiem,

· wodoodporna, samoprzylepna taśma,

· środek do odkażania zewnętrznej części pojemnika oraz woda do jego

przemycia,

· ręczniki do osuszenia pojemnika.

PROCEDURA

POBRANIA PRÓBKI

WYMAGANIA

ZWIĄZANE Z

PRZECHOWYWANIEM

I TRANSPORTEM

Każdą próbę umieszcza się w mocnym, sterylnym, szklanym lub

plastikowym pojemniku, zamykanym szczelnym przykryciem

zabezpieczającym przed wyciekiem zawartości. Przykrycie okleja się

dookoła wodoodporną taśmą samoprzylepną. Powierzchnię zewnętrzną

pojemnika po jego zamknięciu odkaża się, a następnie płucze się czystą

wodą i osusza. Każdy pojemnik zaopatruje się w etykietę zawierającą opis

zwierzęcia i jego numer identyfikacyjny, rodzaj próby, datę i miejsce jej
pobrania, imię i nazwisko oraz adres posiadacza zwierzęcia.

Próby zapakowane w sposób określony powyżej umieszcza się w

kontenerze, mocnym kartonie lub drewnianym pudełku i transportuje do

laboratorium w temperaturze 4-8°C (do czasu wysłanie próbki należy

przechowywać w temperaturze 4°C. Dopuszcza się transport zamrożonych

prób, bez rozmrażania ich w trakcie transportu.

DOKUMENTACJA

TOWARZYSZĄCA

· Załącznik 1 – Pismo przewodnie do próbek przekazywanych do

laboratoryjnych badań diagnostycznych

· Załącznik 2 – Protokół pobrania prób

CZAS NA

DOSTARCZENIE

POBRANEGO

MATERIAŁU DO

LABORATORIUM

Próbki przesyła się bezpośrednio do laboratorium, w możliwie najkrótszym

terminie.

O przewidywanym terminie dostarczenia przesyłki powiadamia się to

laboratorium.

LABORATORIUM

WETERYNARYJNE

POSIADAJĄCE

AKREDYTACJĘ

METODY

· ZHW w Krakowie

PRAWODAWSTWO UE Dyrektywa 2003/99/WE Parlamentu Europejskiego i Rady z dnia 17

background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

73

listopada 2003 r. w sprawie monitorowania chorób odzwierzęcych i

odzwierzęcych czynników chorobotwórczych, zmieniająca decyzję rady
90/424/EWG i uchylająca dyrektywę Rady 92/117/EWG

PRAWODAWSTWO

POLSKIE

· Ustawa z dnia 11 marca 2004 r. o ochronie zdrowia zwierząt oraz

zwalczaniu chorób zakaźnych zwierząt

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 25 listopada

2005 r. w sprawie zakresu, sposobu i terminów przekazywania

informacji o występowaniu chorób zakaźnych zwierząt podlegających

obowiązkowi zwalczania i rejestracji oraz o wynikach monitorowania

chorób odzwierzęcych i odzwierzęcych czynników chorobotwórczych a

także związanej z nimi oporności na środki przeciwdrobnoustrojowe

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 16 stycznia

2008 r. w sprawie sposobu prowadzenia dokumentacji związanej ze

zwalczaniem chorób zakaźnych zwierząt

background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

74

RÓŻNE GATUNKI ZWIERZĄT

KIERUNEK BADANIA

PĘCHERZYKOWE ZAPALENIE JAMY USTNEJ

Vesicular stomatitis

METODA / TEST

ELISA – rozpoznanie serologiczne;

test w wersji liquid-phase blocking

(LPBE).

ELISA – rozpoznanie

wirusologiczne.

UWAGI SPECJALNE

MATERIAŁ DO

BADANIA

Krew zwierząt podatnych.

REPREZENTATYWNA

LICZBA PRÓBEK

Liczba próbek powinna być adekwatna do częstotliwości występowania

poszukiwanego czynnika w populacji, jeśli choroba występuje w formie

klinicznej, pobrać próbki od 2-4 zwierząt.

SPRZĘT NIEZBĘDNY

DO POBRANIA

POJEDYNCZEJ

PRÓBKI

· igła jednorazowa

· sterylna probówka (lub tubostrzykawka) bez dodatku środka

konserwującego

PROCEDURA

POBRANIA PRÓBKI

Do badań należy pobrać próbki krwi pełnej od zwierząt chorych lub

ozdrowieńców, które miały styczność ze zwierzętami zakażonymi lub
podejrzanymi o zakażenie wirusem VS. Z igły krew powinna wolno spływać

do probówki po ścianie wewnętrznej do 2/3 pojemności.

WYMAGANIA

ZWIĄZANE Z

PRZECHOWYWANIEM

I TRANSPORTEM

Po pobraniu krew należy stopniowo schłodzić, ale nie zamrażać.

DOKUMENTACJA

TOWARZYSZĄCA

· Załącznik 1 – Pismo przewodnie do próbek przekazywanych do

laboratoryjnych badań diagnostycznych

· Załącznik 2 – Protokół pobrania prób

CZAS NA

DOSTARCZENIE

POBRANEGO

MATERIAŁU DO
LABORATORIUM

W ciągu 24 godzin.

W przypadku pobierania próbek w związku z podejrzeniem choroby, próbki

należy dostarczyć do Laboratorium Zakładu Wirusologii Państwowego

Instytutu Weterynaryjnego - Państwowego Instytutu Badawczego (ul.
Partyzantów 57, 24-100 Puławy).

LABORATORIUM

WETERYNARYJNE

POSIADAJĄCE

AKREDYTACJĘ

METODY

PRAWODAWSTWO UE Decyzja Komisji 2008/650/WE zmieniająca Dyrektywę Rady 82/894/EWG

w sprawie wykazu zgłaszania chorób zwierząt we wspólnocie poprzez

włączenie niektórych chorób do wykazu chorób wymagających zgłaszania
oraz skreśleniu z tego wykazu enterowirusowego zapalanie mózgu i rdzenia

u świń

PRAWODAWSTWO

POLSKIE

· Ustawa z dnia 11 marca 2004 r. o ochronie zdrowia zwierząt oraz

zwalczaniu chorób zakaźnych zwierząt

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 24 czerwca

2004 r. w sprawie sposobu i trybu zwalczania niektórych chorób

zakaźnych zwierząt podlegających obowiązkowi zwalczania

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 25 listopada

2005 r. w sprawie zakresu, sposobu i terminów przekazywania

informacji o występowaniu chorób zakaźnych zwierząt podlegających

obowiązkowi zwalczania i rejestracji oraz o wynikach monitorowania

chorób odzwierzęcych i odzwierzęcych czynników chorobotwórczych a

także związanej z nimi oporności na środki przeciw drobnoustrojowe

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 16 stycznia

2008 r. w sprawie sposobu prowadzenia dokumentacji związanej ze

zwalczaniem chorób zakaźnych zwierząt

background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

75

RÓŻNE GATUNKI ZWIERZĄT

KIERUNEK BADANIA

PRYSZCZYCA

CZĘŚĆ I

Foot and mouth disease - FMD

METODA / TEST

ELISA – rozpoznanie serologiczne;

test w wersji liquid-phase blocking

(LPBE).

SN - rozpoznanie serologiczne.

UWAGI SPECJALNE

Ze względu na

potencjalne ryzyko zakażenia osób

zaangażowanych w

próbkobranie należy zachować szczególnie surowe środki ostrożności.

MATERIAŁ DO

BADANIA

Krew zwierząt podatnych.

REPREZENTATYWNA

LICZBA PRÓBEK

W celu kontroli występowania pryszczycy corocznie bada się, na obszarze

powiatu, próbki krwi pobrane od 10 sztuk bydła albo świń.

Liczba próbek powinna być adekwatna do częstotliwości występowania

poszukiwanego czynnika w populacji (nie mniej jak od 3 zwierząt chorych).

SPRZĘT NIEZBĘDNY

DO POBRANIA

POJEDYNCZEJ

PRÓBKI

· Igła jednorazowa,

· sterylna probówka (lub tubostrzykawka) bez dodatku środka

konserwującego.

Zalecany sposób pakowania materiałów biologicznych z podejrzeniem

pryszczycy i/lub choroby pęcherzykowej świń oraz sprzęt niezbędny do

zapakowania są opisane w Załączniku 3 Podręcznika.

PROCEDURA

POBRANIA PRÓBKI

Do badań należy pobrać próbki krwi pełnej od zwierząt chorych lub

ozdrowieńców, które miały styczność ze zwierzętami zakażonymi lub

podejrzanymi o zakażenie wirusem FMD. Z igły krew powinna wolno
spływać do probówki po ścianie wewnętrznej do 2/3 pojemności.

WYMAGANIA

ZWIĄZANE Z

PRZECHOWYWANIEM

I TRANSPORTEM

Po pobraniu krew należy stopniowo schłodzić, ale nie zamrażać.

DOKUMENTACJA

TOWARZYSZĄCA

· Załącznik 1 – Pismo przewodnie do próbek przekazywanych do

laboratoryjnych badań diagnostycznych

· Załącznik 2 – Protokół pobrania prób

CZAS NA

DOSTARCZENIE

POBRANEGO

MATERIAŁU DO

LABORATORIUM

Przewóz próbki z podejrzeniem pryszczycy nie może być zlecany

przedsiębiorstwom spedycyjnym, świadczącym usługi transportowe.

Próbki musi dostarczyć kurier najszybszym możliwym środkiem

transportu, niezwłocznie po pobraniu, najpóźniej przed upływem 24 godzin

od pobrania.

LABORATORIUM

WETERYNARYJNE

POSIADAJĄCE

AKREDYTACJĘ

METODY

Zakład PIWet-PIB w Zduńskiej Woli

PRAWODAWSTWO UE Decyzja Komisji 2008/650/WE zmieniająca Dyrektywę Rady 82/894/EWG

w sprawie wykazu zgłaszania chorób zwierząt we wspólnocie poprzez

włączenie niektórych chorób do wykazu chorób wymagających zgłaszania

oraz skreśleniu z tego wykazu enterowirusowego zapalanie mózgu i rdzenia
u świń

PRAWODAWSTWO

POLSKIE

· Ustawa z dnia 11 marca 2004 r. o ochronie zdrowia zwierząt oraz

zwalczaniu chorób zakaźnych zwierząt

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 17 grudnia

2004 r. w sprawie określenia jednostek chorobowych, sposobu

prowadzenia kontroli oraz zakresu badań kontrolnych zwierząt

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 25 listopada

2005 r. w sprawie zakresu, sposobu i terminów przekazywania

informacji o występowaniu chorób zakaźnych zwierząt podlegających

obowiązkowi zwalczania i rejestracji oraz o wynikach monitorowania

chorób odzwierzęcych i odzwierzęcych czynników chorobotwórczych a

także związanej z nimi oporności na środki przeciw drobnoustrojowe

background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

76

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 10 lutego

2006 r. w sprawie szczegółowego sposobu i trybu zwalczania pryszczycy

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 16 stycznia

2008 r. w sprawie sposobu prowadzenia dokumentacji związanej ze

zwalczaniem chorób zakaźnych zwierząt

background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

77

RÓŻNE GATUNKI ZWIERZĄT

KIERUNEK BADANIA

PRYSZCZYCA

CZĘŚĆ II

Foot and mouth disease - FMD

METODA / TEST

RT-PCR - rozpoznanie

wirusologiczne.

ELISA - rozpoznanie

wirusologiczne.

UWAGI SPECJALNE

Ze względu na

potencjalne ryzyko zakażenia osób

zaangażowanych w

próbkobranie należy zachować szczególnie surowe środki ostrożności.

MATERIAŁ DO

BADANIA

Do badania pobiera się:

· nabłonek (materiał najbardziej odpowiedni)

· płynna zawartość pęcherzy

· mleko

· krew

Dodatkowo:

· płyn z jamy gardłowej (probang)

· wymaz z nosa i pyska

· nasienie

REPREZENTATYWNA

LICZBA PRÓBEK

Nie mniej jak od 3 zwierząt chorych.

W celu kontroli występowania pryszczycy corocznie bada się, na obszarze

powiatu, próbki krwi pobrane od 10 sztuk bydła albo świń.

SPRZĘT NIEZBĘDNY

DO POBRANIA

POJEDYNCZEJ

PRÓBKI

Zalecany sposób pakowania materiałów biologicznych z podejrzeniem

pryszczycy i/lub choroby pęcherzykowej świń oraz sprzęt niezbędny do

zapakowania są opisane w Załączniku 3.

Próbki pobiera się czystymi, jałowymi narzędziami, do jałowych naczyń,
najlepiej jednorazowych.

· zawartość pęcherza: strzykawka z igłą,

· krew: probówka z etykietą, w systemie próżniowym,

· mleko: naczynie z szeroką szyjką i z zakręcanym przykryciem.

· Śluz z cieśni gardłowo–

przełykowej (probang sample) od

bydła, wymaz z nosa od świń:
zgłębnik przełykowy,

· wymazy z nosa: jałowy wacik,

Uwaga! Naczynie na próbkę ok.

10 ml musi być przystosowane do

ewentualnego zamrażania,

szczelnie zamykane, aby gaz nie

przedostał się do jego wnętrza,

ponieważ spowoduje obniżenie

pH i inaktywację wirusa (próbka

taka jest nieprzydatna do

badania).

· nasienie: jałowe naczynie.

PROCEDURA

POBRANIA PRÓBKI

Nabłonek - próbkę ze ścian nieuszkodzonego lub świeżo rozerwanego

pęcherza, nie mniej niż 1g (wielkość znaczka pocztowego 2 cm

2

).

Zawartość pęcherzy - pobrać strzykawką z igłą, tyle ile tylko możliwe.
Mleko - ok. 20ml od bydła w okresie laktacji. Próbkę mleka po kilku

strzyknięciach do przedzdajacza pobiera się do naczyń z szeroką szyjką i z

zakręcanym przykryciem.

Krew - 5-10ml zarówno od zwierząt zdrowych, podejrzanych, chorych i

rekonwalescentów oraz od których trudno pobrać inny materiał w ilości

wystarczającej, szczególnie owiec, kóz i świń.

Próbkę krwi pobrać jałowo. Podczas pobierania krew powinna powoli

spływać po ściance probówki, do 2/3 objętości, nie dopuścić do hemolizy

krwinek.
Śluz z cieśni gardłowo–przełykowej
(probang sample) od bydła, wymaz z

background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

78

nosa od świń - pobrać co najmniej 2

ml, od dorosłego bydła, cieląt, owiec
i kóz ,wyjątkowo od świń.

Technika pobierania śluzu:

a. Zwierzę poskromić stosownie do

gatunku i wielkości, otworzyć

jamę gębową.

b. Zbiorniczek zgłębnika

przełykowego (rozmiarze

dostosowanym do gatunku i

wielkości zwierzęcia) umieścić za

korzeniem języka w kierunku

przełyku.

c. Zgłębnik przesuwać w dół

przełyku do momentu aż

zbiorniczek będzie wyczuwalny

palcami w grzbietowej części

gardła przed wejściem do krtani.

d. Zgłębnik przesuwać do przodu i

do tyłu w celu zeskrobania śluzu

z komórkami z błony śluzowej

gardła i przełyku, a następnie

wycofać.

Od świń żywych wymazy z nosa,

jamy gębowej pobiera się jałowym
wacikiem i natychmiast umieszcza

w buforze (płyn Eagle`a do hodowli

tkankowej /gliceryna) z

antybiotykiem, jak w punkcie

1).Transport +5ºC (±3ºC).

Nasienie - pobiera się do jałowych

naczyń szczelnie zamykanych.

WYMAGANIA

ZWIĄZANE Z

PRZECHOWYWANIEM
I TRANSPORTEM

Wirus pryszczycy wrażliwy jest zarówno na wahania temperatury jak i pH.

Optymalne warunki dla wirusa: wartość pH 7,2 – 7,6 i temp. stabilna +4ºC.
Nabłonek – próbkę nabłonka schłodzić, nie zamrażać. Transport w +5ºC

(±3ºC).

Zawartość pęcherza - warunki transportu - pH 7.2 – 7.6, temperatura

+5

0

C(±

3

0

C).

Mleko – do pobranej próbki należy dodać bufor (płyn Eagle

`

a do hodowli

tkankowej /gliceryna) i antybiotyk, schładza i transportować w +5ºC

(±3ºC).

Krew – po pobraniu krew i środek zapobiegający krzepnięciu (EDTA -

kwas etylenodwu-aminoczterooctowym) łagodnie wymieszać, schłodzić. Nie

zamrażać. Krew transportować schłodzoną +5ºC (±3ºC).

background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

79

Śluz z cieśni gardłowo–przełykowej -

śluz ze zbiorniczka - 2ml przelać do
czystego naczynia szklanego,

przezroczystego z szerokim

otworem, upewnić się, że zawiera

tkanki i materiał komórkowy, nie

powinno w nim być widocznych

zanieczyszczeń pokarmem. Dodać

2ml buforu transportowego,

łagodnie wstrząsnąć. Próbki

zanieczyszczone treścią pokarmową

odrzuca się (są nieodpowiednie do

badania w hodowli komórek) i

pobieranie powtarza się po
przepłukaniu jamy gębowej

zwierzęcia czystą wodą lub

roztworem płynu fizjologicznego.

Próbki zanieczyszczone krwią

są nieprzydatne do badania.

U owiec śluzu jest zwykle mało,

ponadto jest gęsty i trudno przelać

go ze zgłębnika, dlatego po pobraniu

(ok.2 ml) śluz wypłukuje się

buforem w objętości 2ml.

Wymazy pobrane od świń
natychmiast umieszcza się w

buforze (płyn Eagle`a do hodowli

tkankowej /gliceryna) z

antybiotykiem. Transport +5ºC

(±3ºC).

Nasienie - do próbki dodać bufor i

antybiotyk. Transportować w +5ºC

(±3

ºC).

DOKUMENTACJA

TOWARZYSZĄCA

· Załącznik 1 – Pismo przewodnie do próbek przekazywanych do

laboratoryjnych badań diagnostycznych

· Załącznik 2 – Protokół pobrania prób

CZAS NA
DOSTARCZENIE

POBRANEGO

MATERIAŁU DO

LABORATORIUM

Przewóz próbki z podejrzeniem pryszczycy nie może być zlecany
przedsiębiorstwom spedycyjnym, świadczącym usługi transportowe.

Próbki musi dostarczyć kurier najszybszym możliwym środkiem

transportu, niezwłocznie po pobraniu, najpóźniej przed upływem 24 godzin

od pobrania.

Nabłonek - do laboratorium dostarczyć natychmiast. W czasie do 10 godzin

może być przewożona bez buforu. Jeśli czas transportu może być dłuższy,

nabłonek należy umieścić w małej ilości buforu 2 – 5 ml, składającego się z

równych części 0,04 M buforu fosforanowego i gliceryny (PBS/gliceryna, lub

innego równoważnego buforu (ważne pH), transportować w +5ºC (±3ºC).

Ponadto, dla ochrony próbki przed rozwojem mikroorganizmów do buforu

należy dodać jeden z antybiotyków w stężeniu: penicylina 1 000 IU,
siarczan neomycyny 100 IU, siarczan polimyksyny B 50 IU lub

mykostatyna 100 IU.
Śluz – w ciągu kilku godzin. Gdy

zachodzi obawa, że transport może

trwać powyżej kilku godzin, próbkę

zamraża się w suchym lodzie lub

ciekłym azocie.

LABORATORIUM

WETERYNARYJNE
POSIADAJĄCE

Zakład PIWet-PIB w Zduńskiej Woli

background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

80

AKREDYTACJĘ

METODY
PRAWODAWSTWO UE Decyzja Komisji 2008/650/WE zmieniająca Dyrektywę Rady 82/894/EWG

w sprawie wykazu zgłaszania chorób zwierząt we wspólnocie poprzez

włączenie niektórych chorób do wykazu chorób wymagających zgłaszania

oraz skreśleniu z tego wykazu enterowirusowego zapalanie mózgu i rdzenia

u świń

PRAWODAWSTWO

POLSKIE

· Ustawa z dnia 11 marca 2004 r. o ochronie zdrowia zwierząt oraz

zwalczaniu chorób zakaźnych zwierząt.

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 17 grudnia

2004 r. w sprawie określenia jednostek chorobowych, sposobu

prowadzenia kontroli oraz zakresu badań kontrolnych zwierząt

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 25 listopada

2005 r. w sprawie zakresu, sposobu i terminów przekazywania

informacji o występowaniu chorób zakaźnych zwierząt podlegających

obowiązkowi zwalczania i rejestracji oraz o wynikach monitorowania

chorób odzwierzęcych i odzwierzęcych czynników chorobotwórczych a

także związanej z nimi oporności na środki przeciw drobnoustrojowe

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 10 lutego

2006 r. w sprawie szczegółowego sposobu i trybu zwalczania pryszczycy

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 16 stycznia

2008 r. w sprawie sposobu prowadzenia dokumentacji związanej ze
zwalczaniem chorób zakaźnych zwierząt

background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

81

RÓŻNE GATUNKI ZWIERZĄT

KIERUNEK BADANIA

WĄGLIK

Anthrax

METODA / TEST

Badanie materiału na wąglik powinno obejmować:

· badanie

mikroskopowe

przesłanych

rozmazów

jak

również

sporządzonych w laboratorium barwionych według metod stosowanych

w celu uwidocznienia otoczek,

· posiew materiału na podłoża bakteriologiczne w celu izolacji i

identyfikacji patogenu,

· próbę biologiczną na myszkach jeżeli uzyskane wyniki innych badań

były ujemne,

· odczyn termoprecypitacyjny Ascoliego,

· testy alternatywne – metoda PCR.

UWAGI SPECJALNE

Ze względu na

potencjalne ryzyko zakażenia osób

zaangażowanych w

próbkobranie należy zachować szczególnie surowe środki ostrożności.

MATERIAŁ DO

BADANIA

Do badań laboratoryjnych pobiera się:

a) od zwierząt żywych krew oraz preparaty mazane na szkiełkach

podstawowych,

b) małżowinę uszną w przypadku, gdy zwłoki wykazują rozkład gnilny

oraz gdy nie przeprowadza się sekcji zwierzęcia,

c) kość długą w przypadku daleko posuniętego rozkładu zwłok,
d) wyjątkowo, od zwierząt poddanych ubojowi lub padłych pobiera się

wycinki śledziony lub chorobowo zmienionego narządu,

e) od świń podejrzanych o postać gardzielowo-językową wąglika (glosso-

anthrax) węzły chłonne okołogardzielowe oraz wycinki galaretowato

obrzękłych tkanek,

f) jeśli zachodzi konieczność badania skór - wycinki o rozmiarach 5x10

cm, a gdy to nie jest możliwe ze względu na wartość skóry, skrawki z

części nieprzedstawiających większych wartości.

REPREZENTATYWNA

LICZBA PRÓBEK

Zwierzęta chore, podejrzane o chorobę, padłe z rozpoznaniem lub

podejrzeniem wąglika.

SPRZĘT NIEZBĘDNY

DO POBRANIA

POJEDYNCZEJ

PRÓBKI

Próbki materiału pobiera się czystymi, jałowymi narzędziami, najlepiej

jednorazowego użytku.

Dodatkowo:

· mocny, sterylny, szklany lub plastikowy pojemnik, zamykany

szczelnym przykryciem zabezpieczającym przed wyciekiem,

· wodoodporna, samoprzylepna taśma,

· środek do odkażania zewnętrznej części pojemnika oraz woda do jego

przemycia,

·

ręczniki do osuszenia pojemnika.

PROCEDURA

POBRANIA PRÓBKI

WYMAGANIA

ZWIĄZANE Z

PRZECHOWYWANIEM
I TRANSPORTEM

Każdą próbę umieszcza się w mocnym, sterylnym, szklanym lub

plastikowym pojemniku, zamykanym szczelnym przykryciem

zabezpieczającym przed wyciekiem zawartości. Przykrycie okleja się
dookoła wodoodporną taśmą samoprzylepną. Powierzchnię zewnętrzną

pojemnika po jego zamknięciu odkaża się, a następnie płucze się czystą

wodą i osusza. Każdy pojemnik zaopatruje się w etykietę zawierającą opis

zwierzęcia i jego numer identyfikacyjny, rodzaj próby, datę i miejsce jej

pobrania, imię i nazwisko oraz adres posiadacza zwierzęcia.

Próby zapakowane w sposób określony powyżej umieszcza się w

kontenerze, mocnym kartonie lub drewnianym pudełku i transportuje do

laboratorium w temperaturze 4 - 8°C. Dopuszcza się transport

zamrożonych prób, bez rozmrażania ich w trakcie transportu.

DOKUMENTACJA
TOWARZYSZĄCA

· Załącznik 1 – Pismo przewodnie do próbek przekazywanych do

laboratoryjnych badań diagnostycznych

· Załącznik 2 – Protokół pobrania prób

background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

82

CZAS NA

DOSTARCZENIE
POBRANEGO

MATERIAŁU DO

LABORATORIUM

Próbki przesyła się bezpośrednio do laboratorium, w możliwie najkrótszym

terminie.
O przewidywanym terminie dostarczenia przesyłki powiadamia się to

laboratorium.

LABORATORIUM

WETERYNARYJNE

POSIADAJĄCE

AKREDYTACJĘ

METODY

PRAWODAWSTWO UE

· Dyrektywa Rady 92/117/EWG dotycząca środków ochrony przed

określonymi chorobami odzwierzęcymi i odzwierzęcymi czynnikami

chorobotwórczymi u zwierząt i w produktach pochodzenia zwierzęcego, w

celu zapobieżenia zakażeniom i zatruciom przenoszonym przez żywność

· Dyrektywa Rady 64/432/EWG z dnia 26 czerwca 1964 r. w sprawie

problemów zdrowotnych zwierząt wpływających na handel wewnątrz
wspólnotowy bydłem i trzodą chlewną.

· Dyrektywa Rady 90/426/WE z dnia 26 czerwca 1990 w sprawie

warunków zdrowotnych zwierząt, regulujących przemieszczanie i
przywóz zwierząt z rodziny koniowatych z państw trzecich
.

· Dyrektywa Parlamentu Europejskiego i Rady 2003/99/WE z dnia 17

listopada 2003 r. w sprawie monitorowania chorób odzwierzęcych i

odzwierzęcych czynników chorobotwórczych, zmieniająca decyzję rady

90/424/EWG i uchylająca dyrektywę Rady 92/117/EWG

PRAWODAWSTWO

POLSKIE

· Ustawa z dnia 11 marca 2004r. o ochronie zdrowia zwierząt oraz

zwalczaniu chorób zakaźnych zwierząt

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 5 maja 2005 r.

w sprawie zwalczania wąglika

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 25 listopada

2005 r. w sprawie zakresu, sposobu i terminów przekazywania informacji

o występowaniu chorób zakaźnych zwierząt podlegających obowiązkowi

zwalczania i rejestracji oraz o wynikach monitorowania chorób

odzwierzęcych i odzwierzęcych czynników chorobotwórczych a także

związanej z nimi oporności na środki przeciw drobnoustrojowe

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 16 stycznia

2008 r. w sprawie sposobu prowadzenia dokumentacji związanej ze

zwalczaniem chorób zakaźnych zwierząt

background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

83

RÓŻNE GATUNKI ZWIERZĄT

KIERUNEK BADANIA

WŚCIEKLIZNA

Rabies

METODA / TEST

Test immunofluorescencji

bezpośredniej.

MIT

UWAGI SPECJALNE

Ze względu na

potencjalne ryzyko zakażenia osób

zaangażowanych w

próbkobranie należy zachować szczególnie surowe środki ostrożności.

MATERIAŁ DO

BADANIA

W zależności od wielkości zwierzęcia do badania przesyła się:

· całe zwłoki – w przypadku małych zwierząt( w tym nietoperzy);

· głowę – w przypadku domowych zwierząt mięsożernych (psy, koty) lub

wolno żyjących zwierząt mięsożernych (lisy, jenoty, borsuki, kuny itp.);

· mózgowie – w przypadku dużych zwierząt; pobrane mózgowie musi

zawierać kompletny pień mózgu oraz móżdżek i róg Ammona.

REPREZENTATYWNA

LICZBA PRÓBEK

W przypadku podejrzenia wścieklizny:

· każde padłe zwierzę z podejrzeniem wścieklizny oraz

· każde podejrzane zwierzę, w przypadku jego kontaktu z

człowiekiem.

W celu kontroli występowania wścieklizny u lisów wolnożyjacych, materiał

pobiera się od 8 lisów odstrzelonych na każdych 100 km

2

obszaru, na

którym lisy zostały objęte szczepieniem ochronnym przeciw wściekliźnie.

SPRZĘT NIEZBĘDNY

DO POBRANIA

POJEDYNCZEJ

PRÓBKI

· czyste, jałowe narzędzia, najlepiej jednorazowego użytku

· papier absorpcyjny nasączony 10% wodnym roztworem formaliny

· plastikowy, mocny, szczelnie zamykany worek lub metalowy pojemnik

hermetycznie zamykany

· duży szczelnie zamykany worek

· polistyrenowy pojemnik

· lód (ew. suchy lód)

· materiał absorbujący (np. lignina)

· samoprzylepna taśma

·

pudełko kartonowe wyściełane folią

PROCEDURA

POBRANIA PRÓBKI

Głowa - głowę zwierzęcia oddziela się od zwłok tak aby pozostały przy niej

dwa pierwsze kręgi szyjne;

Mózgowie - należy otworzyć czaszkę i pobrać mózg i przesłać do

laboratorium. Pobrane mózgowie musi zawierać kompletny pień mózgu,

a także móżdżek i róg Ammona (hippocampus).

WYMAGANIA

ZWIĄZANE Z

PRZECHOWYWANIEM

I TRANSPORTEM

Zwłoki małych zwierząt lub głowy zwierząt dużych są zawijane w papier

absorpcyjny nasączony 10% wodnym roztworem formaliny, a następnie

wkłada się je do plastikowego worka (mocnego, szczelnie

zamkniętego).Jeżeli pobrany został tylko mózg (duże zwierzęta) należy

włożyć go do plastikowego worka lub metalowego pojemnika hermetycznie

zamykanego. Numer kolejny próbki powinien być napisany pisakiem

wodoodpornym na worku lub pojemniku.

Pierwsza paczka wkładana jest do dużego worka, który jest szczelnie

zamykany i umieszczany wewnątrz polistyrenowego pojemnika wraz z

workami z lodem i materiałem absorbującym (np. lignina). Przy

transporcie na większe odległości można użyć suchego lodu do chłodzenia
próbki. Pudełko polistyrenowe oklejane jest mocną taśmą samoprzylepną.

Koperta zawierająca wszystkie potrzebne informacje o próbce jest

dołączana do pudełka, które umieszczone jest wewnątrz pudełka

kartonowego wyściełanego folią. Pudełko powinno posiadać wyraźne

oznaczenia o materiale zakaźnym.

DOKUMENTACJA

TOWARZYSZĄCA

· Załącznik 1 – Pismo przewodnie do próbek przekazywanych do

laboratoryjnych badań diagnostycznych

W punkcie „Uwagi” należy wskazać, czy stwierdzono kontakt zakaźny

z ludźmi/zwierzętami oraz opisać charakter powyższego kontaktu.

· Załącznik 2 – Protokół pobrania prób (ewentualnie)

background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

84

CZAS NA

DOSTARCZENIE
POBRANEGO

MATERIAŁU DO

LABORATORIUM

Materiał do badania wirusologicznego powinien nadejść do laboratorium w

stanie świeżym.

LABORATORIUM

WETERYNARYJNE

POSIADAJĄCE

AKREDYTACJĘ

METODY

· ZHW w Warszawie TP w

Ostrołęce

· ZHW w Opolu

· ZHW w Krośnie

· ZHW w Katowicach

· ZHW w Poznaniu

· PIWet-PIB w Puławach

· ZHW w Krośnie

PRAWODAWSTWO UE Decyzja Komisji 2008/650/WE zmieniająca Dyrektywę Rady 82/894/EWG

w sprawie wykazu zgłaszania chorób zwierząt we wspólnocie poprzez
włączenie niektórych chorób do wykazu chorób wymagających zgłaszania

oraz skreśleniu z tego wykazu enterowirusowego zapalanie mózgu i rdzenia

u świń

PRAWODAWSTWO

POLSKIE

· Ustawa z dnia 11 marca 2004 r. o ochronie zdrowia zwierząt oraz

zwalczaniu chorób zakaźnych zwierząt

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 17 grudnia

2004 r. w sprawie określenia jednostek chorobowych, sposobu

prowadzenia kontroli oraz zakresu badań kontrolnych zwierząt

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 7 stycznia

2005 r. w sprawie zwalczania wścieklizny

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 25 listopada

2005 r. w sprawie zakresu, sposobu i terminów przekazywania

informacji o występowaniu chorób zakaźnych zwierząt podlegających

obowiązkowi zwalczania i rejestracji oraz o wynikach monitorowania

chorób odzwierzęcych i odzwierzęcych czynników chorobotwórczych a

także związanej z nimi oporności na środki przeciw drobnoustrojowe

· Rozporządzenie Rady Ministrów z dnia 30 maja 2007 r. w sprawie

wprowadzenia programu zwalczania enzootycznej białaczki bydła,

gruźlicy bydła, brucelozy u bydła, wścieklizny, gąbczastej

encefalolopatii oraz programu zwalczania i kontroli zakażeń wirusami

wysoce zjadliwej grypy ptaków dawny pomór drobiu w drobiu i ptaków
dzikich

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 16 stycznia

2008 r. w sprawie sposobu prowadzenia dokumentacji związanej ze
zwalczaniem chorób zakaźnych zwierząt

background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

85

IV. Dane adresowe laboratoriów weterynaryjnych

WOJEWÓDZTWO

NAZWA LABORATORIUM

DANE ADRESOWE

DOLNOŚLĄSKIE

Zakład Higieny Weterynaryjnej

we Wrocławiu

50-900 Wrocław, ul. Pułaskiego 52

tel.: 0-71 341-70-67, 071 341-70-68

fax: 0-71 717-45-37

zhw.wroclaw@wroc.wiw.gov.pl

www.wroc.wiw.gov.pl

KUJAWSKO-

POMORSKIE

Zakład Higieny Weterynaryjnej

w Bydgoszczy

85-090 Bydgoszcz,ul. Powstańców Wielkp. 10

tel.: 0-52 349-33-38, 322-83-44

fax: 0-52 349-33-41

bydgoszcz.zhw@wetgiw.gov.pl

bydgoszcz.zhw@wp.pl

www.bydgoszczwiw.neostrada.pl/zhw.htm

Zakład Higieny Weterynaryjnej

w Bydgoszczy, Oddział

Terenowy w Toruniu

87-100 Toruń, ul. Antczaka 39/41

tel.: 0-56 655-30-26 do 29

fax: 0-56 659-85-06

torun.zhw@wetgiw.gov.pl

Zakład Higieny Weterynaryjnej

w Bydgoszczy, Oddział

Terenowy we Włocławku

87-800 Włocławek, ul. Planty 16/18

tel.: 0-54 234-10-38

wiwwloc@neostrada.pl

LUBELSKIE

Zakład Higieny Weterynaryjnej

w Lublinie

20-336 Lublin, ul. Słowicza 2

tel./fax: 0-81 744-36-91, 92

lublin.zhw@wetgiw.gov.pl

www.wiw.lublin.pl

LUBUSKIE

Zakład Higieny Weterynaryjnej

w Gorzowie Wlkp.

66-400 Gorzów Wlkp., ul. Boh. Warszawy 4

tel.: 0-95 720-42-63

fax: 0-95 720-42-64

gorzówwlkp.zhw@wet.zgora.pl

Zakład Higieny Weterynaryjnej

w Gorzowie Wlkp. Pracownia

Badań Serologicznych w
Zielonej Górze

65-358 Zielona Góra, ul. Olbrychta 1

tel.: 0-68 453-73-61
zielonagora.zhw@wet.zgora.pl

ŁÓDZKIE

Zakład Higieny Weterynaryjnej

w Łodzi

93-569 Łódź, ul. Proletariacka 2/6,

tel.: 0-42 635-14-14

fax: 0-42 636-86-24
zhwlodz@wp.pl

Zakład Higieny Weterynaryjnej

w Łodzi Oddział w Piotrkowie
Trybunalskim

97-300 Piotrków Trybunalski,

ul. Rzemieślnicza 26
tel.: 0-44 646-46-76

zhwpiotrkowtryb@om.pl

MAŁOPOLSKIE

Zakład Higieny Weterynaryjnej

w Krakowie

30-695 Kraków 69, ul. Brodowicza 13 b

tel.: 0-12 411-81-22; 411-30-90

fax: 0-12 411-82-18

sekretariat@zhwkrakow.internetdsl.pl


background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

86

WOJEWÓDZTWO

NAZWA LABORATORIUM

DANE ADRESOWE

MAZOWIECKIE

Zakład Higieny Weterynaryjnej
w Warszawie

02-156 Warszawa, ul. Lechicka 21

tel.: 0-22 846-01-68; 846-30-51 do 55

fax: 0-22 846-30-51
zhw@op.pl

zhw.wawa@wiw.siedlce.com

www.zhw.wawa.eta.pl

ZHW w Warszawie Terenowa

Pracownia w Siedlcach

08-110 Siedlce, ul. Kazimierzowska 29

tel.: 0-25 631-10-85; 644-01-91 w. 24, 25

zhw.siedlce@wiw.siedlce.com

www.wiw.siedlce.com

ZHW w Warszawie Terenowa

Pracownia w Ostrołęce

07-412 Ostrołęka, ul. Składowa 8a

tel.: 0-29 769-01-00; 769-06-26

zhw.ostroleka@wiw.siedlce.com

OPOLSKIE

Zakład Higieny Weterynaryjnej

w Opolu

45 - 836 Opole, ul. Wrocławska 170

tel./fax: 0-77 457-50-10 wew. 317

zhw@wiw.opole.pl

PODKARPACKIE

Zakład Higieny Weterynaryjnej

w Krośnie

38-400 Krosno, ul. Ściegiennego 6/A

tel.: 0-13 432-59-23

fax: 0-13 432-69-33

krosno.zhw@wetgiw.gov.pl

ZHW w Krośnie Pracownia

Mikrobiologii i Immunologii w

Rzeszowie

35-959 Rzeszów, ul. Warszawska 12

tel.: 0-17 852-12-42

ZHW w Krośnie Pracownia

Chorób Ryb i Chorób

Zakaźnych Zwierząt w

Przemyślu

37-700 Przemyśl, ul. Lwowska 7

tel.: 0-16 678-75-93

PODLASKIE

Zakład Higieny Weterynaryjnej

w Białymstoku

15-959 Białystok, ul. Zwycięstwa 26

tel./fax: 0-85 651-62-91

zhw.bial@wiw.bianet.com.pl

sekretariat.zhw@wiw.bianet.com.pl

Zakład Higieny Weterynaryjnej
w Białymstoku Oddział w

Łomży

18-400 Łomża, ul. Nowogrodzka 160
tel.: 0-86 216-34-58

fax: 0-86 216-26-05

zhwlomza@op.pl

POMORSKIE

Zakład Higieny Weterynaryjnej

w Gdańsku

80-316 Gdańsk, ul. Kaprów 10

tel.: 0-58 552-12-68; 552-12-69

fax: 0-58 552-25-63

zhwo@gdansk.wiw.gov.pl

80-125 Gdańsk, ul. Kartuska 249

tel.: 0-58 302-04-04; 322-38-75

zhwgd@gdansk.wiw.gov.pl

LOM Laboratorium Oceny

Mleka

82-200 Malbork, ul. Boczne 8

tel.: 0-55 272-24-35

lom@malbork. com

background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

87

WOJEWÓDZTWO

NAZWA LABORATORIUM

DANE ADRESOWE

ŚLĄSKIE

Zakład Higieny Weterynaryjnej

w Katowicach

40-585 Katowice, ul. Brynowska 25a

tel.: 0-32 609-16-39; 609-16-31

tel./fax: 0-32 609-16-34
zhw@katowice.wiw.gov.pl

www.katowice.wiw.gov.pl

ŚWIĘTOKRZYSKIE Zakład Higieny Weterynaryjnej

w Kielcach

25-116 Kielce, ul. Ściegiennego 205

tel.: 0-41 361-64-98

fax: 0-41 361-67-54

kielce.zhw@wetgiw.gov.pl
zhw@wiw.kielce.pl

www.wiw.kielce.pl/zhw

WARMIŃSKO-

MAZURSKIE

Zakład Higieny Weterynaryjnej

w Olsztynie

10-702 Olsztyn, ul. Warszawska 109

tel.: 0-89 524-05-07

fax: 0-89 524-05-78

zhw@olsztyn.wiw.gov.pl
zhwkierownik@olsztyn.wiw.gov.pl

www.olsztyn.wiw.gov.pl

Zakład Higieny Weterynaryjnej

w Olsztynie Oddział w

Ostródzie

14-100 Ostróda, ul. Sienkiewicza 13

tel./fax: 0-89 646-63-23

ozhwostroda@olsztyn.wiw.gov.pl

WIELKOPOLSKIE

Zakład Higieny Weterynaryjnej

w Poznaniu

60-166 Poznań, ul. Grunwaldzka 250

tel.: 0-61 868-93-47

fax: 0-61 868-47-00

biuro.zhw@wiw.poznan.pl

www.wiw.poznan.pl

Pracownia ZHW w Kaliszu

62-800 Kalisz, ul. Warszawska 63a

tel.: 0-62 767-20-25

fax: 0-62 767-66-23

zhw.kalisz@wiw.poznan.pl

Pracownia Badań
Serologicznych ZHW w Koninie

Kierownik

62-500 Konin, ul. Kościuszki 37b
tel./fax: 0-63 242-84-94

zhw.konin@wiw.poznan.pl

Pracownia ZHW w Lesznie

64-100 Leszno, ul. Święciechowska 150

tel./fax: 0-65 520-64-98

zhw.leszno@wiw.horyzont.net

Międzywojewódzka Pracownia

Diagnostyki TSE w Lesznie

64-100 Leszno, ul. Święciechowska 150

tel.: 0-65 529-58-01

fax: 0-65 529-27-05

bse.leszno@wiw.poznan.pl

ZACHODNIO-

POMORSKIE

Zakład Higieny Weterynaryjnej

w Szczecinie

71-337 Szczecin, ul. Ostrawicka 2

tel.: 0-91 489-82-25

fax: 0-91 489-82-45

zhwsekretariat@wiw.szczecin.pl

Zakład Higieny Weterynaryjnej

w Szczecinie Oddział ZHW w
Koszalinie

75-816 Koszalin, ul. Połczyńska 70

tel.: 0-94 343-90-48

fax: 0-94 342-62-84
sekretariat@zhwkoszalin.pl

www.zhwkoszalin.pl

background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

88

WOJEWÓDZTWO

NAZWA LABORATORIUM

DANE ADRESOWE

LUBELSKIE

Państwowy Instytut

Weterynaryjny - Państwowy
Instytut Badawczy w Puławach

24-100 Puławy, Aleja Partyzantów 57

tel.: 0-81 889 30 00

fax: 0-81 886 25 95
sekretariat@piwet.pulawy.pl

www.piwet.pulawy.pl

ŁÓDZKIE

Zakład Pryszczycy

Państwowego Instytutu
Weterynaryjnego -

Państwowego Instytutu

Badawczego w Zduńskiej Woli

98-220 Zduńska Wola, ul. Wodna 7
tel.: 0-43 823 51 34

fax : 0-43 823 52 75

KUJAWSKO-

POMORSKIE

Oddział Państwowego Instytutu

Weterynaryjnego -

Państwowego Instytutu

Badawczego w Bydgoszczy,

Zakład Fizjopatologii Rozrodu i

Gruczołu Mlekowego

85-090 Bydgoszcz, ul. Powstańcowi Wlkp. 10

tel. 0-52-349-31-40

background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

89

V.

Aktualizacja i zgłaszanie uwag do Podręcznika


Aktualizacja Podręcznika

Zaktualizowane części niniejszego Podręcznika, jak również dodatkowe fragmenty

rozszerzające jego treść, są dostępne na stronie internetowej Głównego Inspektoratu

Weterynarii (www.wetgiw.gov.pl).

Uwagi do Podręcznika


Uwagi do Podręcznika można zgłaszać na adres:

podrecznik@wetgiw.gov.pl

.

background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

90

VI. Bibliografia

Niniejszy Podręcznik został opracowany w oparciu o następujące dokumenty i

akty prawne:

1.

Zbiór Metod Diagnostycznych 2007

2.

Ustawa z dnia 11 marca 2004 r. o ochronie zdrowia zwierząt oraz

zwalczania chorób zakaźnych zwierząt (Dz. U. Nr 69 p oz. 625 z późn. zm.)

3.

Manual of Diagnostic Tests and Vaccines for Terrestrial Animals 2008

4.

Manual of Diagnostic Tests for Aquatic animals 2006

Rozporządzenia:

5.

Rozporządzenie Parlamentu Europejskiego i Rady (WE) nr 999/2001 z dnia

22 maja 2001 r. ustanawiające zasady dotyczące zapobiegania, kontroli i

zwalczania niektórych przenośnych gąbczastych encefalopatii

6.

Rozporządzenie Komisji (WE) nr 1226/2002 z dnia 8 lipca 2002 r.

zmieniające załącznik B do dyrektywy Rady 64/432/EWG

7.

Rozporządzenie Komisji (WE) nr 21/2008 z dnia 11 stycznia 2008 r.

zmieniające załącznik X do rozporządzenia (WE) nr 999/2001 Parlamentu
Europejskiego i Rady w odniesieniu do wykazów szybki ch testów

8.

Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 18 maja 2004 r.

w sprawie szczegółowego sposobu i trybu zwalczania afrykańskiego pomoru

koni (Dz. U. Nr 131 poz. 1408)

9.

Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 23 czerwca 2004

r. w sprawie zwalczania afrykańskiego pomoru świń (Dz. U. Nr 158 poz.

1658)

10. Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 24 czerwca 2004

r. w sprawie sposobu i trybu zwalczania niektórych chorób zakaźnych
zwierząt podlegających obowiązkowi zwalczania
(Dz. U. Nr 158 poz. 1659)

11. Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 23 listopada 2004

r. w sprawie zwalczania gruźlicy bydła (Dz. U. Nr 258 poz. 2585)

12. Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 17 grudnia 2004

r. w sprawie określenia jednostek chorobowych, sposobu prowadzenia

kontroli oraz zakresu badań kontrolnych zwierząt (Dz. U. Nr 282, poz. 2813

z późn. zm.)

13. Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 7 stycznia 2005 r.

w sprawie zwalczania wścieklizny (Dz. U. Nr 13, poz. 103)

14. Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 29 marca 2005 r.

w sprawie zwalczania chorób zakaźnych ryb (Dz. U. Nr 60, poz. 528)

15. Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 20 kwietnia 2005

r. w sprawie zwalczania brucelozy (Dz. U. Nr 79 poz. 690)

16. Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 5 maja 2005 r. w

sprawie zwalczania wąglika (Dz. U. Nr 88, poz. 750)

17. Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 27 czerwca 2005

r. w sprawie szczegółowych wymagań weterynaryjnych niezbędnych do

uzyskania i zachowania uznania stada lub gospodarstwa za urzędowo

wolne lub wolne od chorób zakaźnych zwierząt (Dz. U. Nr 126, poz. 1058)

background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

91

18. Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 29 lipca 2005 r.

w sprawie zwalczania rzekomego pomoru drobiu (Dz. U. Nr 158, poz. 1330)

19. Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 14 września 2005

r. w sprawie zwalczania zgnilca amerykańskiego pszczół (Dz. U. Nr 187,

poz. 1574)

20. Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 25 listopada 2005

r. w sprawie zakresu, sposobu i terminów przekazywania informacji o

występowaniu chorób zakaźnych zwierząt podlegających obowiązkowi

zwalczania i rejestracji oraz o wynikach monitorowania chorób

odzwierzęcych i odzwierzęcych czynników chorobotwórczych a także

związanej z nimi oporności na środki przeciw drobnoustrojowe (Dz. U. Nr
242, poz. 2045)

21. Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 10 lutego 2006 r.

w sprawie szczegółowego sposobu i trybu zwalczania pryszczycy (Dz. U. Nr

28, poz. 205)

22. Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 12 kwietnia 2006

r. w sprawie zwalczania niektórych chorób zakaźnych mięczaków (Dz. U.

Nr 73, poz. 512)

23. Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 18 grudnia 2006

r. w sprawie zwalczania klasycznego pomoru świń (Dz. U. z 2007 r. Nr 2,
poz. 17)

24. Rozporządzenie Rady Ministrów z dnia 30 maja 2007 r. w sprawie

wprowadzenia programu zwalczania enzootycznej białaczki bydła, gruźlicy

bydła, brucelozy u bydła, wścieklizny, gąbczastej encefalolopatii oraz

programu zwalczania i kontroli zakażeń wirusami wysoce zjadliwej grypy

ptaków dawny pomór drobiu w drobiu i ptaków dzikich (Dz. U. Nr 104 poz.

714)

25. Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 14 września 2007

r. w sprawie zwalczania zarazy płucnej bydła (Dz. U. Nr 178 poz. 1261)

26. Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 18 grudnia 2007

r. w sprawie zwalczania grypy ptaków (Dz. U. Nr 239 poz. 1752)

27. Rozporządzenie Rady Ministrów z dnia 18 grudnia 2007 r. w sprawie

wprowadzenia programu zwalczania enzootycznej białaczki bydła (Dz. U.

Nr 249 poz. 1852)

28. Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 16 stycznia 2008

r. w sprawie sposobu prowadzenia dokumentacji związanej ze zwalczaniem

chorób zakaźnych zwierząt (Dz. U. Nr 17, poz. 107)

29. Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 26 lutego 2008 r.

w sprawie sposobu i trybu zwalczania choroby pęcherzykowej świń (Dz. U.

Nr 40 ,poz. 237)

30. Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 5 marca 2008 r.

w sprawie zwalczania enzootycznej białaczki bydła (Dz. U. Nr 47 ,poz. 278)

31. Rozporządzenie Rady Ministrów z dnia 19 marca 2008 r. w sprawie

wprowadzenia programu zwalczania choroby Aujeszkyego u świń (Dz. U.

Nr 64 poz. 397)

background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

92

Dyrektywy:

32. Dyrektywa Rady 64/432/EWG w sprawie problemów zdrowotnych zwierząt

wpływających na handel wewnątrz wspólnotowy bydłem i trzodą chlewną

33. Dyrektywa Rady 90/426/WE w sprawie warunków zdrowotnych zwierząt,

regulujących przemieszczanie i przywóz zwierząt z rodziny koniowatych z

państw trzecich

34. Dyrektywa Rady 90/539/EWG w sprawie warunków zdrowotnych zwierząt,

regulujących handel wewnątrzwspólnotowy i przywóz z państw trzecich

drobiu i jaj wylęgowych

35. Dyrektywa Rady 91/67/EWG dotycząca warunków zdrowotnych zwierząt,

obowiązujących przy wprowadzaniu na rynek zwierząt i produktów

akwakultury

36. Dyrektywa Rady 92/66/EWG wprowadzająca wspólnotowe środki

zwalczania rzekomego pomoru drobiu

37. Dyrektywa Rady 92/117/EWG dotycząca środków ochrony przed

określonymi chorobami odzwierzęcymi i odzwierzęcymi czynnikami

chorobotwórczymi u zwierząt i w produktach pochodzenia zwierzęcego, w

celu zapobieżenia zakażeniom i zatruciom przenoszonym przez żywność

38. Dyrektywa Rady 95/70/WE wprowadzająca minimalne wspólnotowe środki

zwalczania niektórych chorób małży

39. Dyrektywa Rady 98/46/EC z dnia 24 czerwca 1998 r. nowelizująca

załączniki A,D (Rozdział I) oraz F do Dyrektywy 64?432/EEC o p roblemach

zdrowia zwierząt w handlu bydłem i trzodą chlewną wewnątrz Wspólnoty

40. Dyrektywa Parlamentu Europejskiego i Rady 2003/99/WE z dnia 17

listopada 2003 r. w sprawie monitorowania chorób odzwierzęcych i

odzwierzęcych czynników chorobotwórczych, zmieniająca decyzję rady

90/424/EWG i uchylająca dyrektywę Rady 92/117/EWG


Decyzje:

41. Decyzja Komisji 2001/183/WE ustanawiająca plany pobierania próbek i

metody diagnostyczne do celów wykrywania i potwierdzania występowania

niektórych chorób ryb oraz uchylająca decyzję 92/532/EWG

42. Decyzja Komisji 2001/618WE ograniczająca możliwość obrotu i handlu

świniami między krajami lub regionami różnym statusie epizootycznym w

zakresie choroby Aujeszkyego

43. Decyzja Komisji 2002/106/WE zatwierdzająca Podręcznik Diagnostyczny

ustalający procedury diagnostyczne, metody pobierania próbek oraz

kryteria do oceny testów laboratoryjnych służących do potwierdzenia

klasycznego pomoru świń

44. Decyzja Komisji 2002/878/WE ustanawiająca plany pobierania próbek oraz

metody diagnostyczne stosowane w celu wykrywania i potwierdzania

występowania u mięczaków Bonamiosis (Bonami ostreae) i Marteiliosis

(Marteilia refringens)

45. Decyzja Komisji 203/466/WE ustanawiająca kryteria podziału na strefy i

urzędowego nadzoru w następstwie podejrzenia lub potwierdzenia

występowania niedokrwistości zakaźnej łososia (ISA)

background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

93

46. Decyzja Komisji 2006/437/WE zatwierdzająca podręcznik diagnostyczny

dotyczący grypy ptaków, przewidziany w dyrektywie Rady 2005/94/WE

47. Decyzja Komisji 2008/185/WE wprowadzająca zakaz handlu świniami dla

krajów, które nie są wolne od choroby Aujeszkyego lub, w których nie jest

realizowany program zwalczania tej choroby

48. Decyzja Komisji 2008/650WE zmieniająca Dyrektywę Rady 82/894/EWG w

sprawie wykazu zgłaszania chorób zwierząt we wspólnocie poprzez

włączenie niektórych chorób do wykazu chorób wymagających zgłaszania

oraz skreśleniu z tego wykazu enterowirusowego zapalanie mózgu i rdzenia

u świń


background image

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K

94

VII. Załączniki



Wyszukiwarka

Podobne podstrony:
01.Cechy państwa, 12.PRACA W SZKOLE, ZSG NR 4 2008-2009, PG NR 5
2008-12-01 rozporz-UTB, Dźwignice
2008 12 01
2008 01 15 godz 12 LH
2008 01 16 godz 12 LH
2008 01 16 godz 12 HL
2008 01 14 godz 12 LH
2008 01 15 godz 12 HL
2008 01 14 godz 12 HL
2008 12 05 (3)
2008 12 10 (8)
Powiedzmy z dumą Nasz Kościół broni godności człowieka - [2008-12-13], bioetyka
TABELA POLSKIE SUKCESY (MIEJSCA 1-8), IMPREZY SPORTOWE (22), Pekin 2008 (12)
2008 12 15
2008 12 09 Wykaz tytułów prasy wojskowej
DzU 199 2008 12 27 udost inf i OOS
2008 12 05

więcej podobnych podstron